Articolo metodologico

Modello di ictus transitorio basato sull'inserimento di filamenti: una procedura chirurgica per eseguire l'occlusione dell'arteria cerebrale media nel cervello murino

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Llovera, G., et al. Modeling Stroke in Topi: Occlusione transitoria dell'arteria cerebrale media attraverso l'arteria carotide esterna. J. Vis. Exp (2021).

Questo video descrive la procedura per sviluppare l'ictus transitorio in un modello murino utilizzando l'occlusione basata su filamenti rivestiti di silicone dell'arteria cerebrale media. Il modello sviluppato imita l'ictus umano, aiutando così a studiare nuove strategie terapeutiche per il trattamento dell'ictus.

Protocollo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Preparazione del materiale e degli strumenti

  1. Collegare la coperta termica per mantenere la temperatura dell'area operativa e la temperatura del corpo del mouse durante l'anestesia a 37 °C.
  2. Forbici e pinze per autoclave, preparare una soluzione di etanolo al 70% e tenere a disposizione unguento per gli occhi al dexpantenolo, diversi pezzi di cotone e sutura in poliestere intrecciato rivestito 5-0 pronto per l'uso. Preparare una siringa da 1 ml con soluzione salina allo 0,9% (senza ago) per mantenere idratato il sito di incisione dell'animale. Preparare il gas di anestesia (100% O2 + isoflurano).
  3. Preparare un supporto per la sonda laser Doppler tagliando la punta di una punta per pipetta da 10 μL (lunghezza 3-5 mm).|
    NOTA: Tutti gli strumenti vengono sterilizzati utilizzando uno sterilizzatore a microsfere calde. Le superfici vengono inoltre disinfettate prima e dopo l'intervento chirurgico con uno spray disinfettante microbico. Prima dell'intervento chirurgico, le aree che circondano la testa e il torace dei topi vengono disinfettate con uno spray disinfettante per la disinfezione delle ferite.

2. Preparazione del laser Doppler

  1. Iniettare analgesia nel topo 30 minuti prima dell'intervento chirurgico (4 mg/kg di carprofene e 0,1 mg/kg di buprenorfina, per via intraperitoneale).
  2. Anestetizzare il topo posizionandolo nella camera di induzione con una velocità di flusso di isoflurano del 4% fino alla cessazione del movimento spontaneo del corpo e delle vibrisse.
  3. Posizionare il mouse in posizione prona nell'area operatoria con il naso nella maschera per anestesia. Mantenere la concentrazione di isoflurano al 4% per un altro minuto, quindi ridurla e mantenerla al 2%.
  4. Impostare il cuscinetto riscaldante controllato dal feedback associato per mantenere la temperatura corporea del mouse a 37 °C e inserire delicatamente la sonda rettale per monitorare la temperatura durante le procedure chirurgiche.
  5. Applicare l'unguento per gli occhi al dexpantenolo su entrambi gli occhi.
  6. Disinfettare la pelle e i peli che circondano l'occhio sinistro e l'orecchio con etanolo al 70%.
  7. Taglia il cuoio capelluto tra l'orecchio sinistro e l'occhio (lungo 1 cm) per esporre l'osso del cranio.
  8. Taglia e ritira il muscolo temporale per visualizzare l'MCA sotto il cranio.
  9. Fissare con la colla la parte esterna della punta tenendo la sonda/fibra laser Doppler sopra l'MCA sinistro con la colla. Quindi, incollare la pelle per chiudere la ferita attorno al supporto della punta. Applicare 2-3 gocce di colla indurente per accelerare il processo. Assicurarsi che la fibra laser Doppler non sia incollata e possa essere facilmente rimossa dal supporto della punta in qualsiasi momento.

