GST-la sua purificazione: A Two-step Affinity Purification protocollo Cedendo Full-length proteine ​​purificate

Sommario

Nel presente protocollo, si dimostra un metodo altamente efficiente e conveniente purificazione di proteine ​​su piccola scala, che permette la purificazione di proteine ​​ricombinanti, combinando in modo univoco un scindibile GST-tag e un piccolo His-tag.

Abstract

Saggi chiave enzimologia per la caratterizzazione biochimica delle proteine ​​in vitro richiedono alte concentrazioni di proteina purificata di interesse. Protocolli di purificazione di proteine ​​dovrebbero coniugare efficienza, semplicità ed economicità ^1. Qui, descriviamo la GST-His metodo come un nuovo sistema di purificazione per affinità su piccola scala per le proteine ​​ricombinanti, basato su un N-terminale Tag glutatione Sepharose (GST) ^2,3 e un tag 10xHis C-terminale ^4, che sono entrambi fusa per la proteina di interesse. Quest'ultimo costrutto viene utilizzato per generare baculovirus, per infezione di Sf9 cellule infette per l'espressione proteica ^5. GST è piuttosto lunga tag (29 kDa) che serve a garantire l'efficienza di depurazione. Tuttavia, potrebbe influenzare le proprietà fisiologiche della proteina. Quindi, viene successivamente tagliato fuori la proteina usando l'enzima prescissione ^6. Al fine di garantire la massima purezza e per rimuovere la GST spaccati, abbiamoaggiunta una seconda fase di purificazione di affinità basata sul relativamente piccolo His-tag. È importante sottolineare che la nostra tecnica si basa su due diversi tag che fiancheggiano le due estremità della proteina, che è uno strumento efficace per rimuovere le proteine ​​degradate e, quindi, arricchisce proteine ​​integrali. Il metodo qui presentato non richiede una configurazione strumentale costoso, come FPLC. Inoltre, abbiamo incorporato MgCl ₂ e lava ATP per rimuovere le impurità di calore proteina da shock e il trattamento nucleasi per abolire contaminanti acidi nucleici. In sintesi, la combinazione di due diversi tag che fiancheggiano la N-e C-terminale e la capacità di scindere fuori uno dei tag, garantisce il recupero di una proteina altamente purificata e full-length di interesse.

Introduzione

La purificazione di proteine ​​ricombinanti è fondamentale per affrontare le questioni fondamentali in biochimica. Modi convenzionali di purificazione delle proteine ​​come cromatografia a scambio ionico e cromatografia ad esclusione dimensionale basano sulle proprietà fisiche della proteina bersaglio come suo punto isoelettrico e carica o dimensione, rispettivamente. Le caratteristiche proteiche ultimi sono condivisi da una varietà di proteine, che aumenta notevolmente la possibilità di proteine ​​contaminanti in strategie di purificazione delle proteine ​​convenzionali. Questo problema può essere aggirato con l'utilizzo di più colonne di purificazione, che richiede molto tempo. Allo stesso tempo, questi ultimi metodi cromatografici richiedono costosi setup sperimentale. Affinità-tag purificazione aumenta fortemente bersaglio specificità, come nella maggior parte dei casi il tag sarà unico per la proteina di interesse. In studi recenti, purificazione-Flag o HA-affinità è stato ampiamente utilizzato.

