Articolo metodologico

Iniezione endovenosa di agenti sperimentali basata su catetere: una tecnica per la somministrazione di agenti sperimentali per via endovenosa attraverso la vena giugulare in un modello murino

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Bornert, A. et al. Imaging in vivo a due fotoni di megacariociti e propiastrine nel midollo osseo del cranio di topo. J. Vis. Exp. (2021)

In questo video, descriviamo un metodo per impiantare un catetere nella vena giugulare di un modello murino attraverso il quale agenti sperimentali come farmaci e coloranti traccianti possono essere somministrati per via endovenosa in vivo. Tale disposizione, se collegata ad altri sistemi, può essere utilizzata anche per il monitoraggio dell'emodinamica e il prelievo di sangue.

Protocollo

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Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Preparazione dei topi e inserimento di un catetere nella vena giugulare

NOTA: Qui, maschi o femmine, sono stati utilizzati topi reporter mTmG di 5-7 settimane (B6.129(Cg) Gt(ROSA)26Sortm4(ACTBtdTomato,-EGFP)Luo10) incrociati con topi Pf4-cre, consentendo l'etichettatura a fluorescenza verde intenso nei megacariociti e nelle piastrine. Prima di iniziare l'esperimento, preriscaldare la camera di riscaldamento del microscopio per alcune ore.

  1. Trasporta il mouse nella sala di imaging e procedi all'anestesia.
    1. Anestetizzare il topo mediante iniezione intraperitoneale (i.p.) di una soluzione di ketamina (ketamina (100 μg/g) e xilazina (10 μg/g) (5 μL/g).
      nota: La somministrazione ripetuta di ketamina / xilazina viene utilizzata qui e funziona bene, ma richiede l'interruzione della registrazione per una reiniezione regolare. In alternativa, se è disponibile una macchina per anestesia, l'induzione dell'anestesia può essere eseguita con ketamina/xilazina e successivamente mantenuta sotto inalazione di gas (miscela di isoflurano, aria e ossigeno).
    2. Sostituire l'animale nella sua gabbia fino a raggiungere l'anestesia profonda. Posizionare il mouse su una piastra riscaldata riscaldata a 37 °C per tutte le manipolazioni successive.
      nota: Mentre l'animale raggiunge l'anestesia profonda, accendi il microscopio e tutte le attrezzature e imposta i diversi parametri necessari per iniziare l'esperimento una volta terminato l'intervento chirurgico. Qui, la procedura dura solo 3 ore ed è terminale. Il topo viene soppresso dopo l'esperimento senza svegliarsi. Pertanto, la disinfezione con etanolo per la pelle e gli strumenti è sufficiente. Tuttavia, a seconda delle linee guida istituzionali, o se la procedura durerà più a lungo, dovrebbero essere utilizzati metodi di disinfezione più completi, come tre scrub alternati con betadine/povidone e alcol.

2. Installa un catetere nella vena giugulare.

NOTA: È importante evitare il più possibile la contaminazione microbica durante l'intervento chirurgico. Fare attenzione a disinfettare accuratamente la pelle con etanolo al 70% (EtOH) prima di procedere con l'intervento chirurgico. Usa sempre forbici e pinzette sterilizzate e sciacquale regolarmente al 70% di EtOH. Lavora in un luogo pulito e indossa una mascherina. Per l'iniezione endovenosa viene utilizzato un catetere "sopra l'ago" da 22 G, costituito da un ago all'interno di un tubo di plastica (vedere la Tabella dei materiali).

  1. Posiziona il topo sulla schiena e fissa le zampe anteriori con del nastro chirurgico per allungare la gola (Figura 1A). Disinfettare la gola con etanolo al 70%.
    nota: Per comodità, la gola può essere rasata prima dell'intervento chirurgico. Se la procedura dura più a lungo, è necessario eseguire un'accurata rasatura per una corretta tecnica asettica.
  2. Praticare un'incisione di 0,7-1 cm sulla vena giugulare destra o sinistra utilizzando forbici sterili. Allungare il tessuto connettivo adiacente per esporre la vena giugulare esterna e la parte superiore del muscolo pettorale (Figura 1A).
  3. Riempire il catetere con soluzione fisiologica calda e sterile. Inserire il catetere nella vena dopo essere penetrato attraverso il muscolo pettorale (Figura 1B).
    nota: Fare attenzione a evitare bolle d'aria all'interno del catetere. È importante inserire il catetere attraverso il muscolo per prevenire l'emorragia poiché il muscolo formerà un punto di compressione. Anche i topi con difetti dell'emostasi, come i topi Itgb3-/-, non sanguinano all'inserimento del catetere con questo approccio.
  4. Rimuovere delicatamente l'ago e, se necessario, spostare con cautela il catetere più in profondità nella vena. Collegare la siringa e stabilizzare il catetere aggiungendo una goccia di colla chirurgica (Tabella dei materiali).
    nota: È possibile inserire un catetere all'interno della vena caudale, anche se richiede un po' di pratica perché la vena ha un calibro più piccolo. Ciò è particolarmente difficile quando si utilizzano topi con peli scuri, la cui vena caudale è appena visibile. A causa del suo calibro maggiore, il posizionamento del catetere all'interno della vena giugulare può consentire un'iniezione più affidabile di volumi maggiori o trattamenti ripetuti. Si prega di notare che la siringa viene riempita per la prima volta con soluzione fisiologica calda e non dimenticare di iniettare il volume morto prima di iniettare la soluzione farmacologica.
  5. Riportare con cautela il mouse in posizione prona (Figura 1C). Applicare il gel (Tabella dei materiali) sugli occhi per prevenire la secchezza.

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Risultati

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Figura 1: Inserimento del catetere. (A) Viene praticata un'incisione per esporre la vena giugulare e la parte superiore del muscolo pettorale. (B) Il catetere riempito di soluzione fisiologica viene inserito nella vena giugulare passando attraverso il muscolo, creando un punto di compressione. (C) Il topo viene ruotato con cura in mo...

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Histoacryl 5 x 0, 5 mL Braun 1050052Soluzione iniettabile di colla chirurgica
Imalgene/Ketamina 1000 fl/10 mL Boehring Telefono 3661103003199.00Protezione per gli occhi
Rompun Xilazina 2% fl/25 mL Bayer Numero 4007221032311.00
Catetere Surflo IV - Blu 22 G Terumo SR-OX2225C1

Ristampe e permessi

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Tag

Cateterizzazione della vena giugularetraccianti fluorescentimuscolo pettoralecolla chirurgicapiastra riscaldatatopo anestetizzatoincisione cutanea

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