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Articolo metodologico

Monitoraggio della concorrenza intraspecie in una popolazione di cellule batteriche mediante cocultivazione di ceppi marcati fluorescentmente

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DOI:

10.3791/51196

18 gennaio 2014

In questo articolo

Sommario

I batteri possono accumulare mutazioni dannose o benefiche durante la loro vita. In una popolazione di cellule individui che hanno accumulato mutazioni benefiche possono rapidamente sovracompetire i loro simili. Qui presentiamo una procedura semplice per visualizzare la competizione intraspecie in una popolazione di cellule batteriche nel tempo utilizzando individui etichettati fluorescentmente.

Abstract

Molti microrganismi come i batteri proliferano estremamente velocemente e le popolazioni possono raggiungere alte densità cellulari. Piccole frazioni di cellule in una popolazione hanno sempre mutazioni accumulate che sono dannose o benefiche per la cellula. Se l'effetto di forma fisica di una mutazione fornisce alla sottopopolazione un forte vantaggio di crescita selettiva, gli individui di questa sottopopolazione possono rapidamente sovracompetarsi e persino eliminare completamente i loro compagni immediati. Pertanto, piccoli cambiamenti genetici e accumulo di cellule basate sulla selezione che hanno acquisito mutazioni benefiche possono portare a uno spostamento completo del genotipo di una popolazione cellulare. Qui presentiamo una procedura per monitorare la rapida espansione clonale e l'eliminazione delle mutazioni benefiche e dannose, rispettivamente, in una popolazione di cellule batteriche nel tempo per cocultivazione di individui etichettati fluorescentmente del batterio modello Gram-positivo Bacillus subtilis. Il metodo è facile da eseguire e molto illustrativo per mostrare la competizione intraspecie tra gli individui in una popolazione di cellule batteriche.

Introduzione

I batteri del suolo sono solitamente dotati di reti normative flessibili e ampie capacità metaboliche. Entrambe le caratteristiche consentono alle cellule di regolare i loro percorsi catabolici e anabolizzanti per competere con i loro simili e altri microrganismi per i nutrienti, che sono disponibili in una data nicchia ecologica1. Tuttavia, se i batteri non sono in grado di adattarsi al loro ambiente, altri meccanismi possono causare la sopravvivenza di una specie. Infatti, poiché molti batteri proliferano rapidamente e le popolazioni possono raggiungere sottopopolazioni ad alta densità cellulare possono avere mutazioni benefiche accumulate spontaneamente ....

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Protocollo

1. Preparazione di piatti Agar, media culturali, criostock e preculture

  1. Preparare i mezzi di crescita e i reagenti richiesti (vedi tabella dei materiali e dei reagenti).
  2. Striature i ceppi di B. subtilis (ad es. BP40 (rocG+ gudBCR amyE::PgudB-yfp) e BP52 (rocG+ gudB+ amyE::PgudB-cfp) esprimendo rispettivamente uno e due GDH attivi)2 che saranno utilizzati nell'esperimento di competizione su piastre di agar medie SP per ottenere singole colonie. Incubare le piastre durante la notte a 37 °C.

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Risultati

Il metodo qui descritto è stato applicato con successo per visualizzare la concorrenza intraspecie in una popolazione cellulare costituita da ceppi di B. subtilis etichettati rispettivamente con i geni cfp e yfp che codificano i fluorofori CFP e YFP. Come illustrato nella figura 3, il metodo può essere utilizzato per visualizzare la concorrenza intraspecie in modo molto illustrativo. Individuando i campioni su piccole aree, la composizione clonale della popolazione cellulare è .......

