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Articolo metodologico

Titolo Incapsulamento cella di goccioline

8.3K visualizzazioni

DOI:

10.3791/316

1 ottobre 2007

In questo articolo

Protocollo

NIH3T3 cellule preparazione:

Le cellule A. espulsione

  1. Trypsinize cellule, poi diluire 1:1 con mezzi di comunicazione cellulare, e il trasferimento da un pallone T75 ad un tubo da 15 ml Falcon
  2. Spin le cellule in una pallina da centrifugazione, aspirare il surnatante e lavare le cellule con DPBS
  3. Spin le cellule in una pallina di nuovo e aspirare il surnatante
  4. Risospendere le cellule in mezzi di comunicazione
  5. Determinare la densità delle cellule con emocitometro (~ 200 x 10 4 cellule / ml per T75 fiasco)
  6. Cellula soluzione centrifuga, aspirare il surnatante e risospendere in giusta quantità di supporti per la variazione delle concentrazioni di cellule

B. cella di espulsione

  1. Cellule vortice prima di utilizzare per l'espulsione
  2. Trasferire 200 ul di soluzione di cella in siringa
  3. Impostare la modalità appropriata sul generatore di impulsi
    1. Per espellere gocce singole e multiple gocce (treni), insieme al generatore di impulsi "E. BUR" modalità
    2. Per l'espulsione delle gocce continuo, generatore di impulsi impostato in modalità "NORM"
  4. Modificare le impostazioni del segnale
    1. Impostare il livello alto e basso livello di tensione di uscita: HIL a 5 V e LOL a 0 V e assicurarsi che il "LIM" LED è acceso
    2. Impostare il segnale come un impulso quadrato
    3. Modificare la quantità di tempo la valvola solenoide è aperta per l'espulsione delle gocce, modificando il valore di "WID" o cambiando duty cycle ("dovere")
    4. Modificare la frequenza di espulsione, modificando il valore di "PER"
    5. Modificare il numero di goccioline espulse in uno scoppio, modificando il valore di "BUR"
  5. Cellula soluzione di espulsione su substrato preparato per l'imaging con microscopio

C. colorazione

  1. Portare soluzione colorante con 0,5 microlitri calceina-AM e 2 omodimero microlitri di etidio per ml di DPBS
  2. Immergere substrato preparato in soluzione colorante
  3. Lasciare campione ad incubare per 10 minuti a 37 ° C prima di imaging

Esperimento di convalida

  1. Su una Nikon Eclipse TE-2000 Microscopio U fluorescente
    1. Spot software avanzato (Diagnostics, Inc.)
    2. Live / Dead Assay

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da dichiarare.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Microscopio a fluorescenzaNikon InstrumentsEclipse TE-2000 U
Eiettore di cellule a valvola solenoideFrequenza di funzionamento: 1 kHz, 30 psi, 50 nl~0,5 µl. Alimentatore per valvola a 12 V: corrente di pilotaggio 2,5 A
Serbatoio d'aria portatile da 5 galloniColemanPowermate CT5Aria compressa: 30 psi
Regolatori di pressioneMarsh Bellofram
Generatore di impulsiHP8112AGenerazione della frequenza di attuazione: 50 MHz
Stadio XYZNewmark SystemsCon motore passo-passo: stadio xy con corsa di 6 pollici (NLS4-6-25), stadio z con corsa di 2,5 pollici (NLS4-2.5-25), controllore a 3 assi (NSC-G3), risoluzione 0,1 µm
NIH 3T3Linea cellularefibroblasti
TripsinaSoluzione allo 0,05%
Mezzo per cellule NIH 3T3
DPBSTampone
T75Flaconi per coltura cellulare
Tubi conici in plastica15 ml, per coltura cellulare

Ristampe e permessi

Tag

Stampa a gocceStampa cellulareElettrovalvolaTavolino motorizzatoDensità cellulareEmocitometroSaggio di vitalità (Live/Dead)Calceina AMEtidio omodimero