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Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.
1. Preparazione del campione per la microdissezione a cattura laser
- Preparare le soluzioni per la colorazione e la disidratazione.
- Mettere 45 mL di etanolo all'80% in ciascuna delle tre provette da centrifuga da 50 mL sul ghiaccio. Etichettali come #1, #2 e #3. Diluire l'etanolo con acqua priva di RNasi/DNasi.
- Mettere 45 mL di etanolo al 95% in una provetta da centrifuga da 50 mL su ghiaccio.
- Mettere 45 mL di etanolo al 100% in una provetta da centrifuga da 50 mL su ghiaccio.
- Mettere 45 mL di xilene in una provetta da centrifuga da 50 mL a temperatura ambiente.
ATTENZIONE: Lo xilene deve essere utilizzato in una cappa aspirante.
- Scongelare brevemente un vetrino della membrana PEN posizionandolo contro una mano guantata, quindi lavare due volte per 30 s ciascuna in 45 mL di etanolo all'80% (#1 e #2) con agitazione in provette da centrifuga da 50 mL per rimuovere l'OCT.
NOTA: È importante rimuovere l'OCT prima della colorazione, per evitare che l'OCT allentato durante la colorazione oscuri le sezioni. Le pinze possono essere utilizzate per facilitare la rimozione dell'OCT che non viene lavato via dall'agitazione.
- Stendere il diapositive su un foglio di carta stagnola. Pipettare 0,8 mL di violetto cresil allo 0,1% in etanolo al 50% sul vetrino e colorare per 30 s. Lavare il vetrino in 45 mL di etanolo all'80% (#3) per 30 s, quindi disidratare per passaggio per 30 s ciascuno attraverso 45 mL di etanolo al 95%, etanolo al 100% e xilene in provette da centrifuga da 50 mL.
- Appoggiare le guide su un tergicristallo delicato per 5 minuti per drenare lo xilene e asciugare le sezioni.