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Rilevamento di proteine prioniche anomale nel tessuto cerebrale mediante immunoistochimica

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

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Fonte: Orge, L., et al. Rilevamento di proteine prioniche anormali mediante immunoistochimica. J. Vis. Exp. (2023).

Questo video mostra una tecnica per rilevare la proteina prionica mal ripiegata nelle sezioni cerebrali utilizzando l'immunoistochimica. Dopo aver trattato la sezione cerebrale con acido formico per denaturare i prioni e ridurre al minimo il rischio di infezione, oltre a smascherare gli aggregati prionici utilizzando il recupero degli epitopi indotto dal calore, le sezioni vengono immunomarcate per gli aggregati di proteine prioniche mal ripiegate e osservate al microscopio.

Protocol

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1. Sezionamento dei tessuti e preparazione dei vetrini

  1. Tagliare sezioni di tessuti fissati in formalina e inclusi in paraffina (FFPE) a uno spessore di 3-5 μm utilizzando un microtomo.
  2. Far galleggiare le sezioni su acqua purificata con una temperatura di circa 10 °C inferiore al punto di fusione della paraffina utilizzata. Sollevare le sezioni dall'acqua su vetrini da microscopio appositamente trattati (vedi Tabella dei materiali). Lasciare che l'acqua scarichi completamente dagli scivoli.
  3. Incubare i vetrini per una notte a 50 °C per migliorare l'adesione dei vetrini dei tessuti.
    nota:

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Disclosures

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Etanolo assolutoLabchemLB0507-9010non diluito
            Diluito al 90%, 70% e 50% in acqua distillata
Complesso avidina-biotina e perossidasi
Kit Vectastain Elite ABC Perossidasi
Laboratori VectorPK-6100Preparare e mescolare delicatamente 30 minuti prima dell'uso secondo le istruzioni del kit. Non mescolare dopo essere stati in piedi.
Anticorpo secondario biotinilato (IgG H+L anti-topo di cavallo)Laboratori VectorBA-2000-1.5Diluire a 1/200 in TBS con il 10% di siero normale di cavallo. Preparare il volume richiesto in base al numero di sezioni.
Cromogeno Diaminobenzidina - DAB, kit substrato, perossidasiLaboratori VectorSK-4100Preparare prima dell'uso secondo le istruzioni del kit.
Utilizzare 400 μl di soluzione per sezione.
Camera a pressione Pascal di DakoCytomationDAKOEpisodio 2800
Ematossilina di Ehrlich:
Etanolo assolutoLabchemLB0507-9010
Acido acetico glacialeMerckCodice 101830
Allume di potassioMerckCodice 1.01047.1000
glicerinaMerckCodice 1.04091.1000
Soluzione endogena di perossidasi in blocco (concentrazione al 3% H2O2):40 mL di perossido di idrogeno (30% p/p) in 360 mL di metanolo.
Preparare prima dell'uso
Perossido di idrogeno (30% p/p)ScharlauHI0136
metanoloSigma AldrichCodice 322415-2L
Acido formico 98%MerckCodice 1.00264.1000non diluito
microtomoShandon-AS325microtomoShandon-AS325
Siero normale (20%) soluzione in blocco in TBS:
Siero normale per cavalli
Gibco16050-122Preparare il volume finale in base al numero di sezioni del saggio
(200 μl di soluzione per sezione).
Anticorpo primario anti-PrP Mouse MAb 2G11BIORADMCA2460PrP 146-R154R171182
Ovini compresa la scrapie atipica, cervina, felina. Non adatto per bovini.
In base al numero di sezioni del test (200 μL di soluzione per sezione) e alla diluizione dell'anticorpo, preparare il volume finale in TBS integrato con il 10% del siero normale della specie in cui è stato sollevato l'anticorpo secondario (siero normale di cavallo)
Diluizione anticorpale usuale: MAb 2G11 1/100 ma la diluizione di lavoro dovrebbe essere stabilita in ogni nuovo lotto per ottenere la concentrazione per fornire l'etichettatura più forte con il fondo più basso. Per la conservazione, congelare volumi di aliquote di almeno 10 μl in microprovette sterili. Scongelare e utilizzare un'aliquota alla volta.
Anticorpo primario anti-PrP Mouse MAb 12F10Azienda chimica delle CaymanCodice: 189710PrP142-160
Bovino, non adatto all'ovino
Diluizione anticorpale abituale: 1/200 ma deve essere stabilita anche la diluizione operativa. Preparati come MAb 2G11
Camera Shandon CoverplateTMTermo Scientifico72110017
Shandon Sequenza® Centro di colorazione immunitariaTermo Scientifico73300001
Shandon Sequenza® Immunstaining portavetriniTermo Scientifico73310017
Soluzione tampone citrato (10 mM pH 6,1):2,55 g di citrato trisodico diidrato e 0,255 g di acido citrico in un litro di acqua purificata.
Regolare il pH della soluzione di lavoro a 6,1 utilizzando 10 mM di soluzione di acido citrico (1,05 g di acido citrico in 500 mL di acqua purificata)
Preparare il giorno del test.
Citrato trisodico diidratoSigma-aldrichS4641-500G
acido citricoSigma AldrichCodice: C0759
Barattolo e cestello per la colorazioneDeltalabAnno 19360
Anno 19361
Vetrini per microscopio Superfrost PlusVWRCodice 631-0108
Soluzione salina tamponata a tre (TBS) (50 mM DI BASE TRIZMA; 0,8% NaCI; pH 7,6):10xTBS (soluzione madre 0,5 M TRIZMA BASE; 8% NaCI; pH 7,6):
TRIZMA BASE 60,57 g e NaCl 80 g in 800 ml di acqua purificata. Regolare il pH della soluzione madre utilizzando acido cloridrico al 37% e il volume finale a un litro con acqua purificata (mantenere 5± 3 °C fino a 2 mesi)
Diluire la soluzione madre TBS 1/10 il giorno del saggio.
BASE TRIZMASigma AldrichT6066-1KG
Cloruro di sodio (NaCl)Merck106404
xileneReagenti Panreac Applied Chem ITW251769non diluito

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Prion Protein DetectionImmunohistochemistryFormic Acid TreatmentHeat Induced Epitope RetrievalEndogenous Peroxidase InactivationPrimary Antibody BindingBiotinylated Secondary AntibodyAvidin Biotin ComplexChromogenic SubstrateMicroscopic Observation

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