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Articolo metodologico

Scoperta di nuovi agenti patogeni intracellulari da amoebal co-coltura e approcci amoebal arricchimento

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⸱

DOI:

10.3791/51055

⸱

27 ottobre 2013

 ,  ,  , 
1Institute of Microbiology, University Hospital Center and University of Lausanne

In questo articolo

Sommario

Coculture amoebal è un sistema di coltura cellulare usando amebe aderente a crescere selettivamente patogeni intracellulari in grado di resistere fagociti come amebe e macrofagi. Rappresenta quindi uno strumento chiave per scoprire nuovi agenti infettivi. Arricchimento amoebal permette la scoperta di nuove specie amoebal e dei loro specifici batteri intracellulari.

Abstract

Patogeni intracellulari come la legionella, micobatteri e organismi Chlamydia simili sono difficili da isolare perché spesso crescono poco o per niente su terreni selettivi che di solito vengono utilizzati per coltivare i batteri. Per questo motivo, molti di questi agenti patogeni sono state scoperte solo recentemente o seguente focolai importanti. Questi agenti patogeni sono spesso associati con amebe, che servono come cellula ospite e consentire la sopravvivenza e la crescita dei batteri. Intendiamo qui per fornire una dimostrazione di due tecniche che permettono l'isolamento e la caratterizzazione dei patogeni intracellulari presenti in campioni clinici e ambientali: la co-coltura amoebal e l'arricchimento amoebal. Coculture amoebal permette il recupero di batteri intracellulari inoculando campione indagato su un prato amoebal che può essere infettato e lisate dai batteri intracellulari presenti nel campione. Arricchimento amoebal permette il recupero di amebe presente in un campione clinico o ambientale. Thsi può portare alla scoperta di nuove specie amoebal ma anche di nuovi batteri intracellulari che crescono in particolare in queste amebe. Insieme, queste due tecniche aiutano a scoprire nuovi batteri intracellulari in grado di crescere in amebe. A causa della loro capacità di infettare amebe e resistere fagocitosi, questi batteri intracellulari potrebbero anche sfuggire fagocitosi da parte dei macrofagi e quindi, per essere patogeni eucarioti superiori.

Introduzione

Prima dell'avvento di diagnosi molecolare, microrganismi presenti in nicchie ambientali o in campioni clinici sono stati spesso individuati da loro coltivazione su diversi terreni selettivi, soprattutto su agar in piastre di Petri. Il fenotipo delle colonie batteriche e la loro attività metabolica quindi lasciata classificazione batterica a livello di specie. Brodo può essere anche usato per aumentare la sensibilità del rilevamento. Tuttavia, entrambe le tecniche non consentono il recupero di batteri che crescono lentamente o per niente su questi terreni. Questo è il motivo per cui gli approcci molecolari sono così ampiamente utilizzati al giorno d'oggi. Tuttavia, il rilevamento del DNA fornisce alcun indizio sulla vitalità dei batteri. Inoltre, contrariamente alla cultura, approcci molecolari non comportino un ceppo che può essere ulteriormente caratterizzato.

Studiare gli agenti patogeni che crescono male su terreni solidi o che le cellule hanno bisogno per crescere è complicato. La maggior parte di questi "difficile da coltivare" i batteri sono intr esigentibatteri acellulare, spesso scoperti e caratterizzati seguente grandi epidemie come era il caso di Legionella pneumophila. Questo batterio è stato caratterizzato in seguito ad un'epidemia che si è verificato nel corso di un convegno American Legion. Ben 182 persone sono state infettate e 29 morti a causa di una grave polmonite 1,2. E 'stato poi dimostrato che le amebe erano i padroni di casa naturali di questo batterio e che la loro presenza nelle reti albergo di sistema di aria condizionata e acqua è stata all'origine dello scoppio della malattia, la cosiddetta del legionario 3.

Amebe sono presenti in tutto il mondo e sono stati isolati dal suolo, l'aria, l'acqua e la mucosa nasale di volontari umani (recensiti 4). Queste amebe "vita libera" sono generalmente dividendo autonomamente nell'ambiente, ma può occasionalmente invadere padroni di casa permissive 5. Mangimi amebe su vari microrganismi attraverso la fagocitosi e la successiva digestione lisosomiale da hydrolases 6. Molti batteri intracellulari facoltativi o di obbligare sono in grado di resistere digestione e infettare e dividere in amebe come per esempio batteri o micobatteri Legionella, Chlamydia correlati (recensito in 7 e 8) così. Amebe a vita libera probabilmente rappresentano un importante bacino potenziale di batteri intracellulari che non sono ancora stati scoperti. Ciò ha portato il nostro gruppo ad attuare a Losanna due tecniche principali, chiamati co-coltura amoebal e arricchimento amoebal, che ha permesso di isolare i diversi gruppi diversi nuovi microrganismi intracellulari obbligati da vari campioni ambientali 9-15.

