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Articolo metodologico

Elettroforesi su gel di poliacrilammide: una tecnica analitica per rilevare solfati di eparan di varie lunghezze di catena isolati dal tessuto polmonare di topo

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8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: LaRiviere, W. B. et al., Rilevamento di glicosaminoglicani mediante elettroforesi su gel di poliacrilammide e colorazione con argento. J. Vis. Exp. (2021)

Questo video mostra la procedura di separazione dei solfati di eparan isolati dal tessuto polmonare di topo utilizzando l'elettroforesi su gel di poliacrilammide.

Protocollo

1. Elettroforesi su gel di poliacrilammide di glicosaminoglicani isolati e purificati

  1. Preparare in anticipo le soluzioni necessarie per l'elettroforesi su gel di poliacrilammide (PAGE) (Tabella 1).
    nota: Selezionare la percentuale di acrilammide della soluzione in gel risolutiva in base alle dimensioni dei glicosaminoglicani che si prevede siano nel campione. il 15% è raccomandato per la risoluzione di frammenti più grandi (di lunghezza superiore a 30 subunità disaccaridiche); 22% per frammenti più piccoli (<20 subunità disaccaridiche di lunghezza).
  2. Posizionare la cassetta vuota nel serbatoio PAGE. Fondere il gel risolutivo come segue: in una provetta da 15 mL, mescolare 10 mL di soluzione di gel risolutivo, 60 μL di persolfato di ammonio al 10% (deve essere preparato al momento) e 10 μL di TEMED (aggiungere TEMED per ultimo). Capovolgere delicatamente il tubo 2-3 volte. Utilizzare la pipetta per aggiungere rapidamente la soluzione di cui sopra a 10 mL alla cassetta. Sovrapporre con 2 mL di acqua deionizzata e filtrata e lasciare polimerizzare il gel risolutivo per 30 min.
    nota: Il seguente protocollo PAGE è stato ottimizzato per un sistema PAGE verticale che utilizza cassette di colata spesse 13,3 x 8,7 cm (larghezza x lunghezza) di 1,0 mm con un volume totale di circa 12 ml. È possibile utilizzare altri sistemi a cassette, ma possono richiedere l'ottimizzazione da parte dell'utente finale.
  3. Dopo che il gel risolutivo si è completamente polimerizzato, scartare l'acqua sovrapposta e gettare il gel di impilamento come segue: in una provetta da 15 mL, mescolare 3 mL della soluzione di gel da impilare, 90 μL di persolfato di ammonio al 10% (deve essere preparato al momento), 3 μL di TEMED (aggiungere TEMED per ultimo).
  4. Capovolgere delicatamente il tubo 2-3 volte. Utilizzare una pipetta per aggiungere rapidamente la soluzione di gel di impilamento sul gel risolutivo solidificato; Riempire la cassetta fino all'orlo. Inserire completamente il pettine incluso con il set-up. Lasciare polimerizzare il gel da impilare per 30 minuti.
  5. Una volta che il gel si è polimerizzato, assicurarsi che la striscia di nastro sia stata rimossa dalla parte inferiore della cassetta e riposizionare la cassetta nel gruppo serbatoio PAGE.
  6. Riempire le camere superiore e inferiore rispettivamente con il tampone della camera superiore e inferiore.
  7. Sciogliere i campioni essiccati del passaggio 1.11.4 nel volume minimo necessario di acqua deionizzata e filtrata (al massimo, il 50% del volume dei pozzetti nel gel PAGE). Miscelare 1:1 con il tampone di caricamento del campione. Caricare i campioni e le "scale" dell'oligosaccaride HS (vedere la Tabella 1) nel gel.
  8. Pre-eseguire il gel per 5 minuti a 100 V. Quindi far scorrere il gel a 200 V per 20-25 minuti (per un gel risolutore di poliacrilammide al 15%), 40-50 minuti (per un gel risolutore di poliacrilammide al 18%), 90-100 minuti (per un gel risolutore di poliacrilammide al 22%).
    nota: Potrebbe essere necessaria una certa ottimizzazione del tempo di funzionamento a 200 V. Il rosso fenolo migra davanti agli oligosaccaridi di eparina che sono lunghi 2 subunità polimeriche (cioè grado di polimerizzazione 2 o dp2); Il blu di bromofenolo migra prima di DP10-DP14. I migliori risultati si ottengono quando la tensione viene applicata in modo tale che la banda rossa del fenolo migri quasi, ma non del tutto, verso il fondo del gel. Regolare il tempo di esecuzione di conseguenza.

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Risultati

Tabella 1: Soluzioni necessarie per l'elettroforesi su gel di poliacrilammide di glicosaminoglicani purificati. Tutte le soluzioni devono essere filtrate (0,22 μm) prima dell'uso.

NOTA: Tutte le soluzioni devono essere filtrate (0.22μm) prima dell'uso.
soluzionericetta

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Persolfato di ammonio (solido)ThermoFisher ScientificoBP179-25Grado di elettroforesi
Sistema di purificazione dell'acqua Barnstead GenPure ProThermoFisher Scientifico10-451-217PKGQualsiasi sistema di deionizzazione/purificazione dell'acqua è un sostituto accettabile
Acido borico (solido)ThermoFisher ScientificoA73-500Grado di biologia molecolare
Blu bromfenolo (solido)ThermoFisher ScientificoB392-5
Criterio: cassetta vuota per PAGE (spessore 1,0 mm, 12+2 pozzetti)Bio-Rad3459901Qualsiasi sistema di cassette di colata PAGE di 1,0 mm di spessore sarà sufficiente
Criterio PAGE Sistema di celle (cella e alimentatore)Bio-Rad1656019Qualsiasi sistema PAGE verticale in gel comparabile funzionerà)
Sale disodico EDTA (solido)ThermoFisher Scientifico02-002-786Grado di biologia molecolare
Glicina (solida)ThermoFisher ScientificoG48-500Grado di elettroforesi
Acido cloridrico (liquido)ThermoFisher ScientificoA466-250
N,N'-metilene-bis-acrilammide (solido)ThermoFisher ScientificoBP171-25Grado di elettroforesi
Rosso fenolo (solido)ThermoFisher ScientificoP74-10Acido libero
Saccarosio (solido)ThermoFisher ScientificoBP220-1Grado di biologia molecolare
TEMED (N,N,N',N'-tetrametilendiammina)ThermoFisher ScientificoBP150-20Grado di elettroforesi
Base Tris (solida)ThermoFisher ScientificoBP152-500Grado di biologia molecolare
Unità filtrante sottovuoto, monouso, PES poro 0,22uM, volume 500mLThermoFisher ScientificoCodice: 569-0020Volumi alternativi e materiali filtranti accettabili
Acrilammide (solido)ThermoFisher ScientificoBP170-100Grado di elettroforesi
Decasaccharide derivato dall'eparina (dp10)Galeno scientificoHO10
Esasaccaharde derivato dall'eparina (dp6)Galeno scientificoHO06
Oligosaccaride derivato dall'eparina (dp20)Galeno scientificoHO20

Tag

Analisi dell eparan solfatoassemblaggio della cassetta per gelpolimerizzazione del gel di separazioneformazione del gel di concentrazionepreparazione del tampone per elettroforesicaricamento dei campioni di HSapplicazione del gradiente di tensionerilevamento mediante colorazione all argento