In contrasto con rec esistenteprotocolli di purificazione di proteine ​​ombinant in cui vengono utilizzati singoli tag, abbiamo stabilito la combinazione unica di due tag. Il nostro metodo prevede la fusione di GST-tag al N-terminale e un His-tag al C-terminale della proteina di interesse, per un rapporto ottimale tra quantità e la purezza della proteina desiderata. Il GST è molto variabile (29 kDa), che è molto efficace per la purificazione su glutatione Sepharose perline. Inoltre, utilizzando GST garantisce costo-efficacia del nostro metodo ^1. La possibilità di fendere largo della GST con l'enzima prescissione (con sequenza di riconoscimento LeuGluValLeuPheGln / GlyPro, conseguente aggiunta di soli due amminoacidi) ha molti vantaggi, per esempio, questa strategia evita alterazioni delle funzioni fisiologiche proteina causa ostacolo allosterico. Il piccolo His-tag fusa alla proteina altra estremità serve in una seconda fase di purificazione per aumentare proteina purezza lavando via il GST spaccati, così come proteine ​​degradate e altre contaminanti. Inoltre, il protocollo non richiede una fase di dialisi quando si passa dalla GST alla colonna passo His-purificazione (resina TALON). Contaminanti comuni in tali processi di purificazione sono proteine ​​da shock termico (HSP). L'aggiunta di una fase di incubazione con MgCl ₂ e ATP permette la rimozione di questi contaminanti (Figura 1).

Proteina rapidi Liquid Chromatography (FPLC) e High Performance Liquid Chromatography (HPLC) sono tecniche comuni che dipendono strumentazione costosa per generare alta resa della proteina purificata di interesse. Il protocollo di purificazione lotto presentiamo qui, al contrario, è manuale e non richiede una configurazione strumentale costoso. Un elevato rendimento di proteina può essere raggiunto scalando il protocollo. Allo stesso tempo, con il protocollo di purificazione batch, il volume di eluizione può essere regolato in modo da aumentare la concentrazione di proteine, che non è dato con FPLC o HPLC.

S copi "> Inoltre, con la GST-His protocollo di purificazione batch, proteine ​​con un intervallo di dimensioni di circa 10-300 kDa possono essere purificati. Uno dei maggiori vantaggi è dato dal fatto che si può purificare diverse proteine ​​allo stesso tempo , per esempio, sia di tipo selvatico e la sua proteina mutante. Il successo del protocollo presentato dipende unicamente il livello di espressione e la solubilità della proteina di interesse.

Protocollo

1. Produzione di ricombinante Baculovirus

Baculoviruses vengono generati utilizzando il Baculovirus Expression System Bac-to-Bac di Invitrogen prevalentemente secondo il protocollo del produttore con solo lievi modifiche:

