$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Montaggio del dispositivo per il recupero di Cryotolerant Cryoboxes
- Utilizzando pinza, raddrizzare un lato di 3 lati forte legame (Figura 1A) per effettuare una forma di L-forte legame nota mostrata in figura 1B:. Le dimensioni del forte legame-può essere selezionata a seconda del diametro del collo di Dewar .
- Fissare due tali forte legame con un forte legame cinghia T (figura 2) utilizzando corona dado del bullone, la rondella e la vite per formare la base Cryoscoop come mostrato in Figura 3 (AB) Nota:. Due legami forti vengono utilizzati per consentire il recupero dei 5 ½ pollici X 5 ½ pollici cryoboxes.
- Utilizzando una piastra scanalata (figura 4), allineare le aperture sul forte legame cinturino T con le scanalature su un'estremità della piastra asolata e fissare i due insieme con l'aiuto di dado Hillman e bulloni (Figura 5). Nota: Se la piatto forato e forte legame non si come con fori predisposti, si dovrà avere fori praticati con punta in metallo duro.
- Piegare l'altra estremità della piastra asolata con l'aiuto di una pinza come mostrato in Figura 6. (Questo passaggio è facoltativo).
- Avvolgere la maniglia con schiuma di comprendere meglio il dispositivo quando in azoto liquido, come mostrato nella Figura 6. (Opzionale) Nota: rimuovere la schiuma prima della sterilizzazione in autoclave.
2. Montaggio del dispositivo per il recupero di Cryotolerant Cryovials
Il Cryotolerant dispositivo di recupero fai da te può essere adattato anche per il recupero di cryovials. Ciò comporta sostituire la base piana con un filtro in acciaio inossidabile come mostrato alterato per scavando flaconi da azoto liquido (Figura 7).
- Svitare i dadi della Corona e bulloni che fissano il forte legame cinghia T alla piastra asolata.
- Prima di applicare il filtro in acciaio inox alla piastra asolata, flettere leggermente il colloil filtro con l'aiuto di pinze per orientare la base ad un angolo per assomigliare ad una siviera (Figura 8) Nota: Se il filtro è dotato di un labbro, utilizzare una pinza per piegare il labbro basso, questo renderà manovre con il dispositivo più facile..
- Allineare il foro sul manico del filtro con i fori sulla piastra asolata e fissare il filtro con l'aiuto di Hillman dadi e bulloni, come mostrato nella Figura 8. Nota: se il filtro non viene fornito con fori predisposti, sarà necessario di organizzare per avere fori con la punta in metallo duro.
3. Recupero Cryoboxes e Cryovials Da Dewar
- Per iniziare, indossare guanti criogenici e togliere 1 o 2 rack freezer dal Dewar per lasciare spazio di manovra.
- Raschiare delicatamente lungo la parte inferiore del Dewar con il montante Cryotolerant dispositivo di recupero fai da te dotata di una forte base di strap tie-T (Figura 5) e raccogliere l'Falle boxn al fondo del serbatoio Dewar Nota:. bolle azoto liquido immediatamente a contatto con un oggetto più caldo, avvolgente l'oggetto in isolante gas azoto (effetto Leidenfrost). Per raffreddare il dispositivo di recupero prima di campioni, lentamente immergere il dispositivo nella Dewar e consentire azoto liquido per raffreddare il dispositivo sufficientemente prima di procedere con la fase precedente.
- Tirare il dispositivo in posizione verticale lungo le pareti del Dewar per raccogliere la scatola freezer dal serbatoio.
- Afferrare la scatola recuperata dal fondo della Dewar.
- Per il recupero cryovials, delicatamente raschiare il fondo del Dewar con la cryoscoop munito di un filtro (Figura 9).
- Simile a cryobox recupero, estrarre il dispositivo in posizione verticale e prendere le fiale raccolti nel filtro.
4. Risultati rappresentativi
Una sfida in studi di espressione genica è che la qualità dell'RNA dipende dalle condizioni di conservazioneper entrambi i campioni di tessuto congelato e la Figura estratto RNA 4. 10 mostra l'effetto della manipolazione del campione sull'integrità di RNA totale. L'RNA totale dalla sorgente stesso tessuto (adiposo umano) è stato sottoposto a manipolazione dei campioni differenti. Prima di esperimento, intatto RNA totale preparato mostra chiare bande 28S e 18S rRNA con la banda 28S rRNA approssimativamente due volte più intenso come la banda 18S rRNA (Figura 10, corsia 1). Questo rapporto 2:1 (28S: 18S) è un'indicazione che l'RNA è intatto, mentre parzialmente degradata RNA appare come una macchia, o la sua 28S: intensità 18S rapporto parte da 2:01 5. Lanes 3-4 raffigura campioni di RNA con una degradazione significativa. Questi campioni di RNA sono stati sottoposti a ripetuti scongelamento parziale di breve termine richiami il Dewar (metodo A), modellando così stoccaggio a lungo termine con periodica decantazione a causa della necessità di recuperare il fiale caduta e caselle (Figura 10, corsia 3-4 ). Tuttavia, i campioni conservati in Dewar servitoutilizzare un dispositivo DIY (Metodo B) e, quindi, non scongelamento parziale, contengono RNA intatto (Figura 10, corsia 2).

