I metodi di incapsulamento microfluidico sono stati precedentemente utilizzati per catturare cellule in gocce acquose monodisperse su scala picolitrica, fornendo un confinamento rispetto a un ambiente fluido in massa, con applicazioni nell'analisi ad alto rendimento, citometria e spettrometria di massa. Descriviamo un metodo che permette non solo di incapsulare singole cellule, ma anche di catturare ripetutamente un numero definito di cellule (in questo caso dimostriamo l'incapsulamento di una e due cellule) per studiare sia l'isolamento che le interazioni tra cellule in gruppi di dimensioni controllate. Combinando tecniche di generazione di gocce con l'ordinamento di cellule e particelle, dimostriamo un incapsulamento controllato di particelle di dimensioni cellulari per un incapsulamento efficiente e continuo. Utilizzando una sospensione acquosa di particelle e un olio fluorocarbonico immiscibile, generiamo gocce acquose in olio mediante un ugello a focalizzazione del flusso. La portata del flusso acquoso è sufficientemente elevata da creare un ordinamento delle particelle che raggiungono l'ugello a frequenze multiple intere della frequenza di generazione delle gocce, incapsulando un numero controllato di cellule in ciascuna goccia. Per risultati rappresentativi, vengono utilizzate particelle di polistirene da 9,9 μm come surrogati cellulari. Questo studio mostra un'efficienza di incapsulamento di singola particella Pk=1 del 83,7% e un'efficienza di incapsulamento di doppia particella Pk=2 del 79,5%, rispetto alle rispettive efficienze di Poisson del 39,3% e del 33,3%. Si dimostra che la costanza della concentrazione di cellule e particelle è di fondamentale importanza per un incapsulamento efficiente, e vengono inoltre trattate le transizioni da gocciolamento a getto.
Introduzione
Le sospensioni cellulari acquose in mezzi continui condividono un ambiente fluido comune che permette alle cellule di interagire in parallelo e omogeneizza gli effetti di cellule specifiche nelle misurazioni effettuate sul mezzo. L'incapsulamento ad alto rendimento delle cellule in gocce su scala picolitro isola i campioni proteggendoli dalla contaminazione incrociata, consente di valutare la diversità cellulare all'interno dei campioni, evita la diluizione di reagenti e biomarcatori espressi e amplifica i segnali provenienti dai prodotti dei bioreattori. Le gocce offrono inoltre la possibilità di riunire gocce in campioni acquosi più grandi o con altre gocce per studi sulle comunicazioni intercellulari.1,2 La riduzione della diluizione implica segnali di rilevamento più intensi, consentendo misurazioni più accurate, nonché la possibilità di ridurre volumi di campione e reagenti potenzialmente costosi.3 L'incapsulamento di cellule in gocce è stato utilizzato per migliorare il rilevamento dell'espressione proteica,4 degli anticorpi,5,6 degli enzimi,7 e dell'attività metabolica8 nell'ambito dello screening ad alto rendimento, e potrebbe essere impiegato per migliorare la citometria ad alto rendimento.9 Altri studi illustrano applicazioni nell'elettrospray bioanalitico di gocce contenenti cellule per spettrometria di massa10 e rivestimenti cellulari superficiali mirati.11 Alcune applicazioni, tuttavia, sono state limitate dalla mancanza di controllo sul numero di cellule incapsulate nelle gocce. In questo lavoro presentiamo un metodo di incapsulamento ordinato12 che aumenta l'efficienza di incapsulamento dimostrata per una e due cellule e che potrebbe essere esteso all'incapsulamento di un numero maggiore di cellule.