1. Un pFastBac1 vettore modificato (Gibco, vita) è stato creato, contenente la GST e suo-tag (Figura 2). Il MultiCloning Site (MCS) di una PET-52b (+) vettore (Novagen), contenente un 10xHis-tag, è stato inserito nel MCS di un vettore pFastBac1 per generare pFastBac1-Strep-10xHis. La sequenza MCS pET-52b (+) è stato amplificato mediante PCR tra i siti di restrizione XbaI e BlpI, l'aggiunta di un sito di restrizione BglII all'estremità 5 'estremità e un sito di restrizione HindIII al 3' estremità. Il prodotto di PCR è stato poi clonato tra BamHI e HindIII sito di restrizione di pFastBac1, utilizzando la compatibilità di BamHI e BglII sequenze di restrizione. Poiché l'obiettivo era di generare una pFastBac1 permettendo l'espressione diproteina ricombinante con streptavidina-e 10xHis-tag, il sito di restrizione BamHI della PET-52b (+) la sequenza MCS non è stato utilizzato. Inoltre, il sito di restrizione XbaI non è stato utilizzato per evitare la ridondanza dei siti di restrizione che si verificano tra i siti già presenti nel MCS di pFastBac1 e questi inserite con la MCS di PET-52b (+). La sequenza codificante GST con il sito prescissione proteasi di riconoscimento (LeuGluValLeuPheGln / GlyPro) è stato poi inserito nel pFastBac1-Strep-10xHis. La sequenza di cDNA da GST-pGEX 6P-2 (GE Healthcare) è stato amplificato mediante PCR con primer contenenti NcoI e KpnI siti di restrizione al 5 'e 3' estremità, rispettivamente. Il sito NcoI permette l'aggiunta di un codone di inizio, ma anche una alanina al GST. Il prodotto di PCR è stato poi clonato in pFastBac1-Strep-10xHis tra i siti di restrizione NcoI e KpnI, con la conseguente soppressione della streptavidina-tag. Il nuovo vettore di fusione così ottenuto è stato nominato pFastBac1-GST-10xHis.
2. Clonare la codifica cDNA per il protein di interesse nel vettore pFastBac-GST-10xHis tra la GST (N-terminale) e la His-tag (C-terminale). Fate attenzione a rimuovere il fermo cDNA codone per consentire la fusione con la C-terminale His-tag.
3. Trasforma E. coli DH10Bac con il ricombinante pFastBac (ottenuta nella fase 1.2) per generare il bacmid. Consentire colonie di crescere durante la notte a 37 ° C e diverse ore a 30 ° C su piastre di selezione contenenti Bluo-gal e IPTG (10 mcg / ml tetraciclina, 50 pg / ml kanamicina, 7 mg / ml di gentamicina, 100 pg / ml Bluo- Gal, 40 mcg / ml IPTG).
4. Pick and restreak 2 colonie bianche (a partire dal punto 1.3) su piastre di selezione per confermare il fenotipo bianco.
5. Inoculare 2 ml di LB contenenti 10 ug / ml tetraciclina, 50 pg / ml kanamicina, 10 mg / ml di gentamicina con le due colonie bianche dal punto 1.4 e farli crescere per una notte sotto agitazione (250 rpm) a 37 ° C.
6. Al fine di purificare il DNA bacmid, pellet i batteri dal punto 1.5,sospendere nuovamente le cellule in 300 ml di soluzione di I e aggiungere 300 ml di soluzione II (kit Maxiprep da Qiagen). Incubare per 5 min a temperatura ambiente, aggiungere 300 ml di 3 M KOAc pH 5.5 e incubare per 10 min in ghiaccio. Centrifugare i campioni a 4 ° C, velocità massima per 10 min. Aggiungere 800 ml di isopropanolo per surnatanti e incubare per 10 min in ghiaccio. Centrifugare i campioni per 15 min a 4 ° C e lavare il precipitato con 500 ml di etanolo al 70%. Lasciare il pellet asciutto e risospendere in condizioni sterili in 40 ml di Tris-EDTA pH 8,0. Il DNA bacmid deve essere conservato a 4 ° C.
7. Generare baculovirus come descritto nel protocollo del produttore. Baculoviruses possono essere conservati a 4 ° C al riparo dalla luce.

2. Ricombinante Protein Expression

1. Per scegliere il baculovirus più efficiente per la purificazione e di monitorare ciò che il tempo si raggiunge il picco di espressione della proteina, eseguire un mini-infezione test uns segue: Infect 2 x 10 ⁷ cellule infette Sf9 coltivate a 27 ° C in mezzi di Grace (integrato con 10% FBS e 1% P / S) con 133 microlitri (1/150) di baculovirus. Raccogliere aliquote di 1,5 ml a 0, 24, 48, e 72 ore dopo l'infezione. Agglomerare le cellule e analizzare il livello di espressione della proteina di interesse mediante western blotting utilizzando anticorpi anti-tag.
2. Utilizzare il baculovirus più efficiente dal punto 2.1 per infettare un filatore contenente 1,0 x 10 ⁶ cellule Sf9 per ml in 500 ml di media con un rapporto di 1/150 di tra virus e media. Lasciare che le cellule infettate crescere in sospensione a 27 ° C e raccogliere le cellule quando viene raggiunta la massima espressione della proteina (come determinato nella fase precedente punto 2.1). Cellule pellet possono essere conservati a -80 ° C sino al successivo utilizzo.

3. Preparazione del lisato cellulare Solubile

Tutte le seguenti fasi di incubazione vengono effettuati a 4 ° C sotto lieve rotazione.