Poiché amebe sono fagociti professionali pascolo su batteri, un batterio in grado di resistere fagocitosi e di crescere all'interno di questi protisti potrebbe anche colonizzare fagociti umani ed essere patogeni verso gli esseri umani. Questo è stato parzialmente dimostrata per alcuni batteri Chlamydia-correlati, come Waddlia chondrophila. W. chondrophila può crescere non solo in amebe ma anche in diversi tipi cellulari quali cellule di mammifero epiteliali, macrofagi e linee cellulari di pesce 16-18. La co-coltura amoebal appare rilevante anche per la rilevazione di batteri intracellulari in campioni clinici 19,20, compresi sgabelli che sono fortemente contaminati da diverse specie batteriche 21.

Qui si descrivono le fasi principali di co-coltura amoebal e arricchimento amoebal, tra cui (a) il trattamento di campioni ambientali o cliniche; (b) la crescita di amebe su supporti axeniche e su un prato batterica di Escherichia coli e (c) la selezione e la caratterizzazione di batteri intracellulari.

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Protocollo

1. Amoebal coculture

1.1 Preparazione del campione

  1. Campione ambientale
    1. I campioni di acqua
      Filtrare il campione d'acqua (500 ml a 1 L) attraverso una membrana dimensione dei pori di 0,22 micron. Poi, scuotere la membrana in ameba saline medie PAS della pagina (120 mg di NaCl, 4 mg di MgSO4 • 7H 2 O, 4 mg di CaCl 2 • 2H 2 O, 142 mg di Na 2 HPO 4, e 136 mg di KH 2 PO 4 in 1 L di acqua distillata).
    2. Campioni solidi
      Risospendere campioni solidi come campioni di terreno o sabbia e campioni semi-solidi come fanghi attivi in ​​acqua distillata o PBS e filtrare attraverso una membrana dimensione dei pori 0,22 micron. Poi, scuotere la membrana in PAS.
    3. I campioni altamente contaminati da amebe endogena e protozoi
      Prima sedimentare i campioni mediante centrifugazione a bassa velocità (180 xg) for 10 min o filtrare attraverso una membrana dimensione dei pori 5 micron. Ulteriori elaborare il surnatante (rispettivamente filtrato), come in 1.1.1.
      Nota: Altre tecniche di decontaminazione potrebbero essere utilizzati per decontaminare ulteriori campioni ambientali: Riscaldare il campione a 50 ° C per 30 minuti o trattare con soluzioni acide o basiche 14.
  2. Campione clinico
    Elaborare campioni clinici seconda delle loro proprietà chimico-fisiche. Filtrare o centrifugare liquidi per rimuovere grosse impurità. Risospendere campioni solidi. Per utilizzare tessuti, macinare, ad esempio utilizzando un homogeneiser Dounce o perline di vetro, e lisare le cellule per liberare i batteri intracellulari.

1.2 Amebe preparazione

  1. Preparato per brodo
    Preparare i seguenti mezzi: un ricco supporto contenente peptone, estratto di lievito e glucosio (PYG, 100 g di peptone proteoso, 10 g di estratto di lievito, 4,9 g di MgSO4 • 7H 2O, 5 g di sodio citrato • 2H 2 O, 0,1 g di Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 • 6H 2 O, 1,7 g di KH 2 PO 4, 1,97 g di Na 2 HPO 4 • 7H 2 O , 45 g di glucosio, e 0,295 g di CaCl 2 a 5 L di acqua distillata) e un mezzo non nutritivo come PAS per specie Acanthamoeba.
  2. Cultura amoebal
    1. Coltivare amebe (Acanthamoeba preferenzialmente castellanii ATCC 30010 o A. polyphaga Linc-Ap1) a 25 ° C in cella fiasche di coltura contenente 30 ml di PYG mezzo.
    2. Raccogliere il amebe forte agitazione del pallone e centrifugare la sospensione cellulare per 10 minuti a 1500 x g. Lavare il pellet due volte con mezzo di PAS. Contare le cellule in una diapositiva Kova e regolare il volume per ottenere una sospensione di 5 x 10 5 cellule per ml.
    3. Trasferire la sospensione amoebal in micropiastre. Utilizzare 1 ml per pozzetto per 12 - e 24-wpiastre ell, 500 microlitri per piastre 48 pozzetti e 300 microlitri per piastre da 96 pozzetti. Incubare la micropiastra per almeno 2 ore a 25 ° C. Questo permette sedimentazione e il fissaggio amebe al fondo di ciascun pozzetto.

