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Titolo Incapsulamento cella di goccioline

DOI:

10.3791/316

October 1st, 2007

In This Article

Protocol

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NIH3T3 cellule preparazione:

Le cellule A. espulsione

  1. Trypsinize cellule, poi diluire 1:1 con mezzi di comunicazione cellulare, e il trasferimento da un pallone T75 ad un tubo da 15 ml Falcon
  2. Spin le cellule in una pallina da centrifugazione, aspirare il surnatante e lavare le cellule con DPBS
  3. Spin le cellule in una pallina di nuovo e aspirare il surnatante
  4. Risospendere le cellule in mezzi di comunicazione
  5. Determinare la densità delle cellule con emocitometro (~ 200 x 10 4 cellule / ml per T75 fiasco)
  6. Cellula soluzione centrifuga, aspirare il surnatante e risospendere in giusta quantità di supporti per la variazione delle concentrazioni di cellule

B. cella di espulsione

  1. Cellule vortice prima di utilizzare per l'espulsione
  2. Trasferire 200 ul di soluzione di cella in siringa
  3. Impostare la modalità appropriata sul generatore di impulsi
    1. Per espellere gocce singole e multiple gocce (treni), insieme al generatore di impulsi "E. BUR" modalità
    2. Per l'espulsione delle gocce continuo, generatore di impulsi impostato in modalità "NORM"
  4. Modificare le impostazioni del segnale
    1. Impostare il livello alto e basso livello di tensione di uscita: HIL a 5 V e LOL a 0 V e assicurarsi che il "LIM" LED è acceso
    2. Impostare il segnale come un impulso quadrato
    3. Modificare la quantità di tempo la valvola solenoide è aperta per l'espulsione delle gocce, modificando il valore di "WID" o cambiando duty cycle ("dovere")
    4. Modificare la frequenza di espulsione, modificando il valore di "PER"
    5. Modificare il numero di goccioline espulse in uno scoppio, modificando il valore di "BUR"
  5. Cellula soluzione di espulsione su substrato preparato per l'imaging con microscopio

C. colorazione

  1. Portare soluzione colorante con 0,5 microlitri calceina-AM e 2 omodimero microlitri di etidio per ml di DPBS
  2. Immergere substrato preparato in soluzione colorante
  3. Lasciare campione ad incubare per 10 minuti a 37 ° C prima di imaging

Esperimento di convalida

  1. Su una Nikon Eclipse TE-2000 Microscopio U fluorescente
    1. Spot software avanzato (Diagnostics, Inc.)
    2. Live / Dead Assay

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Disclosures

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
MicroscopioNikon InstrumentsEclipse TE-2000 U
EiettoreFrequenza di funzionamento: 1 KHz, 30psi, 50nl~0,5ul. Driver della valvola 12V: 2,5 Amp di corrente di azionamento
SerbatoioColemanPowermate CT5Aria pressurizzata: 30 PSI
Regolatori di pressione MarshBellofram
Generatoredi impulsi HP8112AGenerazione della frequenza di attuazione: 50 MHz
XYZ-stageNewmark SystemsWith Motore passo-passo: 6 pollici di corsa xy-stage (NLS4-6-25), 2,5 pollici di corsa z-stage (NLS4-2.5-25), controller a 3 assi (NSC-G3), risoluzione 0,1um
NIH 3T3Fibroblastilinea
TripsinaSoluzione allo 0,05%
cellulare NIH 3T3
DPBSTampone
T75Palloni per colture tissutali
Provettein plastica 15 ml, per colture tissutali
fluorescente di celle a solenoide d'aria portatile da 5 galloni della cellulareTerreno coniche

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Cell EncapsulationDroplet PrintingCell PrintingSolenoid ValveMotorized StageCell DensityHemocytometerLive Dead AssayCalcium AMEthidium Homodimer

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