1. Lyse SF9 cellule esprimenti la vostra proteina di interesse in ~ 20 ml di tampone di legame GST (NaCl 150 mM, EDTA 1 mM, 0,05% Triton-X-100, 1 mM DTT in PBS1X per una concentrazione finale di NaCl di 250 mM, e inibitore della proteasi cocktail (Roche). In un bagno di acqua ghiacciata, Dounce la soluzione 20x con un omogeneizzatore Dounce, ultrasuoni 3x 30 secondi ciascuno (in uscita il 70%), e Dounce nuovo 20x.
2. (Facoltativo). Incubare il lisato cellulare totale con 1 mM MgCl ₂ e benzonasi ⁷ nucleasi (2,5 U / ml) per 30 min a 4 ° C per rimuovere il DNA o RNA contaminazione.
3. Centrifugare a 18.000 rpm per 30 min a 4 ° C. Conservare il surnatante.
4. (Facoltativo). Centrifugare il surnatante nuovamente per 30 min a 18.000 rpm a 4 ° C per ottenere un lisato solubile chiaro. Passare il surnatante con un filtro da 0,2 o 0,45 micron per evitare intasamenti.

4. Il legame di proteine ​​su Beads GST

1. Incubare il lisato cellulare solubile con 1 ml di perline GST (lavata due volte con10 ml di tampone GST) vincolante per 1 ora a 4 ° C sotto lieve rotazione.

Commento: Il tempo di incubazione deve essere ottimizzato secondo la stabilità della proteina e l'efficienza di legame.

2. Giro veloce a 700 rpm e rimuovere il surnatante contenente proteine ​​non legate (questo può essere conservato per ulteriori analisi). Lavare le proteine ​​GST-bound (Figura 3B, corsia 1) con tampone di lavaggio GST (GST binding buffer con 350 mM NaCl finale).
3. Ripetere il punto 4.2 2x. All'ultimo lavaggio, rimuovere il più possibile surnatante.
4. Incubare le perline con 5 mM ATP e 15 mM MgCl ₂ (in 10 ml di tampone di legame GST) per 1 ora a 4 ° C per evitare legami aspecifici di proteine ​​da shock termico ^8. Lavare le perline tre volte con tampone di lavaggio GST.

5. Prescissione scissione del GST

1. Centrifugare le perline GST, rimuovere il surnatante e lavare le perline GST con P5 buffer (50 NaHPO ₄ mM pH 7,0, NaCl 500 mM, glicerolo 10%, 0,05% Triton-X-100, imidazolo 5 mM).
2. Incubare le GST-perline con prescissione enzima nel buffer P5 da 3 ore a notte a 4 ° C. (Dividete le perle GST in frazioni di 100 ml e aggiungere 4-8 unità (2-4 microlitri) di enzima diluito in 100 ml di tampone P5).

Commento: Il tempo di incubazione del passo prescissione deve essere ottimizzato in funzione del peso molecolare e la stabilità della proteina. Se la degradazione viene osservata, questo tempo di incubazione può essere ridotto fino ad un minimo di 2 ore anziché overnight.

3. Giro veloce e raccogliere il surnatante. Ripetere questa operazione per due volte dopo l'aggiunta di 100 ml di P5 tampone ai talloni e piscina tutte le frazioni (Figura 3B, corsia 2).

Commento: I restanti sfere possono essere utilizzate per l'analisi di efficienza clivaggio (Figura 3B , corsia 3). Solitamente, il 70-80% delle proteine ​​viene aperto.

6. -Proteina di legame per TALON metallo Affinity Resin

1. Dividere l'eluizione dall'alto in 3 frazioni da 1 ml e incubare ciascuno con 100 microlitri Talon resina di affinità metallo perline secco (lavata due volte con tampone P5) per 1 ora in rotazione.

Commento: Dividendo il eluizione in diverse frazioni aumenta l'efficienza di legame / lavaggi.

2. Lavare la resina 5 min con tampone P30 (tampone P5 con una concentrazione finale di 30 mM imidazolo).
3. Ripetere passo 6.2 2x e in comune le perline in un unico tubo. Prima l'ultimo lavaggio, rimuovere il più possibile surnatante.

Commento: Questo corrisponde al TALON vincolato campione (figura 3B, corsia 4).