Figura 1. A) La base è costituito da due tre lati dimensioni indicate forte della cravatta. Ogni forte legame contiene una grande pre-forate per infilare (freccia solido) e fori più piccoli (più piccola freccia) su ciascuna faccia. Questo fornisce un opzione per consentire il fissaggio con dado e bulloni. Anche i fori più piccoli consentono il rapido deflusso del liquido durante il recupero del campione. B) Un lato di ogni della forte legame viene raddrizzata con l'aiuto di una pinza per rendere L sagomato forte legame.

Figura 2. Strong-tie strap T viene utilizzato per proteggere i forti legami di insieme. Come forte legame, T-strap ha una grande pre-forate per infilare (freccia piena) e due fori più piccoli (SMALl freccia) in ogni angolo. Questo permette di fissaggio forte legame per tutta la lunghezza del T - Strap con viti e bulloni. Consente inoltre di fissaggio T-strap alla piastra asolata.

Figura 3. A) Ogni forte legame è fissata in un angolo di T-strap, tutta la sua lunghezza con i dadi dei bulloni corona, bulloni e rondelle. B) Due forte di legami sono fissati uno accanto all'altro per aiutare recuperare 5 ½ X 5 ½ pollici dentro cryoboxes. Per i più piccoli cryoboxes come 2 mm x 2 pollici, un unico forte legame può essere fissato direttamente alla piastra asolata senza T-strap.

Figura 4. Intaglio piastra piatta viene utilizzato come impugnatura. Lunghezza della piastra asolata dipende dalla profondità della Dewar. In questo caso, 4 piedi di piastra asolata stato utilizzato. Lo spessore della piastra scanalata s è criticacia sottili lastre scanalate (<14 calibri) rendere il dispositivo fragile durante il recupero di campioni di azoto liquido riempito Dewar.

Figura 5. La base piana costituita da forti legami di cinghia e T è poi fissato ad una estremità della piastra asolata. Il buco più grande all'angolo rimanente della cinghia T è allineata con la fessura sulla piastra piatta e fissata con bulloni e dado esagonale. Questo dispositivo può essere ora utilizzato per recuperare cryoboxes da Dewar.

Figura 6. Una estremità della piastra scanalata piana è piegata con una pinza e ricoperto di poliuretano per fornire una migliore aderenza soprattutto per Dewars profonde, come mostrato in questo caso.

Figura 7. Filtro con rete metallica e maniglia in acciaio inoxviene utilizzato per recuperare cryovials da Dewar. Se la maniglia non è provvisto di una scanalatura, con trapano bit carburo saranno necessari per la perforazione di un foro.

Figura 8. Per facilitare il recupero dei cryovials, filtro viene piegata lungo il collo con una pinza per ottenere filtro a forma di mestolo. Se il filtro è dotato di labbro come in questo caso, pinze possono essere utilizzati per piegarlo. In questo modo il filtro non rimanere intrappolati all'interno della Dewar.

Figura 9. Filtro è fissata alla piastra asolata piatta ad una estremità con dado e bullone.

Figura 10. L'integrità del campione di RNA totale sottoposta a diverse condizioni di gestione dei campioni. Per esplorare come la qualità RNA è influenzato dal campione gestione condizioni, una serie di campioni di RNA dalla stessa fonte è stato sottoposto a due metodi di manipolazioni. Metodo A consisteva di stoccaggio di RNA in Dewar sottoposto a recuperi di esempio utilizzando dispositivo fai da te, quindi non scongelamento parziale. Metodo B consisteva di stoccaggio di RNA in Dewar sottoposto a ripetute scongelamento parziale a breve termine richiami effettuati nell'ambito del Dewar, modellando così una conservazione a lungo termine con travasi periodici per il recupero dei campioni caduti. Integrità RNA totale è stato poi analizzato mediante elettroforesi su gel. Lane1: campione prima dello stoccaggio in Dewar; Lane 2: esempio da Dewar sottoposto a recupero secondo il metodo A; Lane 3, 4: Esempio da Dewar sottoposti a recupero con il metodo B, M: ladder 100 bp.