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1. Preparazione
1.1. Anestesia dei ratti
- Collocare il ratto in una camera preintasato con isoflurano (a seconda delle dimensioni della camera di circa 3 minuti del 5%) per anestetizzare il ratto.
- Una volta anestetizzato, rimuovere il ratto e si pesa.
- Collocare il naso del topo nella maschera anestesia (2-3% isoflurano in ossigeno 1 L / min) per mantenere l'anestesia. Durante l'anestesia con isoflurano, le frequenze cardiache di ratti diminuiscono a 300-340 bpm (380-420 bpm nei topi).
1.2. Inserire una cannula venosa coda
- Lavare la coda del topo con acqua calda (38 ° C) e sapone per permettere ai vasi sanguigni di essere più facilmente visibili.
- Incannulare o vena, che può essere facilmente visto sulla faccia laterale della coda. Utilizzando un 22-24 G IV catetere, iniziare i tentativi di circa 1/3 del modo dalla punta.
- Se gli sforzi iniziali non hanno successo, riprovare più prossimale.
- Prendere sangue sample per l'analisi di ematocrito (necessario calcolare frazione di volume extracellulare = ECV).
- Fissare il catetere iv con colla di pelle e nastro adesivo.
1.3. Posizionamento degli elettrodi
- Pulire tutti i briganti con tampone imbevuto di alcool saturo o con acqua e sapone.
- Sono necessari quattro elettrodi, uno per piede.
- Collegare gli elettrodi al centro della zampa e fissarli con del nastro adesivo.
- Twist o intrecciare i cavi ECG intorno a vicenda per ridurre al minimo la formazione di loop che potrebbero causare interferenze con il segnale ECG.
2. Scansione
2.1. Posizionamento dell'animale e monitoraggio
- Collocare il ratto in una posizione supina o prona sul tubo imaging e posizionare il cuore al centro della bobina.
- Disporre il topo in modo che il naso riposa nel cono che trasporta l'anestesia isoflurano (2-3% in ossigeno 1 L / min). Il ratto è permesso di respiroliberamente in tutta l'intera procedura di imaging.
- Posizionare il sensore del termometro a orifizio anale e fissarlo sul tavolo con del nastro adesivo.
- Temperatura corporea è mantenuta a 38 ± 1 ° C da un sistema di riscaldamento dell'acqua calda. Il tappetino riscaldamento è posto sotto l'aspetto inferiore dell'animale che si estende fuori dalla bobina. Si prega di vedere la rappresentazione schematica del setup sperimentale MRI (Figura 2) per maggiori dettagli.
- Collegare gli elettrodi ECG, una volta che il segnale ECG è stabile iniziare imaging.
2.2. Parametri del protocollo di scansione / Imaging
- In questo studio è stato utilizzato un sistema di Ingenia 3.0T MRI clinica Philips con una bobina con il 70 mm di diametro interno [requisiti di sistema MR sono un piccolo foro (ad esempio 16 cm) o di grandi dimensioni (diametro umano, ad esempio 65 cm) con piccolo animale dedicato bobina, capacità di gating ECG per frequenze cardiache fino a 500/min, l'apporto di ossigeno e di un sistema di rimozione di gas anestetici].
- Iniziare con un sondaggio per individuare il cuore al centro del campo di vista MRI.
- Una volta che la posizione è corretta, continua con due camere e quattro camere cine viste MRI per determinare la geometria della pila di immagini asse corto.
- Per SALLI, posizione della cavità media breve fetta asse su due e quattro-immagini-camera (PreSALLI). Una combinazione di 4,000 msec durata acquisizione e 4,000 msec durata rilassamento consente sufficiente recupero della magnetizzazione lungo l'asse z e impedisce il surriscaldamento dei gradienti. Per consentire l'analisi funzionale, le fasi devono essere impostati ad almeno 12, con sottocampionamento temporale del fattore 2 per accelerare l'acquisizione.
- Iniettare il mezzo di contrasto a base di gadolinio nel catetere a permanenza, senza muovere il topo. Attendere cinque minuti.
- Iniziare a pianificare SALLI come multislice pila asse corto, composto da almeno 7 fette (slice spessore 2,4 millimetri). Posizionare le fette in modo che la più distale è sotto l'apice del cuore e tegli livello superiore è immediatamente distale alle valvole cardiache. Cercare di garantire che gli assi corti sono perpendicolari al setto. Quasi ogni 30 minuti (circa tre Sallis) iniettare un'altra dose di mezzo di contrasto.
- Quando l'acquisizione delle immagini è terminata rimuovere il ratto dallo scanner e farlo recuperare da anestesia.
3. Ricostruzione di immagini
Ricostruzione delle immagini può essere effettuata sia in linea con i parametri di ricostruzione predefiniti, o non in linea utilizzando uno strumento dedicato ricostruzione di immagini:
3.1. Online Ricostruzione
- Diversi parametri possono essere definiti tra cui:
- Per la mappatura T1: ubicazione e la larghezza della finestra ricostruzione all'interno del ciclo cardiaco (ad esempio da 50 a 100 msec per raggiungere sistolica mappa T1 nella frequenza cardiaca 300/min)
- Per IR-preparati (LGE) immagini: posizione e la larghezza del tempo di inversione (TI) finestra e il numero di immagini da wi ricostruitosottile quella finestra (ad esempio TI 100-300 msec, 5 immagini, per generare 5 immagini LGE con TI 100-150-200-250-300 msec).
3.2. Offline Ricostruzione
- Quando si utilizza un pacchetto software dedicato (GyroTools, Zürich, Svizzera) per la ricostruzione di immagini, estrarre i tre insiemi di dati (Cine MR, inversione di recupero e mappe T1) in un modo più interattivo.
- Regolare la definizione di fine sistole o telediastole per il T1 selezionando l'immagine cine corrispondente.
- Visualizzare mappe T1 come mappe a colori. Trova i valori esatti passando il mouse sopra una zona di interesse. Le immagini possono essere memorizzate in vari formati di immagine per ulteriori analisi (ad esempio il calcolo di ECV da pre-e post-valori di contrasto T1 del miocardio e la piscina di sangue) 12.