1. Saggio di uccisione K562
NOTA: Le cellule K562 devono essere coltivate in coltura a 37 °C e 5% di CO2 con terreno completo RPMI fino a raggiungere l'80% di confluenza prima del test.
- Preparare una soluzione madre di 5 mM di carbossifluoresceina succinimidil estere (CFSE) aggiungendo 18 μl di DMSO al flaconcino.
- Diluire il WS-CM o la nicotina in una piastra a 96 pozzetti utilizzando il terreno completo RPMI fino a un volume totale di 100 μl/pozzetto per ottenere le unità di equi-nicotina o le concentrazioni di nicotina desiderate per ciascun pozzetto.
cautela: La nicotina è estremamente tossica e pericolosa per l'ambiente.
- Aggiungere 100 μl di PBMC nel terreno completo RPMI a una concentrazione di 1,5 x 106 cellule/pozzetto. Il volume totale delle cellule con WS-CM o nicotina sarà di 200 μl/pozzetto.
- Coprire la piastra e incubare per 3 ore a 37 °C e 5% di CO2.
- Lavare le cellule K562 aggiungendo 10 ml di DPBS e centrifugare a 400 x g per 8 min a RT.
- Risospendere le cellule con 10 ml di DPBS e contare le cellule K562.
- Preparare una soluzione di lavoro CFSE aggiungendo 1 μl di soluzione madre CFSE a 1 ml di DPBS.
- Aggiungere 1 ml della soluzione di lavoro CFSE a 1 ml della sospensione cellulare K562 contenente 1 - 2 x 107 cellule. Agitare e incubare con precisione per 2 minuti a RT.
- Aggiungere immediatamente 200 μl di FBS. Agitare e incubare con precisione per 2 minuti a RT.
- Aggiungere 10 ml di terreno completo RPMI e centrifugare la provetta a 400 x g per 8 minuti a RT.
- Rimuovere il surnatante RPMI, rompere il pellet, risospendere le cellule con 10 ml di terreno completo RPMI e contare le cellule K562 marcate con CFSE.
- Lavare i PBMC centrifugando la piastra a 300 x g per 3 minuti a RT. Aspirare il surnatante travasando il liquido. Riposizionare il coperchio e vorticare la parte inferiore della piastra. Aggiungere 200 μl di terreno completo RPMI e ripetere la fase di lavaggio ancora una volta.
- Aggiungere cellule K562 marcate con CFSE a un rapporto di 1:15 (100.000 K562s:1,5 x 106 PBMCs) a ciascun pozzetto del campione della piastra PBMC e incubare ulteriormente per 5 ore a 37 °C e 5% CO2.
- Lavare la miscela cellulare centrifugando a 300 x g per 3 minuti a RT. Aspirare il surnatante scartando il liquido. Posizionare il coperchio e far vorticare il fondo del piatto.
- Aggiungere 200 μl di tampone di scorrimento e ripetere ancora una volta la fase di lavaggio descritta al punto 14.
- Aggiungere 95 μl di tampone di corsa seguiti da 5 μl di 7AAD a ciascun pozzetto per un volume totale di 100 μl/pozzetto. Incubare la piastra al buio a RT per 15 minuti.
- Aggiungere 100 μl di tampone di corsa a ciascun pozzetto e trasferire l'intero volume di sospensione cellulare da ciascun pozzetto della piastra alle provette a grappolo e acquisire i campioni sul citometro a flusso.
- Determinare la percentuale di cellule 7AAD-positive e CFSE-positive utilizzando il software di analisi della citometria a flusso.