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Articolo metodologico

Registrazione elettrofisiologica simultanea e imaging del calcio dei neuroni del nucleo soprachiasmatico

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DOI:

10.3791/50794

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8 dicembre 2013

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In questo articolo

Sommario

Vengono descritte le procedure per eseguire registrazioni simultanee del potenziale o della corrente di membrana e delle variazioni della concentrazione intracellulare di calcio. I neuroni del nucleo soprachiasmatico vengono riempiti con l'indicatore di calcio bis-fura-2 utilizzando un elettrodo patch clamp nella configurazione patch clamp dell'intera cellula.

Abstract

Sono stati utilizzati metodi di registrazione simultanea elettrofisiologica e fluorescente per studiare il ruolo dei cambiamenti del potenziale o della corrente di membrana nella regolazione della concentrazione intracellulare di calcio. Il cambiamento delle condizioni ambientali, come il ciclo luce-buio, può modificare l'attività della rete neuronale e neurale e l'espressione di una famiglia di geni dell'orologio circadiano all'interno del nucleo soprachiasmatico (SCN), la posizione dell'orologio circadiano principale nel cervello dei mammiferi. La trasmissione sinaptica eccitatoria porta ad un aumento della concentrazione postsinaptica di Ca2+ che si ritiene attivi le vie di segnalazione che spostano l'espressione ritmica dei geni dell'orologio circadiano. Le fette ipotalamiche contenenti l'SCN sono state bloccate con microelettrodi riempiti con una soluzione interna contenente l'indicatore di calcio bis-fura-2. Dopo che si è formato un sigillo tra il microelettrodo e la membrana neuronale SCN, la membrana è stata rotta utilizzando una leggera aspirazione e la sonda di calcio si è diffusa nel neurone riempiendo sia il soma che i dendriti. Le misurazioni raziometriche quantitative della concentrazione intracellulare di calcio sono state registrate simultaneamente al potenziale o alla corrente di membrana. Utilizzando questi metodi è possibile studiare il ruolo delle variazioni della concentrazione intracellulare di calcio prodotte dall'attività sinaptica e dall'attivazione del potenziale d'azione dei singoli neuroni. In questa presentazione dimostriamo i metodi per registrare simultaneamente l'attività elettrofisiologica insieme al calcio intracellulare da singoli neuroni SCN mantenuti in fette di cervello.

Introduzione

È noto che i cambiamenti nell'espressione genica si verificano nei neuroni come conseguenza della segnalazione sinaptica. La segnalazione da parte del neurotrasmettitore eccitatorio glutammato può depolarizzare il potenziale della membrana neuronale portando infine alla trascrizione e traduzione genica1,2. L'attivazione dei recettori ionotropici da parte del glutammato consente agli ioni calcio extracellulari di entrare nella cellula, che si ritiene svolga un ruolo critico come secondo messaggero nell'attivazione della trascrizione genica. La valutazione della relazione tra l'attività elettrica della membrana, come la frequenza di attivazione del potenziale....

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Protocollo

1. Preparazione di Fette di Cervello Ipotalamico

  1. Ottieni, in anticipo, l'approvazione del Comitato Istituzionale per la Cura e l'Uso degli Animali (IACUC) per qualsiasi procedura che coinvolga gli animali. Le procedure per gli animali qui descritte sono coerenti con le linee guida AVMA per l'eutanasia degli animali del 2013 e sono state approvate in anticipo dall'Oregon Health & Science University IACUC.
  2. Preparare 500 ml di tampone per affettare senza MgCl2 e CaCl2 (Tabella 1). Far bollire la soluzione con il 95% di O2 e il 5% di CO2 a temperatura ambiente, quind....

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Risultati

Utilizzando fettine cerebrali ipotalamiche, abbiamo registrato simultaneamente le variazioni del calcio intracellulare in modalità whole cell sia in condizioni di clampaggio del voltaggio che di clampaggio della corrente. L'elettrodo microscopico mostrato nella Figura 1A viene abbassato nella posizione desiderata sotto alta ingrandimento (obiettivi UV 40X o 63X) applicando una leggera pressione positiva. Dopo aver toccato il neurone, si forma una guida di resistenza nell'ordine del gigaohm mediante aspir.......

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Discussione

I metodi sopra descritti forniscono un potente strumento per registrare simultaneamente il legame tra l'attività elettrica della membrana neuronale e la concentrazione intracellulare di calcio. Il metodo ha una serie di punti di forza in quanto combina due metodi molto ben caratterizzati: la registrazione del patch clamp di cellule intere e la misurazione del calcio intracellulare utilizzando coloranti fluorescenti. Il nostro approccio è simile a quelli descritti da altri ricercatori6,23.

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Il lavoro è stato finanziato da una sovvenzione dell'Istituto Nazionale di Scienze Mediche Generali (GM096972).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
NaClFisher Scientific Co.S271-3
KClFisher Scientific Co.P217-500
NaH2PO4• H2OSigma Chemical Co.S-9638
MgCl2• 6H2OFisher Scientific Co.M33-500
CaCl2• 2H2OFisher Scientific Co.C79-500
D-glucosioFisher Scientific Co.D16-500
NaHCO3Fisher Scientific Co.S233-500
SaccarosioFisher Scientific Co.S5-500
D-gluconato di potassioSigma-AldrichG4500
HEPESSigma-AldrichH4034
Adenosina 5′-trifosfato sale dipotassico diidratoSigma-AldrichA8937
Guanosina 5′-trifosfato tris saleSigma-AldrichG9002
Agarosio (ultrapuro)Life Tecnologie15510-027Gel inserito in una piastra di Petri sterile Strato di 6 mm di spessore
KOHSigma-AldrichP-6310
NaOHSigma-AldrichS-5881
Bis-fura-2, sale esapotassicoInvitrogenB6810Cellula impoverita
Nome dell'apparecchiaturaAziendaNumero di catalogoCommenti
MicrotomoLeicaVT1000SAffettatura di tessuti
Colla cianoacrilica (Roti-Coll1)Carl Roth GmbH+CoArt-Nr. 0258.1
Estrattore per microelettrodiNarshige International USAPP-83
Tubi capillari per microelettrodiWorld Precision Instruments1B150F-4
Microfil 34 gWorld Precision InstrumentsMF34G-5
Filtro per siringaCorning#431212
MicroscopioLeicaDM LFSCon obiettivi UV 4X, 40X e 63X e telecamera CCD per epifluorescenza
HamamatsuORCA ERCCD a 12 bit
Fura-2 Filter CubeChroma71500ASet con filtro UG11
Polychrome IVTill Photonics GmBHMonochronometer
Occhiali di sicurezza che bloccano i raggi ultraviolettiProdotti
Amplificatore EPC-9HEKA Eletronik
MetafluorMolecular DevicesSoftware di imaging
PatchmasterHEKA EletronikSoftware di acquisizione dati
Igor versione 6WavemetricsElettrofisiologia e Ca2+ Analisi dei dati
VAPRO 5520WestcorOsmometro a pressione di vapore
ultravioletti

Riferimenti

  1. Bading, H., Ginty, D. D., Greenberg, M. E. Regulation of gene expression in hippocampal neurons by distinct calcium signaling pathways. Science. 260, 181-186 (1993).
  2. Ghosh, A., Ginty, D. D., Bading, H., Greenberg, M. E. Calcium regulation of gene expression in neuronal cells.....

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