Articolo metodologico

Una tecnica di colorazione dell'organo a montaggio intero per l'imaging tridimensionale del rene

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Hasegawa, S., et al. Colorazione tridimensionale dell'intero rene con CUBIC. J. Vis. Exp. (2022).

Questo video mostra un test per la colorazione dell'intera montatura di reni murini utilizzando un metodo di pulizia dei tessuti chiamato CUBIC (clear, unobstructed brain/body imaging cocktails and computational analysis) e la colorazione immunofluorescente. Il rene viene sottoposto a chiarificazione tissutale, in cui il rene viene delipidatato, decolorato e trattato con una soluzione di corrispondenza dell'indice di rifrazione per rendere il tessuto trasparente per un imaging tridimensionale ottimale. Il tessuto viene colorato con anticorpi marcati in fluorescenza per rivelare i nervi simpatici e le arterie nel tessuto al microscopio a foglio luminoso.

Protocollo

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Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Preparazione animale e fissazione dei reni

  1. Eseguire la fissazione della perfusione seguendo i passaggi seguenti.
    1. Anestetizzare il topo mediante inalazione di isoflurano (3%, 2,0 L/min) e somministrazione intraperitoneale di medetomidina cloridrato (0,3 mg/kg), butorfanolo tartrato (5 mg/kg) e midazolam (4 mg/kg) (vedere la Tabella dei materiali).
    2. Perfondere l'animale con 20 mL di soluzione salina tamponata con fosfato (PBS, pH 7,4) e 30 mL di paraformaldeide (PFA) al 4% in tampone fosfato (PB) attraverso il ventricolo sinistro del cuore.
  2. Eseguire la fissazione per immersione subito dopo la fissazione per perfusione e il prelievo renale.
    1. Immergere il rene in PFA al 4% a 4 °C per altre 16 ore, quindi lavarlo con PBS per 2 ore (tre volte)9 (Figura 1).
      cautela: La formaldeide e la paraformaldeide sono irritanti tossici. Maneggiare i reagenti in una cappa aspirante con adeguati dispositivi di protezione individuale.

2. Decolorazione e delipidazione

  1. Preparare CUBIC-L (Clear, Unobstructed Brain/Body Imaging Cocktails and Computational analysis) per la decolorazione e la delipidazione costituiti dal 10% in peso di Triton X-100 e dal 10% in peso di N-butildietanolammina (vedere Tabella dei materiali), seguendo i rapporti precedentemente pubblicati.
  2. Eseguire la decolorazione e la delipidazione con CUBIC-L seguendo i passaggi seguenti.
    1. Immergere il rene fisso in 7 mL di CUBIC-L al 50% (v/v) (miscela 1:1 di acqua e CUBIC-L) in una provetta a fondo tondo da 14 mL (vedere la Tabella dei materiali) agitando delicatamente a temperatura ambiente per 6 ore (Figura 2A). Quindi, immergerlo in 7 mL di CUBIC-L in una provetta a fondo tondo da 14 mL agitando delicatamente a 37 °C per 5 giorni.
    2. Aggiornare CUBIC-L ogni giorno durante questo processo. Dopo il processo di decolorazione e delipidazione, lavare il rene con PBS a temperatura ambiente per 2 ore (tre volte) (Figura 1). Utilizzare un cucchiaio di erogazione per la manipolazione del campione (Figura 2B).

3. Colorazione immunofluorescente a montaggio intero

  1. Preparare i tamponi di colorazione.
    1. Preparare il tampone di colorazione per gli anticorpi primari mescolando Triton X-100 allo 0,5% (v/v), caseina allo 0,5% in PBS e sodio azide allo 0,05%.
    2. Preparare il tampone di colorazione per gli anticorpi secondari mescolando Triton X-100 allo 0,5% (v/v), caseina allo 0,1% in PBS e sodio azide allo 0,05%.
  2. Eseguire la colorazione con anticorpi primari.
    1. Immunocolorare il rene delipidato con anticorpi primari (1:100 o 1:200, vedi Tabella dei materiali) nel tampone di colorazione a 37 °C con agitazione delicata per 7 giorni.
      nota: La quantità di tampone di colorazione necessaria per un rene è di 500-600 μl (Figura 2C).
    2. Lavare il rene con Triton X-100 allo 0,5% (v/v) in PBS (PBST) a temperatura ambiente per 1 giorno (Figura 1).
  3. Eseguire la colorazione con anticorpi secondari.
    1. Immunocolorare il rene con anticorpi secondari (1:100 o 1:200, vedi Tabella dei materiali) nel tampone di colorazione a 37 °C agitando delicatamente per 7 giorni. Lavare il rene con PBST a temperatura ambiente per 1 giorno (Figura 1).
    2. Dopo la fissazione, immergere il rene in formaldeide all'1% in PB (miscela 1:36 di formaldeide al 37% e PB) per 3 ore e lavarlo con PBS a temperatura ambiente per 6 ore (Figura 1).