7. Eluizione della proteina purificata

1. Incubare la proteina legata resina TALON per 5 min in rotazione con P500 tampone (buffer P5 con una concentrazione finale di 500 mM imidazolo). Utilizzare un rapporto tra buffer e perle di 1:01 v / v (Ad esempio, se tu avessi preso 200 ml di perline secco, dovrete aggiungere 200 ml di P500). Ripetere questa operazione due volte e mantenere ogni frazione eluita separatamente (denominato eluizione 1 (E1), eluizione 2 (E2) e eluizione 3 (E3), figura 3B, corsie 5-7).

Commento: I restanti sfere possono essere utilizzate per l'analisi di efficienza di eluizione (Figura 3B, corsia 8). Tipicamente, 60-80% della proteina viene eluita in totale.

2. Analizzare la quantità e la qualità della proteina purificata caricando circa 20-40 microlitri di ogni frazione con una concentrazione standard BSA su SDS-PAGE e colorazione con Coomassie blue (Figura 3B) o SYPRO macchia proteina per la visualizzazione.

Commento: La proteina di interesse può essere rilevata anche throughout la procedura di purificazione utilizzando anti-GST e anti-His anticorpi (Figura 3C).

8. Conservazione della proteina purificata

1. Dializzare la proteina purificata contro un tampone di conservazione appropriata (ad esempio 20 mM Tris acetato pH 8,0, KAC 200 mM, glicerolo 10%, EDTA 1 mM, DTT 0,5 mM) a 4 ° C. È importante controllare la precipitazione della proteina purificata durante la dialisi. Di solito Dializzare 2x per 1 ora a 4 ° C sotto agitazione rotazione.
2. Effettuare piccole aliquote della proteina purificata (10-20 ml) e congelare in ghiaccio secco per 30 min. Conservare le aliquote a -80 ° C ed evitare molte disgelo / cicli di congelamento.

Risultati

Al fine di illustrare l'efficacia del-His GST protocollo di purificazione, si purificati Rec14, un S. proteine ​​pombe del 32,9 kDa. La Rec14 cDNA è stato clonato nel nostro vettore pFastBac1 modificata permettendo le aggiunte di GST-e le Sue-tag presso la N-e C-terminali, rispettivamente (Figura 1A). Baculovirus ricombinanti sono stati poi preparati e usati per infettare le cellule infettate SF9 per l'espressione della proteina. I lisati cellulari solubili sono stati incubati con perl...

Discussione

Il GST-His protocollo di purificazione qui presentato è adatto per la purificazione di una vasta gamma di dimensioni di proteine ​​ricombinanti: Abbiamo purificati successo Li RAD51 (41kDa), piBRCA2 (120kDa), PALB2 (130kDa), e un alto contenuto di proteine ​​di peso molecolare instabile Leishmania infantum: Li BRCA2 (125kDa) ^6,9. Inoltre, le proteine ​​purificate con questo protocollo erano biochimicamente attiva ^6. Il successo di questo metodo dipende unicamente dalla espressione...

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
REAGENTS
E.Coli DH10Bac (competente)	Invitrogen
Bac-to-Bac Baculovirus Expression System	Invitrogen
Maxi Prep Kit	Qiagen	12163	Soluzione I e II
Ultra Pure Bluo-Gal	Gibco (Life)	15519028
IPTG	Gibco (Life)	15529019
cellule infette da Sf9	ATCC	CRL-1711
Enzima di prescissione	GE Healthcare	27084301
Il mezzo infetto di Grace ha integrato	Gibco (Life)	11605-094
Siero fetale bovino caratterizzato	Hyclone	SH30396.03
P/S (Penicillina-Streptomicina)	Gibco (Life)	15070-063
Glutatione Resina di Sefarosio	GE bioscience	17075605
Cocktail di inibitori della proteasi	Roche	11873580001
Talon resina	Clontech	635504
Imidazole	BioShop	288324
Gentamicina	Gibco (Life)	15710064
Produzione	interna
policlonali Monoclonali 6X-His-antibody	Clontech	631212
EQUIPMENT
Dounce omogeneizzatore (tight)	Wheaton	357546
Sonicator (Fisher dismembrator)	Fisher	Model 150
Sacca per dialisi (50 mm)	Fisher Scientific