Articolo metodologico

Colorazione Cresyl Violet di sezioni di tessuto: una procedura di colorazione per visualizzare la cartilagine e le ossa in sezioni di embrioni di topo congelati

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Wu, Meng, et al., Microdissezione a cattura laser della cartilagine e dell'osso embrionale di topo per l'analisi dell'espressione genica. (2019)

Questo video descrive la procedura di colorazione con violetto cresyl per visualizzare ossa e cartilagine nelle sezioni coronali di embrioni di topo congelati. Questa tecnica di colorazione aiuta a differenziare le ossa e la cartilagine con colori distinti dai tessuti circostanti.

Protocollo

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Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Preparazione del campione per la microdissezione a cattura laser

  1. Preparare le soluzioni per la colorazione e la disidratazione.
    1. Mettere 45 mL di etanolo all'80% in ciascuna delle tre provette da centrifuga da 50 mL sul ghiaccio. Etichettali come #1, #2 e #3. Diluire l'etanolo con acqua priva di RNasi/DNasi.
    2. Mettere 45 mL di etanolo al 95% in una provetta da centrifuga da 50 mL su ghiaccio.
    3. Mettere 45 mL di etanolo al 100% in una provetta da centrifuga da 50 mL su ghiaccio.
    4. Mettere 45 mL di xilene in una provetta da centrifuga da 50 mL a temperatura ambiente.
      ATTENZIONE: Lo xilene deve essere utilizzato in una cappa aspirante.
  2. Scongelare brevemente un vetrino della membrana PEN posizionandolo contro una mano guantata, quindi lavare due volte per 30 s ciascuna in 45 mL di etanolo all'80% (#1 e #2) con agitazione in provette da centrifuga da 50 mL per rimuovere l'OCT.
    NOTA: È importante rimuovere l'OCT prima della colorazione, per evitare che l'OCT allentato durante la colorazione oscuri le sezioni. Le pinze possono essere utilizzate per facilitare la rimozione dell'OCT che non viene lavato via dall'agitazione.
  3. Stendere il diapositive su un foglio di carta stagnola. Pipettare 0,8 mL di violetto cresil allo 0,1% in etanolo al 50% sul vetrino e colorare per 30 s. Lavare il vetrino in 45 mL di etanolo all'80% (#3) per 30 s, quindi disidratare per passaggio per 30 s ciascuno attraverso 45 mL di etanolo al 95%, etanolo al 100% e xilene in provette da centrifuga da 50 mL.
  4. Appoggiare le guide su un tergicristallo delicato per 5 minuti per drenare lo xilene e asciugare le sezioni.

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Provetta da centrifugaThermoFisher Scientifico339653Provette da centrifuga sterili coniche in polipropilene, 50 mL
Cresil violetto acetatoSigma-AldrichCodice: C5042
Tergicristallo per attività delicateThermoFisher Scientifico06-666
acqua distillataInvitrogenCodice 10977-015Senza DNasi/RNasi
Etanolo, assoluto (200 proof)ThermoFisher ScientificoBP2818Grado di biologia molecolare
Vetrino a membrana PEN in vetroLeica Microsystems11505158
Composto OCTScienze della microscopia elettronicaCodice 102094-106
Agente di decontaminazione con RNasiSigma-AldrichAnno 2020Agente decontaminante a base di RNasi per la pulizia delle superfici
xileneSigma-Aldrich214736

Ristampe e permessi

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Cresyl Violet StainingTissue Section StainingFrozen Mouse EmbryoCartilage VisualizationBone VisualizationEthanol DehydrationXylene ClearingLight MicroscopyProteoglycan StainingPhosphate Group Binding

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