Method Article

Differenziazione efficiente di cellule staminali embrionali di topo in neuroni motori

DOI:

10.3791/3813

June 9th, 2012

In This Article

Summary

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Abbiamo sviluppato un nuovo protocollo per migliorare l'efficienza del differenziamento in vitro delle cellule staminali embrionali di topo in neuroni motori. Le cellule staminali differenziate acquisito motoneuroni presenta come evidenziato dalla espressione di marcatori neuronali e motorie dei neuroni che utilizzano tecniche immunoistochimiche.

Abstract

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Differenziazione diretta delle staminali embrionali (ES) in cellule funzionali motoneuroni rappresenta una risorsa promettente per studiare i meccanismi della malattia, per lo screening di nuovi composti farmacologici, e per sviluppare nuove terapie per malattie del motoneurone come l'atrofia muscolare spinale (SMA) e la sclerosi laterale amiotrofica ( ALS). Molti attuali protocolli utilizzano una combinazione di acido retinoico (RA) e sonic hedgehog (Shh) per differenziare staminali embrionali di topo (MES), le cellule in neuroni motori 1-4. Tuttavia, l'efficienza differenziazione delle cellule SEM nel motore neuroni ha soltanto incontrato con discreto successo. Abbiamo sviluppato un protocollo due fasi differenziazione 5 che migliora significativamente l'efficienza di differenziazione rispetto a protocolli attualmente applicate. Il primo passo è di migliorare il processo neuralization aggiungendo Noggin e fattori di crescita dei fibroblasti (FGF). Noggin è una proteina morfogenetica dell'osso (BMP), antagonista ed è implicato in uno induzione neuraleecondo al modello predefinito di neurogenesi e risulta nella formazione di anteriore patterning neurale 6. FGF segnalazione agisce sinergicamente con Noggin nell'indurre la formazione di tessuto neurale attraverso la promozione di una identità neurale posteriore 7-9. In questa fase, le cellule sono state MES innescato con Noggin, bFGF, e FGF-8 per due giorni per promuovere la differenziazione verso lignaggi neurali. Il secondo passo è quello di indurre le specifiche dei neuroni motori. Noggin / FGFs esposti MES cellule sono state incubate con RA e un agonista Shh, agonista Smoothened (SAG), per altri 5 giorni per facilitare la generazione dei neuroni motori. Per monitorare la differenziazione di MES in neuroni motori, abbiamo utilizzato una linea di cellule ES derivata da un topo transgenico che esprime eGFP sotto il controllo del promotore motore neurone specifico HB9 1. Usando questo protocollo robusto, abbiamo raggiunto 51 ± 0,8% di efficienza differenziazione (n = 3; p <0,01, t di Student-test) 5. I risultati di immunofluorescenzacolorazione ha dimostrato che le cellule GFP + esprimere i marcatori dei motoneuroni specifici, Islet-1 e colina acetiltransferasi (Chat). I nostri due fasi protocollo di differenziazione offre un modo efficace per differenziare le cellule MES in neuroni motori spinali.

Protocol

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1. Fase 1: Mouse Embryonic Stem (MES) Cultura Cell (Timing: 3 giorni)

1. Placcatura fibroblasti primari embrionali di topo (PMEF)

  1. Cappotto quattro da 100 mm di coltura dei tessuti piatti con gelatina di adesione PMEF. Aggiungere 8 ml di 0,1% soluzione di gelatina (StemCell Technologies) per ogni piatto e incubare per 30 min a temperatura ambiente.
  2. Togliere l'eccesso di gelatina da piatti. Non sciacquare i piatti.
  3. Diluire una fiala di Mitomicina C-inattivato PMEF (Millipore) che contiene ca. 5 x 10 6 cellule in 40 ml di PMEF supporti (vedi ricetta in tabella 1) e la piastra su quattro....

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Discussion

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La qualità di cellule MES è il parametro più critico per la produzione efficiente di neuroni motori. MES cellule devono essere coltivate in PMEF per prevenire differenziazione spontanea. L'aggiunta di LIF aiuta a mantenere le cellule MES uno stato indifferenziato. Come cellule MES dividere ogni 12-15 ore, il terreno di coltura si esaurisce rapidamente e deve essere sostituito ogni giorno.

Efficiente attivazione del pathway Shh è un parametro critico necessario per indurre motore neurone .......

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Disclosures

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Non ci sono conflitti di interesse dichiarati.

