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Articolo metodologico

Tensione sensibile registrazione Dye da assoni, dendriti e spine dendritiche dei singoli neuroni in fettine di cervello

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DOI:

10.3791/4261

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29 novembre 2012

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In questo articolo

Sommario

Una tecnica di imaging per il monitoraggio dei cambiamenti potenziale di membrana con una risoluzione spaziale sub-micrometrica e sub-millisecondo temporale è descritta. La tecnica, sulla base di eccitazione del laser di tensione-sensibili coloranti, consente misure di segnali in assoni e assoni collaterali, rami terminali dendritiche, e singoli spine dendritiche.

Abstract

Comprendere le proprietà biofisiche e l'organizzazione funzionale dei neuroni singoli e come informazioni di processo è fondamentale per capire come funziona il cervello. La funzione primaria di qualsiasi cellula nervosa è di elaborare i segnali elettrici, solitamente da più fonti. Proprietà elettriche dei processi neuronali sono straordinariamente complessa, dinamica, e, nel caso generale, impossibile prevedere in assenza di misurazioni dettagliate. Per ottenere tale misurazione si sarebbe, idealmente, come essere in grado di monitorare, in più siti, eventi sottosoglia mentre viaggiano dai siti di origine sui processi neuronali e sommare in posizioni particolari di influenzare iniziazione potenziale d'azione. Questo obiettivo non è stato raggiunto in un neurone a causa di limitazioni tecniche di misurazioni che utilizzano elettrodi. Per superare questo inconveniente, è altamente desiderabile per integrare la patch-elettrodo approccio con tecniche di imaging che permettono ampia Recordin parallelogs da tutte le parti di un neurone. Qui, descriviamo una tecnica - ottico di registrazione dei transitori potenziale di membrana con organici tensione coloranti sensibili (V m-imaging) - caratterizzati da sub-millisecondo e sub-micrometrica risoluzione. Il nostro metodo si basa sul lavoro pionieristico di sonde molecolari tensione-sensibili 2. Molti aspetti della tecnologia iniziale sono stati continuamente migliorati per decenni 3, 5, 11. Inoltre, lavoro precedente documentato due caratteristiche essenziali di V m-imaging. In primo luogo, i segnali di fluorescenza sono linearmente proporzionale al potenziale di membrana su tutta la gamma fisiologica (-100 mV a +100 mV, 10, 14, 16). In secondo luogo, i neuroni di carico con la tensione di colorante sensibile usato qui (JPW 3028) non ha effetti farmacologici rilevabili. L'ampliamento del picco registrato durante il caricamento del colorante è completamente reversibile 4, 7. Inoltre, prove sperimentali mostrano che è possibile ottenereun numero significativo (fino a centinaia) di registrazioni prima di eventuali effetti rilevabili fototossiche 4, 6, 12, 13. Attualmente, sfruttare la luminosità eccezionale e stabilità di una sorgente di luce laser a lunghezza d'onda quasi ottimale per massimizzare la sensibilità della m-imaging tecnica V. La sensibilità attuale consente registrazioni di più siti di ottica di V transitori m da tutte le parti di un neurone, tra assoni e assoni collaterali, rami terminali dendritiche, e spine dendritiche individuali. Le informazioni acquisite sulle interazioni di segnale possono essere analizzati quantitativamente e direttamente visualizzati sotto forma di un film.

Protocollo

1. Impostazione dell'apparecchiatura

Passo 1.1. Imaging di installazione

La chiave per la registrazione dei segnali di tensione colorante sensibili è la progettazione di configurazione appropriato. Usiamo un microscopio in posizione verticale (BX51WI Olympus o AxioExaminer Zeiss) dotato di tre telecamere. L'installazione è stata progettata per l'illuminazione di singoli neuroni in fettine di cervello di luce di eccitazione in epi-fluorescenza, wide-field modalità microscopia utilizzando sia 60X/1.0 Nikon NA o Zeiss 63X/1.0 acqua NA obiettivi immersione. Nostri microscopi sono imbullonati a una tabella d....

