1. Generazione di BMM
- Seminare 1 x 107 cellule/10 mL in una piastra di coltura da 10 cm e aggiungere M-CSF 100 ng/mL. La concentrazione finale di M-CSF è di 100 ng/mL di terreno di coltura. Incubare la coltura a 37 °C, 5% CO2 per 3 giorni.
- Dopo 3 giorni, rimuovere il terreno di coltura, lavare energicamente le cellule con 10 mL di soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) due volte per rimuovere le cellule non aderenti, aggiungere 5 mL di tripsina-EDTA allo 0,02% a temperatura ambiente in PBS e incubare a 37 °C, 5% CO2 per 5 minuti.
- Staccare le cellule mediante pipettaggio accurato. Assicurarsi che le cellule siano state staccate osservando la coltura al microscopio (le cellule dovrebbero apparire arrotondate e fluttuanti nei terreni). Se le cellule rimangono attaccate, ripetere accuratamente il pipettaggio per staccarle. Quando le cellule sono state staccate, aggiungere 5 mL di α-MEM per inattivare la reazione.
- Raccogliere le cellule in una provetta conica da 50 mL e centrifugare a 300 x g per 5 min. Scartare il surnatante e lavare con 5 mL di α-MEM.
- Centrifugare a 300 x g per 5 min e risospendere il pellet in 10 mL di α-MEM.
- Eseguire un conteggio delle celle.
- Seminare 1 x 106 cellule/10 mL in una piastra di coltura da 10 cm e aggiungere M-CSF 100 ng/mL. La concentrazione finale di M-CSF è di 100 ng/mL di terreno di coltura. Incubare la coltura a 37 °C, 5% CO2 per 3 giorni.
2. Generazione di Osteoclasti da BMM come Precursori di Osteoclasti
- Dopo 3 giorni, raccogliere le cellule attaccate che rappresentano BMM come precursori degli osteoclasti, seguendo i passaggi 1.2-1.7.
- Seminare BMM a 5 x 104 cellule/200 μL di α-MEM in una piastra a 96 pozzetti. Aggiungere RANKL per una concentrazione finale di 50 ng/mL o TNF-α per una concentrazione finale di 100 ng/mL. Aggiungere M-CSF per una concentrazione finale di 100 ng/mL a ciascun pozzetto.
- Aggiungere l'anticorpo anti-c-fms (concentrazioni finali di 0, 1, 10, 100, 1000 ng/mL) a ciascun pozzetto.
- Incubare a 37 °C, 5% CO2 per 4 giorni. Cambia i media a giorni alterni per 4 giorni.
3. Colorazione resistente alla fosfatasi acida (TRAP) resistente al tartrato
- Dopo 4 giorni di incubazione, aspirare delicatamente il terreno di coltura di ciascun pozzetto. Lavare ogni pozzetto una volta con 200 μL di temperatura ambiente 1x PBS.
- Aggiungere 200 μl di formalina al 10% in ciascun pozzetto per la fissazione e incubare per 1 ora a temperatura ambiente. Aspirare la formalina e lavare ogni pozzetto 3 volte con acqua deionizzata.
- Aggiungere 200 μl di Triton X-100 allo 0,2% in PBS in ciascun pozzetto per la permeabilizzazione e incubare per 1 ora a temperatura ambiente. Aspirare il Triton X-100 e lavare ogni pozzetto 3 volte con acqua deionizzata.
- Aggiungere 200 μl di soluzione colorante TRAP in ciascun pozzetto. Visualizza la macchia al microscopio. Ci vorranno dai 10 ai 30 minuti perché la macchia si sviluppi correttamente.
- Aspirare la macchia e lavare ogni pozzetto con acqua deionizzata 3 volte e asciugare all'aria. Conservarlo a temperatura ambiente per utilizzarlo in ulteriori osservazioni.