3.Modello MCAo transitorio (occlusione)

  1. Ruota il mouse in posizione supina. Metti il muso nel cono dell'anestesia e fissa le zampe con del nastro adesivo.
  2. Disinfettare la pelle e i peli che circondano il torace e praticare un'incisione della linea mediana lunga 2 cm nel collo.
  3. Usa una pinza per separare la pelle e le ghiandole sottomandibolari. Utilizzare i divaricatori per trattenere il muscolo sternomastoideo, esporre il campo chirurgico e trovare l'arteria carotide comune sinistra (CCA). Sezionare il CCA libero dal tessuto connettivo e dai nervi circostanti (senza danneggiare il nervo vagale) ed eseguire una legatura transitoria prima della biforcazione.
  4. Sezionare l'arteria carotide esterna (ECA) e fare un nodo permanente nella parte visibile più distale. Posizionare un'altra sutura sotto l'ECA, vicino alla biforcazione, e preparare un nodo sciolto da utilizzare in seguito.
  5. Sezionare l'arteria carotide interna (ICA) e posizionare una clip microvascolare su di essa, 5 mm sopra la biforcazione. Assicurati di non danneggiare il nervo vagale.
  6. Praticare un piccolo foro nell'ECA tra le legature strette e quelle allentate; fare attenzione a non tagliare l'intera ECA.
  7. Introdurre il filamento e farlo avanzare verso il CCA. Stringere la legatura libera nell'ECA attorno al lume per fissare brevemente il filamento in quella posizione ed evitare sanguinamenti durante la rimozione della clip microvascolare.
  8. Rimuovere la clip microvascolare e inserire il filamento attraverso l'ICA fino a raggiungere l'origine dell'MCA rilevando una forte riduzione (>80%) del flusso sanguigno cerebrale misurata dal laser Doppler. Fissare il filamento in questa posizione stringendo ulteriormente il nodo attorno all'ECA.
    nota: Quando il filamento va nella direzione appropriata, avanza dolcemente e non si deve osservare alcuna resistenza.
  9. Registra i valori laser Doppler prima e dopo l'inserimento del filamento.
  10. Rimuovere il divaricatore e riposizionare il muscolo sternomastoideo e le ghiandole sottomandibolari prima di suturare la ferita. Rimuovere la sonda laser Doppler e posizionare l'animale in una camera di recupero a 37 °C per 1 ora (fino alla rimozione del filamento).

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Rampa a 45°H&S KunststofftechnikAltezza: 18 cm
Minaccia 5/0PearsallsCodice 10C103000
Sistema di anestesia per isofluranoDrager
Pomata di bepanthenBayer
Topi C57Bl/6JFiume Carlo000664
morsettoFSTCodice: 12500-12
morsettoFSTCodice: 18055-04
Porta clipFSTAnno 18057-14
CotoniNOBA Verbondmitel Danz974116
Etanolo 70%CLN Chemikalien Laborbedorf521005
Etanolo 96%CLN Chemikalien Laborbedorf522078
Etanolo 99%CLN Chemikalien LaborbedorfETO-5000-99-1
FilamentiDott.Codice 602112PK5Re
Fine 45 pinze angolateFSTCodice 11251-35
Pinze finiFSTCodice 11252-23
Forbici finiFSTCodice 14094-11
collaOrechselnBSI-112
Colla indurenteDrechseln & MehrBSI-151
Coperta riscaldanteRegolatore di temperatura CC FHC
IsofluranoabateB506
IsopentanoFlukaCodice: 59070
Laser DopplerPerimedPF 5010 LDPM, sistema Periflux
5000
Sonda laser DopplerPerimed91-00123
Camera di recuperoMediheat
Filamenti rivestiti di siliconeDott.Codice 602112PK5Re
Vannas Forbici a mollaFSTCodice 15000-00

Ristampe e permessi

Richiedi il permesso di riutilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi permesso

Tag

Chirurgia cerebrale murinaarteria carotide esternaarteria carotide internaarteria carotide comunefilamento rivestito di siliconelegatura chirurgicatopo anestetizzato

Articoli correlati