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Risultati

Successo microscopia confocale dovrebbe consentire una chiara identificazione dei processi neuronali intatti che sono vicino alla superficie della fetta e situato in un piano di messa a fuoco. La selezione delle cellule nervose che sono appropriate per l'imaging di tensione prima della voltaggio-dipendenti carico colorante è fondamentale. Un esempio di immagini confocali di L5 neuroni piramidali esprimono EGFP in una fetta corticale (Crym transgenico linea mouse) è mostrato in Figura 2. Gli assoni d.......

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Discussione

Questo articolo descrive un voltaggio-dipendenti metodo di registrazione colorante per monitorare l'attività elettrica dei neuroni individuali con sub-micrometrica e sub-millisecondo risoluzione spazio-temporale. Eccitazione laser a lunghezza d'onda quasi ottimale (considerando le dimensioni segnale) migliorato la sensibilità di registrazione di un fattore ~ ​​50 rispetto agli approcci precedenti. La sensibilità attuale consente il monitoraggio dei segnali elettrici da tutte le parti di neuroni individuali, tra .......

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Dichiarazioni

Dejan Zecevic dichiara che si tratta di un co-proprietario della RedShirtImaging LLC., Una società specializzata in alta velocità, a basso rumore telecamere CCD utilizzati in voltaggio-dipendenti registrazione colorante. Tutti gli altri autori non riportano interessi finanziari o potenziali conflitti di interesse legati allo studio corrente.

Ringraziamenti

Siamo grati ai nostri collaboratori Knut Holthoff, Arthur Konnerth e Marco Canepari che hanno partecipato allo sviluppo iniziale di questa tecnica e per Leslie M. Loew per la gentile fornitura di coloranti. Supportato da NSF concedere IOS-0817969, sovvenzioni NIH NS068407 e M136043 e Kavli Istituto di Neuroscienze all'Università di Yale.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Nome del componente Azienda Numero di catalogo Commenti (opzionale)
Installazione componenti
Microscopio verticale Olympus Inc. BX51WI Con tre porte della fotocamera
Motorizzato mobile stage Siskiyou MXOPi.2
Epi-fluorescenza condensatore per Olympus BX51 TILL Photonics 0000-560-11659
Microscopio verticale Carl Zeiss, LLC AxioExaminer D1 Con tre porte della fotocamera
Motorizzato piastra superiore Scientifica limitata MMBP
Epi-fluorescenza a condensatore per Zeiss AxioExaminer TILL Photonics
Acquisizione Dati Camera RedShirtImaging LLC NeuroCCD-SM Ad alta velocità, a basso rumore di lettura
CCD per IR-DIC Dage-MTI IR-1000
Spinning-Disc scanner confocale Yokogawa CSU-10
CCD ad alta risoluzione spaziale nello scanner confocale PCO AG PixelFly 1392x1024 pixel
DPSS laser CW (532 Nm) CNI Optoelettronica Tech. Co., Ltd MLL-III-532 400mW Eccitazione sorgente di luce
Fibra multi-mode Launcher Siskiyou SM-CFT
Light Guide FINO Fotonic 0000-515-11524
Otturatore Vincent Associates LS6
Vibrazioni isolamento Tabella Minus k Tecnologia MK26
Reagenti specifici
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114) Life Technologies D-6923 Tensione colorante sensibile
Crym-EGFP mouse Linea GENSAT (MMRRC) STOCK Tg (Crym-EGFP) GF82Gsat/Mmcd Scarsamente esprimere EGFP nel livello 5 neuroni corticali

Riferimenti

  1. Bischofberger, J., Engel, D., Li, L., Geiger, J. R., Jonas, P. Patch-clamp recording from mossy fiber terminals in hippocampal slices. Nature Protocols. 1, 2075-2081 (2006).
  2. Cohen, L. B., Salzberg, B. M. Optical measurement of membrane potential. Ann. Rev. Neurosci. 1

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Ristampe e permessi

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