1.3 coculture

  1. Esempio di inoculazione
    1. Seminare la piastra da 2.3.3 con diluizioni seriali del campione da 1.1 o 1.2, di solito con serie di diluizioni di 10 volte, partendo con 100 ml di campione non diluito.
    2. Centrifugare la micropiastra a 1.800 xg per 10 min a sedimenti sul prato amoebal microrganismi potenzialmente presenti nel campione. Questo aumenta il contatto e la fagocitosi dei microrganismi da amebe.
    3. Incubare le piastre per 45 minuti a 25 ° C e lavate tre volte con PAS sostituendo il materiale con PAS fresco. Aggiungere 1 ml per pozzetto di PAS con o senza aggiunta di antibiotici (streptomicina, penicillina, gentamicina e / o vancomicina), a seconda delle batteriologicheAL specie che sono cercato.
    4. Incubare la micropiastra a 32 ° C in atmosfera umidificata per evitare incistamento del amebe. Osservare ogni bene ogni giorno con un obiettivo 20X per rilevare la presenza di batteri invasori e lisi amebe.
    5. Nel caso di lisi, eseguire una subcultura su amebe fresco inoculando 100 pl di co-colture di un monostrato di circa 10 5 amebe / cm 2. Per isolare in particolare una determinata specie batteriche, inoculare anche agar specifico progettato per questi batteri (cioè BCYE agar per Legionella spp.).
    6. In assenza di lisi, prendere 100 ml di co-colture quattro a sette giorni dopo la prima inoculazione e inoculare una coltura fresca amoebal di 900 microlitri in una piastra da 24 pozzetti. Se rapida lisi delle amebe si osserva senza proliferazione di batteri, virus potrebbe essere presente. In questo caso, filtrare il supernatante a 0,22 micron e usare la sospensione filtrata per infettare amebe fresco.

1.4 isolamento batterica e la caratterizzazione

  1. Colorazione batterica
    Eseguire co-colture direttamente su vetrini a 24 pozzetti. Rimuovere il supporto ed eseguire la colorazione o immunofluorescenza.
    1. Modificato colorazione Romanowsky
      1. Lasciare asciugare il vetrino. Immergere il vetrino cinque volte nella soluzione fissativo (2 mg / L veloce verde in metanolo).
      2. Immergere il coprioggetto cinque volte nella soluzione colorante I (1,22 g / L Eosina G in tampone fosfato pH 6,6)
      3. Infine, immergere il vetrino 5 volte nella soluzione colorante II (1.1 g / L tiazina in tampone fosfato pH 6,6).
      4. Sciacquare il campione con acqua distillata. Lasciate asciugare e osservare al microscopio.
    2. Ziehl-Neelsen
      1. Lasciare asciugare il vetrino. Coprire il campione con Ziehl fucsina. Riscaldare il colorante con una fiamma fino all'apparizione vapori.
      2. Raffreddare a temperatura ambiente per almeno 5 mine risciacquare con acqua distillata. Coprire il campione con una soluzione di acido cloridrico al 3% in isopropanolo per 2 minuti e risciacquare con acqua distillata.
      3. Copertina per 30 sec con blu di metilene e risciacquare con acqua distillata. Lasciate asciugare e osservare al microscopio 22.
    3. Gimenez colorazione
      1. Preparare una soluzione stock fucsina base miscelando 100 ml di 10% fucsina basica (10 g di fucsina basica in 100 ml di etanolo al 95%), 250 ml di 4% fenolo acquoso e 650 ml di acqua distillata. Incubare a 37 ° C per 48 h prima dell'uso.
      2. Lasciate asciugare il vetrino e fissare mediante passaggio su fiamma. Coprire il campione con fucsina basica appena filtrata (4 ml di fucsina magazzino soluzione di base in 10 ml di 0,1 M tampone fosfato di sodio, pH 7,45) per 2 minuti.
      3. Risciacquare il campione con acqua e incubare in verde malachite (0,8% in acqua distillata) per 10 sec. Sciacquare nuovamente con acqua e ripetere la colorazione verde malachite. Sciacquare nuovamente con acqua. Lasciate che il vetrino asciutto, mount, e osservare al microscopio 23.
    4. Immunofluorescenza
      1. Fissare il vetrino incubando in metanolo per 5 min o con paraformaldeide al 4% per 10 min.
      2. Lavare tre volte con PBS e incubare per 2 ore in una soluzione bloccante (5% BSA, 0.1% saponina in PBS) a temperatura ambiente.
      3. Incubare il vetrino per 1 ora in una soluzione bloccante contenente anticorpi contro il microrganismo di interesse.
      4. Lavare nuovamente per tre volte in PBS e incubare per 1 ora con un anticorpo secondario diretto contro l'anticorpo primario e collegato a un fluoroforo. Lavare tre volte con PBS, montare il coprioggetto ed osservare al microscopio a fluorescenza.
  2. Rilevazione del DNA mediante PCR
    Estrarre il DNA da 100 a 200 ml di co-coltura amoebal. Rileva microrganismi con primer universali rivolti al gene 16S rRNA o primer specifici per le specie di interesse come i micobatteri 24, Legionella 25 o membri del Chlamydiales 26.

