Articolo metodologico

Una tecnica di cromatografia di affinità per la purificazione di anticorpi monoclonali

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Elgundi, Z., et al. Produzione e purificazione su scala di laboratorio di un anticorpo terapeutico. (2017).

Questo video mostra una tecnica per purificare gli anticorpi monoclonali dal surnatante di coltura ottenuto da una coltura cellulare produttrice di anticorpi. Il processo prevede l'utilizzo di una matrice di perle di agarosio reticolate con proteina A coniugata, che immobilizza gli anticorpi nel surnatante sulle perle, consentendo un'efficace separazione dai contaminanti. Applicando un tampone di eluizione a basso pH, l'interazione proteina A-anticorpo viene allentata, facilitando la raccolta delle frazioni contenenti anticorpi.

Protocollo

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1. Purificazione degli anticorpi mediante cromatografia di affinità utilizzando un sistema automatizzato di cromatografia liquida di proteine veloci (FPLC)

NOTA: La seguente procedura può essere generalmente applicata alla maggior parte dei sistemi automatizzati. La purificazione può essere eseguita a temperatura ambiente o a 4 °C (se il sistema FPLC viene conservato in una stanza fresca). È possibile eseguire una serie di test di scouting per identificare le condizioni di purificazione ottimali, tra cui la matrice della colonna appropriata, il tampone di legame, il tampone di eluizione e il pH per garantire il massimo recupero dell'anticorpo purificato dai terreni condizionati (fare riferimento alla sezione Risultati). Le condizioni ottimali dipendono dall'anticorpo o dalla proteina da purificare. Le purificazioni sono state eseguite su un sistema FPLC automatizzato. Le purificazioni sono state eseguite a temperatura ambiente utilizzando una colonna di proteina A da 5 ml.