Per ottenere la generazione di gocce monodisperse, la tecnica microfluidica "a focalizzazione del flusso" consente di creare gocce di dimensioni controllabili di un fluido (una miscela acquosa di cellule) all'interno di un altro fluido (una fase oleosa continua) mediante un ugello in cui i flussi convergono.13 Per una geometria dell'ugello fissata, la frequenza di generazione delle gocce f e la dimensione delle gocce possono essere modificate regolando le portate oleosa e acquosa Qoil e Qaq. Aumentando le portate, il regime di flusso può passare dalla generazione di gocce al getto instabile del fluido acquoso dall'ugello.14
Quando la soluzione acquosa contiene particelle in sospensione, le particelle vengono incapsulate e isolate le une dalle altre al livello della punta. Per la generazione di gocce a partire da una sospensione cellulare acquosa distribuita in modo casuale, la frazione media di gocce Dk contenenti k cellule è determinata dalla statistica di Poisson, dove Dk = λk exp(-λ)/(k!) e λ rappresenta il numero medio di cellule per goccia. La frazione di cellule che finiscono in gocce correttamente incapsulate viene calcolata utilizzando Pk = (k x Dk)/Σ(k' x Dk'). La sottile differenza tra queste due metriche consiste nel fatto che Dk si riferisce al rendimento del fluido acquoso e alla quantità di selezione delle gocce necessaria dopo l'incapsulamento, mentre Pk si riferisce al rendimento del campione cellulare. Ad esempio, si potrebbe utilizzare una sospensione cellulare diluita (basso λ) per incapsulare gocce in cui la maggior parte delle gocce contenenti cellule ne conterrebbe una sola. Sebbene la metrica di efficienza Pk sarebbe elevata, la maggioranza delle gocce sarebbe vuota (basso Dk), richiedendo pertanto un meccanismo di selezione per rimuovere le gocce vuote, riducendo così anche la produttività.15
La combinazione della generazione di goccioline con l'ordinamento inerziale consente di incapsulare goccioline con un numero di cellule per gocciolina più prevedibile e portate più elevate rispetto all'incapsulamento casuale. Il focalizzazione inerziale è stata scoperta per la prima volta da Segre e Silberberg16 e si riferisce alla tendenza di particelle di dimensioni finite a migrare verso posizioni laterali di equilibrio in un flusso canalizzato. L'ordinamento inerziale indica la tendenza delle particelle e delle cellule a organizzarsi passivamente in file equidistanziate, alternate e a velocità costante. Sia il focalizzazione che l'ordinamento richiedono portate sufficientemente elevate (numero di Reynolds elevato) e dimensioni delle particelle (numero di Reynolds della particella elevato)17,18. In questo caso, il numero di Reynolds Re =uDh/ν e il numero di Reynolds della particella Rep =Re(a/Dh)2, dove u è una velocità caratteristica del flusso, Dh [=2wh/(w+h)] è il diametro idraulico, ν è la viscosità cinematica, a è il diametro della particella, w è la larghezza del canale e h è l'altezza del canale. Empiricamente, la lunghezza necessaria per ottenere file completamente ordinate diminuisce all'aumentare di Re e Rep. Si noti che i requisiti di Re e Rep elevati (nell'ordine di 5 e 0,5 rispettivamente per questo studio) possono entrare in conflitto con la necessità di mantenere basse le portate del flusso acquoso per evitare il fenomeno del jetting alla bocchetta di generazione delle goccioline. Inoltre, portate elevate generano maggiori sforzi di taglio sulle cellule, aspetto non trattato nel presente protocollo. Uno studio precedente sull'incapsulamento ordinato ha dimostrato che oltre il 90% delle cellule HL60 incapsulate singolarmente, in condizioni di flusso simili a quelle del presente studio, ha mantenuto l'integrità della membrana cellulare12. Tuttavia, l'effetto dell'entità e delle scale temporali degli sforzi di taglio dovrà essere attentamente valutato quando si effettuano estensioni a diversi tipi cellulari e parametri di flusso. L'intersezione tra i vincoli relativi all'ordinamento delle cellule, alla generazione delle goccioline e alla vitalità cellulare in termini di portata acquosa definisce un regime operativo ideale per l'incapsulamento controllato di singole e multiple cellule.
Poiché sono molto pochi gli studi che affrontano la distanza inter-train di particelle,19,20 la determinazione di questa distanza è meglio effettuata empiricamente e dipenderà dalla geometria del canale, dalla portata, dalle dimensioni delle particelle e dalla loro concentrazione. Tuttavia, l'equidistanza laterale tra i train implica che le cellule arrivino a intervalli di tempo prevedibili e costanti. Quando la generazione delle goccioline avviene alla stessa frequenza con cui le cellule ordinate raggiungono l'ugello, le cellule vengono incapsulate all'interno delle goccioline in modo controllato. Questa tecnica è stata utilizzata per incapsulare singole cellule con portate dell'ordine di 15 kHz,12 un notevole miglioramento rispetto agli studi precedenti che riportavano velocità di incapsulamento dell'ordine di 60-160 Hz.4,15 Nel lavoro sull'incapsulamento controllato, oltre l'80% delle goccioline conteneva una e una sola cellula, un'efficienza significativamente superiore rispetto alle statistiche di Poisson (casuali), che prevedono un'efficienza media inferiore al 40%.12
In lavori precedenti sull'incapsulamento controllato,12 il numero medio di particelle per goccia λ è stato regolato per ottenere un incapsulamento singolo per cellula. Ipotesizziamo che, regolando le portate, sia possibile incapsulare in modo efficiente un numero qualsiasi di cellule per goccia quando λ è uguale o prossimo al numero desiderato di cellule per goccia. Mentre l'incapsulamento singolo per cellula è utile per determinare le risposte individuali delle cellule a stimoli, l'incapsulamento multiplo fornisce informazioni relative all'interazione tra numeri e tipi controllati di cellule. In questo articolo presentiamo un protocollo, risultati rappresentativi ottenuti utilizzando microsfere di polistirene e una discussione sull'incapsulamento controllato di più cellule mediante un canale passivo per l'allineamento inerziale e una bocchetta per la generazione di gocce.