Articolo metodologico

Colorazione di Giemsa per il saggio di formazione di colonie: una procedura di colorazione in vitro per valutare la capacità proliferativa delle cellule staminali mesenchimali

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8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Schlaefli, P. et al. Un metodo enzimatico per salvare le cellule staminali mesenchimali da campioni di midollo osseo coagulato. J. Vis. Exp. (2015)

In questo video, dimostriamo la procedura di colorazione Giemsa per valutare il potenziale proliferativo delle cellule staminali mesenchimali per formare colonie vitali. La colorazione di Giemsa è una colorazione neutra composta principalmente da coloranti azzurri ed eosina, che hanno un'affinità selettiva per i componenti cellulari a seconda della loro carica.

Protocollo

1. Semina per colture cellulari ad espansione e piastre CFU

  1. Risospendere le cellule (costituite da eritrociti e cellule mononucleate) in 50 ml di terreno basale: Alpha-MEM integrato con il 10% di siero fetale bovino (FBS), 100 U/ml di penicillina, 100 mg/ml di streptomicina e 2,5 mg/ml di amfotericina B. Contare le cellule diluite 1:10 in soluzione di Trypan Blue utilizzando una camera di Neubauer.
  2. Placcare le cellule in fiasche di coltura cellulare alla densità di 5 x 10⁷ cellule/cm² e incubare in un incubatore umidificato a 37 °C. Se disponibile, utilizzare condizioni ipossiche (5% di ossigeno). Per il controllo del saggio UFC, piastra 10⁹ cellule in una piastra di coltura cellulare di 10 cm di diametro.
  3. Dopo 3 giorni di coltura, le cellule staminali mesenchimali vengono attaccate al piatto di coltura cellulare mentre le altre cellule rimangono in sospensione. Sostituire il terreno con terreno basale integrato con 5 ng/ml di fattore di crescita basico dei fibroblasti (bFGF). Per il controllo del saggio UFC, trattare allo stesso modo la piastra di coltura cellulare.
  4. Continuare la coltura cellulare per un totale di 2 settimane, scambiando i terreni tre volte a settimana. Se le cellule superano l'80% di confluenza, dividere mediante tripsinizzazione. Per il controllo del test UFC, scambiare i terreni allo stesso modo, ma non dividere le cellule per il corso delle due settimane.

2. Colorazione di Giemsa per il test CFU

  1. Preparare 10 ml di soluzione di Giemsa per piatto: diluire la soluzione madre (7,6 g/l di Giemsa in glicerolo:metanolo) 1:10 in acqua sterile (preparare sempre una diluizione di lavoro fresca).
  2. Rimuovere il terreno dalla piastra di coltura cellulare e lavare le cellule con PBS. Prestare molta attenzione quando si applica il liquido sulla capsula di Petri ed evitare di lavare via le cellule.
  3. Fissare le cellule nel metanolo puro per 5 minuti a RT. Scartare il metanolo. Aggiungere la soluzione di Giemsa e incubare per 60 minuti in un'incubatrice umidificata a 37 °C.
  4. Lavare due volte con PBS. Asciugare all'aria la testa della piastra su un tovagliolo di carta. Conta le colonie manualmente. Il modo migliore per ottenere questo risultato è utilizzare un pennarello sul retro della lastra.

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Componenti medi basali
PenStrep 100XGibco15140122
FGF-basic umanoPeprotech100-18B
MEM alfa con nucleoside, con glutammina stabileAmimed1-23S50-I
FBS Calore InattivatoAmimed2-01F36-I
Amfotericina BApplichemAnno 1907
generico
PbsApplichem964,91
Macchia di GiemsaApplichemCodice: A0885
Consumo
Piastra di cottura cellulare PrimariaFalcone353803
Pallone per colture cellulari - Flask T300TPPCodice 90301
attrezzatura
Stripettes Pipetta sierologica 5mlCorning4487-200EA
Incubatrice umidificata Heracells 240Termo scientifico51026331
Heraeus Multifuge 1S-RTermo scientifico75004331

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Fissazione con metanoloColorazione con Azure BColorazione con Eosina YConteggio delle colonieCellule derivate dal midollo osseoColtura cellulare

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