  1. Preparare i seguenti tamponi utilizzando acqua ultrapura e regolarli al pH consigliato, quindi filtrare con un filtro da 0,22 μm.
    1. Preparare 1 L di soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) pH 7,4 (tampone legante) miscelando i seguenti elementi: 0,14 M NaCl, 0,0027 M KCl, 0,01 M Na2HPO4 e 0,001 M KH2PO4. Se necessario, regolare il pH prima di filtrare il tampone.
    2. Preparare 500 ml di glicina-HCl 0,1 M pH 2,7 (tampone di eluizione). Regolare il pH prima di filtrare il tampone.
    3. Preparare 50 ml di 1 M Tris pH 9.0 (tampone di neutralizzazione).
  2. Assicurarsi che tutti i collegamenti di alimentazione e comunicazione del sistema con il computer siano effettuati. I dispositivi devono essere visibili nel modulo software "Controllo del sistema". Assicurarsi che la cella UV sia impostata su una lunghezza d'onda di 280 nm. Opzionale: calibrare il pHmetro se collegato e da utilizzare.
  3. Immergere i tubi di ingresso di A, B e la pompa del campione in acqua ultrapura per lavare il sistema. Spurgare le pompe con una siringa se c'è aria nel tubo o se si sospetta la presenza di aria nel sistema. Lavare l'impianto con acqua mediante azionamento manuale tramite il controller di sistema o tramite un metodo automatizzato. Osservare che la pressione, la conducibilità, il tracciamento UV280 e il pH rimangano costanti e che il limite di pressione per la colonna non venga superato secondo le specifiche del produttore.
    nota: Le anomalie possono indicare aria o ostruzione nel sistema che dovrebbero essere affrontate prima di procedere.
  4. Nel modulo di controllo del sistema, avviare manualmente la portata a 1 ml/min tramite la pompa A in posizione di carico (bypassando il circuito del campione) o di iniezione (attraverso il circuito del campione) per iniziare a collegare la colonna. Scollegare il tubo del sistema dall'ingresso della colonna e rimuovere il tappo collegato all'ingresso della colonna.
    1. Lasciare che l'acqua scorra dal tubo del sistema in senso gocciolante sulla parte superiore della colonna, quindi collegare il tubo del sistema alla colonna. Avere l'ingresso della colonna e il raccordo di ingresso traboccanti di gocce d'acqua garantisce un collegamento privo di bolle d'aria.
  5. Collegare l'uscita della colonna all'uscita a valle e verificare che tutti i raccordi siano ben fissati. Con la colonna ora collegata al sistema, non superare i limiti di pressione massima e la portata come indicato nelle specifiche della colonna.
  6. Colonna di lavaggio con 5 volumi di colonna (CV) di acqua. Se necessario, continuare il lavaggio della colonna fino a quando il tracciato UV280 non si è stabilizzato.
  7. Immergere le provette di ingresso di A nel tampone di legame, B nel tampone di eluizione e la pompa del campione nel tampone di legatura per bilanciare il sistema nei tamponi corretti. Riempire i tubi di ingresso con il tampone utilizzando PumpWash con l'operazione manuale.
  8. Nel modulo 'Editor dei metodi' del software, utilizzare la procedura guidata per impostare un metodo di cromatografia di affinità per la colonna che si intende utilizzare.
    nota: I sistemi FPLC automatizzati sono dotati di metodi precompilati con le impostazioni consigliate (ad es. portata e limite di pressione) e fasi di esecuzione in base alla colonna (produttore, matrice e dimensione) selezionata per la purificazione.
    1. Utilizzare i seguenti passaggi di esecuzione per la cromatografia di affinità della proteina A:
      1. Equilibrare il sistema con 5 CV di tampone legante e raccogliere il flusso nel contenitore dei rifiuti.
      2. Caricare il campione sulla colonna (il volume da caricare viene specificato manualmente nel metodo) e raccogliere il flusso in un contenitore separato.
      3. Sistema di lavaggio con 5 CV di tampone di legatura e raccolta del flusso in un contenitore separato.
      4. Eluire la colonna con frazionamento isocratico a 5 CV utilizzando il tampone di eluizione e raccogliere il campione di anticorpi purificati come frazioni mediante collettore di frazioni.
      5. Equilibrare il sistema con 5 CV di tampone legante e raccogliere il flusso nel contenitore dei rifiuti.
  9. Una volta impostato il metodo, specificare il volume dei supporti condizionati da applicare alla colonna e salvare il metodo.
    nota: Il volume specificato nel metodo deve essere inferiore di 5-10 ml rispetto al volume effettivo per evitare l'introduzione di aria durante l'esecuzione del campione. Il volume specificato utilizzato in questo protocollo è 90-120 ml.
  10. Immergere il tubo della pompa del campione nel recipiente contenente il fluido condizionato.
  11. Preparare un contenitore separato per raccogliere il flusso del campione attraverso il tubo di uscita specificato.
    nota: È importante raccogliere il flusso nel caso in cui si verifichi un errore durante la corsa o la capacità di legatura della colonna venga superata, richiedendo la riapplicazione del flusso alla colonna o la ripetizione della purificazione.
  12. Preparare le provette di raccolta nel raccoglitore di frazioni. Aggiungere 100 μl di tampone di neutralizzazione per 1 ml di volume di frazione. Il sistema FPLC eluirà automaticamente le frazioni nelle provette di raccolta.
  13. Nel modulo 'Controllo di sistema' del software, aprire il metodo da eseguire.
    nota: L'esecuzione del metodo viene avviata in una serie di pagine che includono il controllo delle variabili del metodo, l'impostazione del raccoglitore di frazioni e la definizione del nome del file dei risultati e della posizione di archiviazione.
  14. Fare clic su AVVIA per avviare l'esecuzione. La corsa può essere monitorata nel modulo "Controllo del sistema".
  15. Al termine del ciclo di purificazione, controllare il cromatogramma risultante nel modulo "Valutazione" del software di sistema.
  16. Combinare tutte le frazioni contenenti proteine in una provetta separata, scambiare il tampone e concentrarlo in PBS utilizzando un dispositivo di filtraggio centrifugo con peso molecolare tagliato a 30 kDa. Eseguire le fasi di centrifugazione secondo le istruzioni del produttore.
  17. Misurare la concentrazione di anticorpi utilizzando il dosaggio dell'acido bicinchoninico (BCA) secondo le istruzioni del produttore.
  18. Se è necessario eseguire un'altra operazione di purificazione, adescare il tubo della pompa del campione nel tampone di legame e ripetere i passaggi 1.9-1.14.
  19. Al termine delle operazioni di purificazione, immergere i tubi di ingresso di A, B e la pompa del campione in acqua ultrapura e lavare il sistema e la colonna come eseguito nella fase 3.
  20. Immergere i tubi A, B e della pompa di campionamento in etanolo al 20% e ripetere la procedura di lavaggio per lo stoccaggio del sistema e della colonna.
  21. Scollegare la colonna dall'uscita a valle e sostituire il tappo della colonna, quindi scollegare la colonna all'ingresso e sostituire il tappo, ricollegare i tubi al sistema. Conservare la colonna a 4 °C.

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) in compresse, pH 7,4, 100 ml09-2051-100Astrale Scientifico
HiTrap Protein A High Performance, 1 colonna da 5 mlGE17-0403-01Sigma-Aldrich
AKTApurifier 10028406266GE SanitàSistema FPLC automatizzato, che può includere una pompa di campionamento P-960 e un collettore di frazioni Frac-920.
Glicina-HClG2879Sigma-Aldrich
Acido citrico, monoidratoBIOC2123Astrale Scientifico
Citrato di sodio, sale trisodico diidratoBIOCB0035Astrale Scientifico
1 M Soluzione di Tris-HCl pH 9,0BIOSD8146Astrale Scientifico
Filtri ultra centrifughi Amicon (30 MWCO)UFC803008/UFC903008Merck MilliporeUtilizzato per tamponare, scambiare e concentrare proteine purificate.
Kit per il dosaggio dell'acido bicinconninico (BCA) PierceCodice 23227Thermo Fisher Scientifico
Sistema BLItz45-5000fortéBIOStrumento utilizzato per misure di interferometria a biostrato (BLI).
Biosensori di proteina ACodice 18-5010fortéBIO

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