È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Esecuzione dell'iniezione nel lobo orbitale della ghiandola lacrimale superiore: una tecnica per indurre la malattia dell'occhio secco nel modello di coniglio

2.9K visualizzazioni

⸱

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Honkanen, R. A. et al, Un modello di coniglio di malattia dell'occhio secco con carenza acquosa indotta da iniezione di concanavalina A nelle ghiandole lacrimali: applicazione agli studi sull'efficacia dei farmaci. J. Vis. Exp. (2020).

Questo video descrive la procedura per indurre la malattia dell'occhio secco in un modello di coniglio attraverso un'iniezione di Concanavalina A nel lobo orbitale della ghiandola lacrimale superiore. Il modello sviluppato è utile per studiare l'efficacia di vari farmaci per il trattamento della malattia dell'occhio secco.

Protocollo

Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Preparazione degli animali

NOTA: Vengono iniettate le porzioni del sistema della ghiandola lacrimale orbitale.

  1. Sedare i conigli con acepromazina 0,2 mg/kg per via sottocutanea.
  2. Tagliare il pelo nella zona periorbitale e del cuoio capelluto e rimuovere completamente eventuali residui di pelo utilizzando Nair. Lasciare la pelle completamente liscia per una migliore visualizzazione dei segni anatomici e l'iniezione ecoguidata di concanavalina A (Figura 1).
  3. Indurre una sedazione moderata come descritto sopra.

2. Iniezione della ghiandola lacrimale orbitale superiore (OSLG)

NOTA: OSLG segue in rapida successione.

  1. Applicare una pressione mediale sul globo facendo sporgere l'OSLG dall'incisione posteriore. Applicare una pressione mediale sul globo (Figura 2, freccia rossa) con la protuberanza dell'OSLG dall'incisione posteriore. La protuberanza funge da localizzazione grossolana per trovare l'incisione posteriore.
  2. Usa una pinza curva con le punte chiuse per rientrare l'area fino a quando non si avverte l'apertura ossea nel cranio. Questo sarà simile a una fessura con una direzione anteriore/posteriore sotto la protuberanza.
  3. Applicare una pressione modesta con una pinza per lasciare una rientranza nella pelle, che fungerà da punto di riferimento per il posizionamento dell'ago (Figura 3A).
  4. Inserire un ago (siringa di tubercolina con un ago da 27 gauge, 5/8 di pollice) perpendicolare alla pelle sopra il segno di rientranza (Figura 3B) ~ 1/4 di pollice nell'incisura, quindi reindirizzare l'ago posteriormente ed esternamente verso il canto laterale mirando al punto medio tra il sito di iniezione e il bordo orbitale osseo.
    nota: Se l'incisione non viene mirata con precisione con l'ago, il cranio ne blocca l'avanzamento.
  5. Una volta raggiunto il mozzo dell'ago, iniettare lentamente 1000 μg di Con A in un volume di 0,2 mL (Figura 3C).
  6. Completa l'iniezione sia del PSLG che dell'OSLG entro 2-3 minuti
  7. Rimuovere l'animale dalla sedazione con isoflurano (se non ancora eseguita). L'iniezione della ghiandola lacrimale inferiore (ILG) di solito può essere completata senza ulteriore sedazione.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

figure-results-1
Figura 1: Preparazione del coniglio per iniezioni di concanavalina A.(A) Piccole cesoie vengono utilizzate per rimuovere il pelo, consentendo una più facile visualizzazione dei punti di riferimento per identificare la ghiandola lacrimale orbitale superiore. (B) Nair viene utilizzato per rimuovere i peli che rimangono dopo la tosatura.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Obiettivo macro da 100 mmCanon EF 100mm f/2.8L IS USMCodice 3554B002
Ferri calibro 26 (5/8)Becton Dickinson e compagnia,
Franklin Lakes, NJ
305115Aghi per l'iniezione di ConA nel
ghiandole lacrimali
Ferri calibro 27 (5/8)Becton Dickinson e compagnia,
Franklin Lakes, NJ
305921Aghi per l'iniezione di ConA nel
ghiandole lacrimali
Aceproinj (acepromazina)Henry Schein Salute degli animali,
Dublino, OH
NDC11695-0079-80,1 ml/kg per iniezione sottocutanea
per sedazione del coniglio
Vaporizzatore per anestesiaVetEquip, Pleasanton, CAArticolo #911103
Pinze Bishop HarmonBausch e Lomb (Storz),
Bridgewater, NJ
E1500-CPinze per tessuti
calibratoreBausch e Lomb (Storz),
Bridgewater, NJ
E-2404Calibro utilizzato per misurare la lunghezza di
ago durante l'iniezione di ConA
Concanavalina ASigma, St. Louis, MOAnno 2010Produrre 5 mg/ml in PBS per iniezione
nelle ghiandole lacrimali del coniglio
Coniglio, Bianco della Nuova Zelanda o
Olandese con cintura (come descritto nel testo)
Charles River Labs, Waltham, MA2-3 kgAnimali da ricerca
Lenti chirurgiche +1.50Disegni per la visione, Boemia, NYArticolo specialeFornire magnificantion di ocular
durante l'osservazione della rottura lacrimale
su e performante Concanavalin A
Iniezioni.

Esplora altri articoli

Iniezione nella ghiandola lacrimaleConcanavalina Asiringa da tubercolinaago da 27 gaugetecnica di pressione medialeinfiltrazione linfocitaria