2. Arricchimento amoebal

2.1. Preparazione del campione

Risospendere campioni solidi e semi-solidi in PAS vortex. Centrifugare la sospensione a bassa velocità (180 xg) per 10 min. Questo permette di arricchimento di amebe a vita libera nel pellet. Il supernatante può essere utilizzato per coculture amoebal e il pellet di arricchimento amoebal 21.

2.2. Preparazione medio

  1. Aggiungere 1,5 g di agar per 100 ml di PAS e sterilizzare in autoclave il mezzo 15 min a 121 ° C. Versare il terreno caldo in piastre di Petri e lasciare solidificare a temperatura ambiente.
  2. Grow Escherichia coli (ATCC 25922) in brodo LB o tioglicolato notte a 37 ° C. Lavare i batteri due volte con PBS e risospendere in mezzo PAS. Diluire 10x in PAS e diffondere 2-3 ml di questa diluizione su una piastra di PAS agar e lasciare asciugare.

2.3. Esempio di inoculazione

Aggiungere una goccia di campione (o un pezzo di filtro) su un lato della piastra e lasciare scorrere sulla piastra di Petri per formare una linea al centro del piatto.

2.4. La crescita amoebal e sottocultura amoebal

  1. Osservare la piastra di Petri quotidiano. Se viene rilevato un fronte di migrazione amoebal, tagliare un piccolo pezzo di agar al fronte di migrazione e inoculare un piatto fresco NNA Petri ricoperta da un prato di E. coli.
  2. Ripetere la reinoculazione più volte a seconda della purezza del campione, in modo da avere una coltura pura di un dato ceppo amoebal.

2.5. Amebe e batteri caratterizzazione

  1. Raschiare le cellule e risospendere in PAS.
  2. Estrarre il DNA e determinare l'identità di amebe e / o endosimbionti batterici mediante PCR e sequenziamento (16S rRNA di amplificazione per i batteri, risp. 18S rRNA per la amebe e sequenziamento, per esempio).
  3. Utilizzare queste cellule raschiate in PAS per inoculare amebe fresco ed eseguire una co-coltura amoebal per rilevare i batteri eventualmente presenti nel campione.

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Risultati

Utilizzo di co-coltura amoebal e l'arricchimento amoebal, tutta una serie di batteri ambientali e / o patogeni sono stati scoperti (Tabella 1).

Coculture amoebal è stato utilizzato dal nostro gruppo ed altri per analizzare campioni ambientali, impianti di trattamento delle acque e sistemi di distribuzione dell'acqua. Una vasta gamma di microrganismi potrebbe essere isolato con questa tecnica. I più comuni batteri isolati da co-coltura amoebal sono membri del genere <...

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Discussione

Coculture amoebal e l'arricchimento amoebal sono metodi efficaci che hanno permesso l'isolamento di molte nuove specie batteriche e amoebal. I risultati ottenuti con questi metodi confermano la presenza ubiquitaria di entrambi amebe e batteri-ameba resistere nell'ambiente, e la più interessante delle reti idriche artificiali che sono considerati essere controllato da trattamenti chimici come la clorazione e ozonizzazione. Coculture amoebal e l'arricchimento amoebal sono strumenti essenziali per isolare e...

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Ringraziamenti

Ringraziamo Pr. Bernard La Scola per utili consigli tecnici e interessante discussione sulla co-coltura amoebal e di arricchimento amoebal. Ringraziamo anche il Dott. Vincent Thomas per il suo aiuto nella realizzazione tecnica nel nostro laboratorio.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Glucosio monoidratoMerck, Darmstadt, Germania108342
0,22 μ m membrana dimensione dei poriMerck Millipore, Darmstadt, GermaniaSCVPU11RE
peptone proteosoBecton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ211693
estratto di lievitoBecton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ212750
Palloni per colture cellulariBecton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ353135
Kova vetrinoHycor, Indianapolis, IN87144
micropiastre per colture cellulariCorning Inc, Corning, NY3524
Kit di colorazione Diff-QuikSiemens Healthcare diagn., Monaco di Baviera, Germania130832
Ziehl fuchsinFluka, St-Louis, MI21820
fucsina di baseSigma, St-Louis, MI857843
PhenolSigma, St-Louis, MIP1037Ossalato verde di malachite corrosivo e mutageno
Fluka, St-Louis, MI63160
Soluzione di paraformaldeide al 16%Microscopia elettronica Sciences, Hatfield, PA15710
SaponinaSigma, St-Louis, MI84510

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