1. Cultura Ex ovo
- Freschi uova fecondate sono stabiliti sul loro lato lungo in un forzata progetto incubatore (BSS160, Ehret, Germania) a 37,5 ° C con 60% di umidità per l'incubazione. Uova conservati a 12 ° C per più di una settimana non dovrebbe essere usato.
- Dopo incubazione per 2,5 giorni (circa fase HH17), estrarre le uova ed etichettare la parte superiore con una matita per indicare la direzione per il cracking.
- Prima di cracking, versare circa 20 ml di acqua distillata sterile in un grande piatto pulito Petri (diametro di 145 mm; Greiner Bio-One GmbH, Germania).
- Posizionare un altro piccolo piastra di Petri sterile (diametro di 94 mm; Greiner Bio-One GmbH) nel grande piatto Petri.
- Rompere le uova sul fondo contro un bordo di metallo affilato, aprire con cautela le uova e trasferire l'intero contenuto di ciascun uovo nella piccola scatola di Petri.
- Coprire il piatto grande Petri con un coperchio e metterlo in un altro incubatore (Binder GmbH, Tuttlinge, Germania)per la cultura ulteriormente a 37,5 ° C con circa il 60% di umidità. Dopo incubazione per il numero desiderato di giorni, gli embrioni possono essere utilizzati per elettroporazione.
2. Preparazione per l'ex ovo Elettroporazione
- Pull in vetro capillari con un estrattore microelettrodo (PUL-100 Micropipetta Puller, strumenti di precisione del Mondo, Berlino, Germania) utilizzando tubi di vetro di 1,0 mm di diametro (TW100F-4; Strumenti di precisione del Mondo) e rompere la punta dei capillari di vetro in un apposito diametro.
- Impostare i parametri appropriati (ad esempio, tensioni diverse per i diversi tessuti e dimensioni di embrioni) per l'elettroporazione e collegare gli elettrodi a un elettroporatore (CUY21-Edit, Nepa Gene, Chiba, Giappone) in base ai tessuti bersaglio e le dimensioni di embrioni.
- Preparare una soluzione plasmide contenente plasmidi a vettore pCAGGS codificano un gene bersaglio, ad es cadherin7 (Cad7; pCAGGS-Cad7 con una concentrazione di 2,0 pg / pl) e un gene marcatore,ad esempio, proteina verde fluorescente (GFP; pCAGGS-GFP con una concentrazione di 0,25 mg / pl). Poi aggiungere verde veloce con una concentrazione finale di 0,1% (Sigma) per marcare la soluzione plasmide con il colore verde.
- Caricare il capillare di vetro con la soluzione plasmide usando una pipetta a bocca.
3. Il trasferimento genico in Tectum pollo ottica da ex ovo Elettroporazione
- Dopo coltura ex ovo, ad esempio, di giorno incubazione (E) 6, gli embrioni di pollo sono utilizzati per esempio elettroporazione ovo.
- Attenzione allo strappo le membrane amnios vitellina e il tetto ottico con una pinza sottili e aggiungere 3 gocce di soluzione sterile con sodio cloruro 0,9% sulla superficie del Tectum.
- Iniettare la soluzione plasmide nella cavità del tectum dal capillare di vetro usando la pipetta bocca.
- Posizionare gli elettrodi con un catodo ago di tungsteno e un anodo di piastra rettangolo (Cuy 661-3x7, Nepa Gene) accanto al Tectum eapplicare immediatamente impulsi elettrici (sei impulsi, 25 V, 60 ms lunghezza di impulso, a intervalli di 100 ms in ogni caso) prodotte dalla elettroporatore al Tectum.
- Coprire il piatto Petri grande con il coperchio e restituirla nell'incubatore. Dopo incubazione per giorno appropriate (ad esempio, 2 o 3 giorni dopo l'elettroporazione), il tectum sono raccolti e fissati per immunocolorazione (figura 1) e il rilevamento biologico.
4. Risultati rappresentativi
Sovraespressione successo delle proteine esogene di Cad7 e GFP da ex elettroporazione ovo è illustrato nella figura 1 come esempio. Quando Cad7 insieme plasmide con GFP plasmide è stato elettroporata in tectum a E6, due o tre giorni dopo l'elettroporazione gli embrioni sono stati raccolti e fissati. Al E8, la proteina GFP è fortemente espresso nel tetto in intere immagini montaggio (Figura 1A-C). Inoltre, nelle sezioni del tectum a E9,Proteina GFP (verde in figura 1D) e Cad7 proteina (rosso in Figura 1E) sono coespressa (giallo in figura 1F), suggerendo che ex elettroporazione ovo è un metodo efficace per il trasferimento genico in gli embrioni di pollo anziani in vivo.

Figura 1. Quando il plasmidi codifica GFP e Cad7 sono cotransfected nel tectum pollo a E6, due o tre giorni dopo l'elettroporazione ex ovo, proteina GFP (verde) è fortemente espresso come mostrato in immagini wholemount (AC) a E8. Nelle sezioni del tectum a E9, proteina GFP (green in D) e Cad7 proteine (rosso in E) sono coespressi (giallo in F). BF, immagine campo chiaro. Scale bar: 200 micron in A per AC; 100 micron di D per DF.