4. Corrispondenza dell'indice di rifrazione (RI)

  1. Preparare CUBIC-R+.
    1. Preparare CUBIC-R mescolando il 45% in peso di 2,3-dimetil-1-fenil-5-pirazolone/antipirina e il 30% in peso di nicotinamide (cfr. tabella dei materiali).
    2. Preparare CUBIC-R+ per la corrispondenza dell'indice di rifrazione (RI) aggiungendo lo 0,5% di N-butildietanolammina a CUBIC-R seguendo i rapporti precedentemente pubblicati.
  2. Eseguire la corrispondenza RI.
    1. Immergere il rene in 7 mL di CUBIC-R+ al 50% (v/v) (miscela 1:1 di acqua e CUBIC-R+) in una provetta a fondo tondo da 14 mL agitando delicatamente a temperatura ambiente per 1 giorno. Quindi, immergerlo in 7 mL di CUBIC-R+ in una provetta a fondo tondo da 14 mL agitando delicatamente a temperatura ambiente per 2 giorni (Figura 1).
      nota: Sebbene il rene galleggi al 50% in CUBIC-R+ all'inizio della corrispondenza dell'RI, affonda e diventa trasparente in CUBIC-R+ alla fine del processo (Figura 2D).

5. Acquisizione e ricostruzione delle immagini

  1. Immergere il rene con corrispondenza RI in una miscela di olio siliconico (RI = 1,555) e olio minerale (RI = 1,467) (55:45) durante l'acquisizione dell'immagine (RI = 1,51) (Figura 3).
  2. Acquisisci immagini 3D dell'intero rene con un microscopio fluorescente a foglio luminoso personalizzato (vedi Tabella dei materiali). Raccogli tutti i dati delle immagini grezze in un formato TIFF a 16 bit. Visualizza e cattura le immagini renderizzate in 3D con il software di analisi delle immagini (Imaris, vedi Tabella dei materiali).

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Risultati

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Figura 1: Pulizia dei tessuti e colorazione immunofluorescente a montaggio intero. La pulizia dei tessuti mediante CUBIC è un processo in due fasi: delipidazione (CUBIC-L) e corrispondenza dell'indice di rifrazione (RI) (CUBIC-R+). La colorazione dell'intero montaggio viene eseguita dopo il processo di delipidazione. Barra della scala = 10 mm. L'immagine è riprodotta da Hasegawa et al.

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Provetta in PP ad alta chiarezza a fondo tondo da 14 mLFalcone352059Pulizia dei tessuti, colorazione, lavaggio
2,3-dimetil-1-fenil-5-pirazolone/antipirinaIndustria chimica di TokyoD1876CUBIC-R+
Soluzione di formaldeide al 37%Nacalai TesqueCodice: 16223-55Fissaggio post
Soluzione tampone di fosfato di paraformaldeide al 4%Nacalai TesqueCodice 09154-85Fissazione renale
Alexa Flour 555-coniugato asino anti-pecora anticorpo IgGInvitrogenCodice A-21436Anticorpi secondari (1:100)
Alexa Flour 647-asino coniugato anticorpo IgG di coniglioInvitrogenCodice A-31573Anticorpi secondari (1:200)
Anticorpo anti-acquaporina 2 (AQP2)Abcamab199975Anticorpi primari (1:100)
Anticorpo anti-podocinaSigma-AldrichP0372Anticorpi primari (1:100)
Anticorpo anti-cotrasportatore di glucosio 2 (SGLT2)Abcamab85626Anticorpi primari (1:100)
Anticorpo anti-tirosina idrossilasi (TH)AbcamAB113Anticorpi primari (1:100)
Anticorpo anti-actina muscolare liscia α (α-SMA)Abcamab5694Anticorpi primari (1:200)
Caseina bloccante in PBSThermo Fisher ScientificoTelefono 37528Tampone di colorazione
Tartrato di butorfanoloMeijiCodice: 5526anestetico
C57BL/6NJclNippon Bio-Supp.CenterN/ACeppo di topo
ImarisPiano bitN/ASoftware di analisi delle immagini
Microscopio macro-zoomOlimpoMVX10L'unità di osservazione del microscopio su misura
Medetomidina cloridratoKyoritsu-SeiyakuCodice 8656anestetico
MidazolamSANDOZ27803229anestetico
olio mineraleSigma-AldrichCodice: M8410Olio da immersione
N-butildietanolamminaIndustria chimica di TokyoB0725CUBIC-L, CUBIC-R+
nicotinammideIndustria chimica di TokyoN0078CUBIC-R+
Polietilenglicole mono-p-isoottilfenil etere/Triton X-100Nacalai TesqueCodice 12967-45CUBIC-L, PBST
Olio siliconico HIVAC-F4Shin-Etsu Chimico50449832Olio da immersione
Aziduro di sodioWakoCodice 195-11092Tampone di colorazione

Ristampe e permessi

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Rendiemento del tessuto renaleMetodo CUBICColorazione immunofluorescenteMicroscopia a foglio di luceColorazione dei nervi simpaticiVisualizzazione delle arterieAdattamento dell indice di rifrazioneTrasparenza tissutale

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