Acknowledgements

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Questo manoscritto è dedicato alla memoria del Dr. Wang Wenlan scomparso il 26 maggio 2011. Ringraziamo il dottor Douglas A. Kerr generosamente per fornire i HBG3 cellule MES usati in questo studio. Questo lavoro è stato finanziato da Nemours, una borsa di studio (2 RR016472-10) nell'ambito del programma INBRE del Centro nazionale per le risorse di ricerca (NCRR), e un premio COBRE borsa di studio del NCRR (5 RR020173 P20-05) per sostenere il Centro per La ricerca pediatrica presso l'Alfred I. duPont Hospital for Children, Wilmington, Delaware, USA.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Nome del reattivo Azienda Numero di catalogo Concentrazione finale
PMEF Millipore PMEF-H NA
PMEF media
DMEM Invitrogen 11965-118 NA
FBS Invitrogen 16140-071 10%
L-glutammina Invitrogen 25030-081 1%
Penicillina / streptomicina Invitrogen 15240-063 1%
MES media
DMEM StemCell Technologies 36250 NA
ES Cell-Qualified FBS Invitrogen 16141-079 15%
-I Glutamax Invitrogen 35050-061 1%
Aminoacidi non essenziali Invitrogen 11140-050 1%
Nucleosidi Millipore ES-008-D 1%
β-mercaptoetanolo Millipore ES-007-E 0,1 mM
Penicillina / streptomicina Millipore TMS-AB2-C 1%
LIF Millipore LIF2010 10 ng / ml
Differenziazione medio Neural
DMEM StemCell Technologies 36250 NA
ES Cult FBS StemCell Technologies 06905 15%
Aminoacidi non essenziali Invitrogen 11140-050 1%
Mono-tio glicerolo Sigma-Aldrich M-6145 1mM
Boccaletto Invitrogen PHC1506 50 ng / ml
FGF-8 Invitrogen PHG0274 20 ng / ml
bFGF Invitrogen PHG0024 20 ng / ml
MND medio (differenziazione)
ES-Cult Basal Medium-A StemCell Technologies 5801 NA
Knockout sostituzione siero Invitrogen 10828-028 10%
N-2 integratore Invitrogen 17502-048 1%
ITS Supplement-B StemCell Technologies 07155 1%
Acido ascorbico StemCell Technologies 07157 1%
Penicillina / streptomicina Millipore TMS-AB2-C 1%
-I Glutamax Invitrogen 35050-061 1%
D-glucosio Sigma-Aldrich G-8270 0,15% in d 2 H 2 O
Fibronectina StemCell Technologies 07159 5 pg / ml
Eparina Sigma-Aldrich H3149 20 ug / ml in d 2 H 2 O
β-mercaptoetanolo Millipore ES-007-E 0,1 mM
Acido Retinoico Sigma-Aldrich R-2625 1 pM
SAG EMD Chemicals 566660 1 pM
MND medio (Motor Neuron cultura)
ES-Cult Basal Medium-A StemCell Technologies 5801 NA
Knockout sostituzione siero Invitrogen 10828-028 10%
N-2 integratore Invitrogen 17502-048 1%
ITS Supplement-B StemCell Technologies 07155 1%
Acido ascorbico StemCell Technologies 07157 1%
Penicillina / streptomicina Millipore TMS-AB2-C 1%
-I Glutamax Invitrogen 35050-061 1%
D-glucosio Sigma-Aldrich G-8270 0,15% in d 2 H 2 O
Fibronectina StemCell Technologies 07159 5 pg / ml
Eparina Sigma-Aldrich H3149 20 ug / ml in d 2 H 2 O
β-mercaptoetanolo Millipore ES-007-E 0,1 mM
BDNF R & D Systems 248-BD-005/CF 10 ng / ml
CNTF R & D Systems 257-NY-010/CF 10 ng / ml
GDNF R & D Systems 212-GD-010/CF 10 ng / ml
NT-3 R & D Systems 267-N3-005/CF 10 ng / ml

NA = Non applicabile.

Tabella 1. PMEF e dei media per la cultura o la differenziazione delle cellule MES.

<> Nome forte del reagente Azienda Numero di catalogo Concentrazione finale
0,1% gelatina StemCell Technologies 07903 NA
Poly-DL-ornitina Sigma-Aldrich P0421 0,1 mg / ml in d 2 H 2 O
Mouse laminina Millipore CC095 2 ug / ml in PBS
0,25% di tripsina / EDTA StemCell Technologies 07901 NA
Accumax Millipore SCR006 NA

NA = Non applicabile.

Tabella 2. Reagenti per il rivestimento e la dissociazione.

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Wichterle, H., Lieberam, I., Porter, J. A., Jessell, T. M. Directed differentiation of embryonic stem cells into motor neurons. Cell. 110, 385-397 (2002).
  2. Miles, G. B. Functional properties of motoneurons derived from mouse embryonic stem cells. J. Neurosci. 24<....

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Mouse Embryonic Stem CellsMotor Neuron DifferentiationNeural InductionRetinoic Acid TreatmentSmoothened AgonistNoggin FGF TreatmentEmbryonic Body FormationImmunofluorescence MicroscopyHb9 GFP ReporterCholine Acetyltransferase

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