1. Giorno 1
1) Piastra cellule
- HMSC piastra in un pallone T75 ad una confluenza del 80% almeno 18-24 ore prima dell'etichettatura. Fare riferimento alla Tabella 1 per le istruzioni per le navi alternativo.
2. Giorno 2
2) Preparare la soluzione di etichettatura. Questa preparazione si etichetta un (1) T75 fiasco al 80% confluenza con una concentrazione di 400 mg Fe / ml. Fare riferimento alla Tabella 1 per le istruzioni per le navi alternativo.
- Creare una soluzione (soluzione 1) mescolando 1 ml di siero-free media e 93,1 l di ferumoxytol (magazzino: 30 mg / ml) in un tubo da 15 ml.
- Creare una seconda soluzione (soluzione 2) mescolando 1 ml di siero privo di mezzi di comunicazione e 7 ml di solfato di protamina (magazzino: 10 mg / ml) in un secondo tubo di 15 ml.
- Consentire ad ogni soluzione a riposare per 5 minuti.
- Aggiungere le soluzioni 1 e 2 insieme. Mescolare delicatamente la nuova soluzione di etichettatura. Lasciare che la soluzione a riposare per 5 minuti per consentire USPIO-procomplessi solfato di istamina a formare.
- Aggiungere 5 ml di siero-multimediale gratuito al misto 2 ml di SPIO / soluzione di solfato di protamina per un volume finale di 7 ml.
3) Preparare le cellule per l'etichettatura
- Aspirare i media dalle cellule.
- Lavare delicatamente le cellule una volta con 2-3 ml di pre-riscaldato Mg / Ca-free D-PBS o senza siero media per lavare via residuale le proteine del siero e dei media o altri componenti che potrebbero mettere in pericolo agente di assorbimento di contrasto e di efficienza etichettatura. Aspirare il liquido di risciacquo.
4) Etichetta cellule
- Aggiungere il completo 7 ml di soluzione di etichettatura per le cellule.
- Cellule posto in un incubatore (37 ° C / 5% di CO 2) e permettono alle cellule di incubare nella soluzione di etichettatura per 4 ore.
- Aggiungere 700 ml di FCS alla soluzione di etichettatura delle cellule per ottenere una concentrazione finale del siero del 10%. Siero viene aggiunto a ristabilire l'ambiente arricchito di cui sono abituati le cellule, e per assistere in minimizing morte delle cellule che potrebbe derivare da un brusco passaggio a 24 ore di esposizione ad un ambiente privo di siero.
- Permettono alle cellule di incubare con la soluzione di etichettatura per altre 20 ore.
3. 3 ° giorno
5) Preparare le cellule etichettate
- Aspirare la soluzione di etichettatura da parte delle cellule.
- Lavare delicatamente le cellule con 2-3 ml di pre-riscaldato Mg / Ca-free D-PBS. Aspirare il PBS. E 'importante utilizzare Mg / Ca-free PBS come Mg e Ca potrebbe compromettere l'efficienza della tripsina nella fase successiva.
- Aggiungere 2 ml di pre-riscaldato tripsina 0,05% per le cellule e inclinare il pallone avanti e indietro per garantire l'intera superficie del pallone è ricoperta da un sottile strato di tripsina. Mettere le cellule in un incubatore (37 ° C / 5% di CO 2) e permettono alle cellule di riposare per 5-7 minuti o fino a quando le cellule iniziano a staccarsi dal piatto. Potrebbe essere necessario per confermare il distacco al microscopio. Battere delicatamente i lati del pallone, se necessario, per facilitate superficie cellulare distacco.
- Aggiungere 4 ml di supporti completi pre-riscaldato al pallone per neutralizzare la tripsina. Lavare delicatamente il pallone pipettando la tripsina / media / soluzione cellulari su e giù diverse volte. Raccogliere l'intera soluzione in un tubo da 15 ml. Centrifugare la soluzione delle cellule a 400 RCF per 5 minuti.
- Attentamente aspirare il surnatante senza disturbare il pellet. Risospendere le cellule in 5 ml di mezzi di comunicazione (contenente siero o siero-free). Centrifugare la soluzione delle cellule a 400 RCF per 5 minuti.
- Ripetere il lavaggio delle cellule descritto al punto 5.5. In totale, le cellule saranno lavata tre volte per rimuovere residui, free agent di contrasto nei media e sulla superficie delle cellule.
- Contare le celle a questo punto per raggiungere la conta delle cellule più accurate, come le cellule verranno persi durante il lavaggio precedente. Eseguire un test di vitalità delle cellule. Le cellule sono ora pronte per la successiva analisi e di sperimentazione o applicazione. RM può essere eseguita con T1-w e T2-w parametri, perché anche se ferumoxytol è un T2-w mezzo di contrasto, ferumoxytol espone anche effetti T1. Rappresentante T2-w parametri RMN che possono essere utilizzati per l'immagine cellule ferumoxytol etichettati comprendono: le sequenze FSE o SE_Multislice con un TR di 2000-2500 ms e un TE di 60-80 ms. Per acquisire un T1-w immagine, diminuire il valore TE su un FSE o sequenza SE_Multislice o utilizzare una sequenza GRE con un alto e basso TR TE. Figura 4 mostra un potenziale di applicazioni per l'imaging in vivo di cellule staminali etichettati.
4. Rappresentante dei risultati:
Cellule marcate dimostrare un effetto di contrasto significativo oscuramento o negativo su immagini T2-pesate MR e un effetto di luminosità o contrasto positivo sul T1 pesate MR (Figura 2). Longitudinale RM e test di vitalità eseguite 5 giorni dopo l'etichettatura dimostrato alcun segnale significativo MR e nessun impatto significativo sulla viabilità rispetto ai controlli senza etichetta (dati non riportati).
jove_content "> cellule staminali con etichetta possono essere successivamente differenziate in vari tipi di cellule o iniettata per via endovenosa
per un esame più
vivo. 
Figura 1. Schematica linea del tempo per l'etichettatura di cellule staminali con nanoparticelle di ossido di ferro, ferumoxytol.

Figura 2. Immagini RM di sezioni sagittali thrrough tubi eppendorf con le cellule in una pallina di cellule. A) senza etichetta controlli. B) le cellule etichetta dimostrando un significativo T2 o negativo effetto di contrasto pesata in T2 FSE o SE_Multislice imaging e un T1 o positivo effetto di contrasto sulla sequenza T1 GRE.

Figura 3. Sagittale sezioni dei tubi eppendorf con le cellule in cellule PELlascia. Un minimo di 10.000 cellule ferumoxytol etichettati possono essere rilevati tramite T2-w RM.

Figura 4. Visualizzazione MR di ferumoxytol marcato le cellule staminali iniettate nei ventricoli cerebrali murine. A) assiale, l'immagine di MR barin murini senza iniezione di USPIO marcato le cellule staminali. B) assiale, C) coronale, e D) sagittale immagini RM raffigurante il T2, effetto negativo di contrasto di USPIO marcata con cellule staminali (frecce bianche) iniettato in un cervello murino.

Tabella 1. Adattamenti Quantità per l'etichettatura delle cellule nei vasi alternativo.