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Discussione

Diversi metodi sono stati sviluppati per analizzare la forma fisica competitiva deibatteri 16. In molti casi i batteri sono stati etichettati con diverse cassette di resistenza agli antibiotici17. Simile al nostro approccio, l'etichettatura delle cellule con cassette di resistenza agli antibiotici consente la valutazione della forma fisica competitiva dei batteri durante la cocultivazione in condizioni di crescita definite. Inoltre, questo metodo può essere utilizzato per determinare la forma fisica.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Il lavoro nel laboratorio degli autori è stato sostenuto dalla Deutsche Forschungsgemeinschaft (http://www.dfg.de; CO 1139/1-1), il Fonds der Chemischen Industrie (http://www.vci.de/fonds) e il Centro di Biologia Molecolare di Gottinga (GZMB). Gli autori vorrebbero riconoscere Jörg Stülke per i commenti utili e la lettura critica del manoscritto.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
(NH4)2SO4 Roth, Germania3746
AgarDifco, USA214010
Citrato ferrico di ammonio (CAF)Sigma-Aldrich, Germania9714
CaClRoth, Germania5239
GlucoseApplichem, GermaniaA3617
GlycerolRoth, Germania4043
K2HPO4• 3H2ORoth, Germania6878
KClApplichem, GermaniaA3582
KH2PO4Roth, Germania3904
KOHRoth, Germania6751
MgSO4• 7H2Roth, GermaniaP027
MnCl2 Roth, GermaniaT881
MnSO4• 4H2OMerck Millipore, Germania102786
NaClRoth, Germania9265
Brodo nutrienteRoth, GermaniaX929
Glutammato di potassioApplichem, GermaniaA3712
TriptoneRoth, Germania8952
TriptofanoApplichem, GermaniaA3445
Estratto di lievitoRoth, Germania2363
1,5 ml Provette di reazioneSarstedt, Germania72.690.001
2,0 ml Provette di reazioneSarstedt, Germania72.691
15 ml Provette di plastica con tappo a viteSarstedt, Germania62.554.001
Piastre di PetriSarstedt, Germania82.1473
1,5 ml Cuvette in polistireneSarstedt, Germania67.742
Provette di coltura in vetro da 15 ml Marca, Germania7790 22
Palloni da 100 ml con tappi in alluminio Marca, Germania928 24
Pipette sterili in vetro da 10 mlMarca, Germania278 23
Incubatrice (28 e 37 ° C)New BrunswickM1282-0012
Set di pipette standard (2-20 μ l, 10-100 μ l, 100-1.000 μ l)Eppendorf, Germania4910 000.034, 4910 000.042,Centrifuga
da tavolo per provette di reazione da 1,5 e 2 mlThermo Scientific, Heraeus Fresco 21, Germania75002425
Centrifuga da tavolo per provette in plastica da 15 mlHeraeus Biofuge Primo R, Germania75005440
Spettrofotometro standardAmersham Biosciences Ultrospec 2100 pro, Germania80-2112-21
Microscopio a stereofluorescenza Zeiss SteREO Lumar V12, Germania495008-0009-000
Congelatore (-20 e -80 ° C)--
Frigorifero (4 gradi; C)--
AutoclaveZirbus, LTA 2x3x4,Germania-pHmetro
pH-metro 766, Calimatic, Knick, Germania766
VortexVortex 3, IKA, Germania3340000
BalanceCP2202S, Sartorius, Germaniasostituito da
Black pen (pennarello indelebile)Staedler, Germania317-9
Programma PowerpointMicrosoft, USA-Office
Programma ExcelMicrosoft, USA-Programmaper l'elaborazione dei dati
Adobe Photoshop CS5Adobe, USAsostituito da CS6, downloadProgramma per computer per l'elaborazione delle immagini
PCoMac-ZEN
pro 2011 software per il microscopioa stereofluorescenzaZeiss, Germania410135 1002 110AxioCam MRc Rev. Ottenuto tramite Zeiss
Ricette di soluzioni specifiche
SP Medium
8 g Brodo
0.25 mg MgSO4• 7H2O
1 g KCl
15 g di agar per terrenose necessario
aggiungere 1 L con autoclave H2Oper 20 min a 121 gradi; C
1 ml di CaCl2 (0,5 M), sterilizzato per filtrazione
1 ml di MnCl2 (10 mM), sterilizzato per filtrazione
2 ml di citrato ferrico ammonico (CAF, 2,2 mg/ml), sterilizzato per filtrazione
LB Medium
10 g di Triptone
5 g Estratto
10 g NaCl
15 g agar per LB solido mediose necessario
aggiungere 1 L con autoclave H2Oper 20 min a 121 gradi C
C-Glc Minimo Medio
200 ml 5 x Sali C
10 ml L-Triptofano (5 mg/ml), sterilizzato per filtrazione
10 ml di citrato ferrico di ammonio (CAF, 2.2 mg/ml), sterilizzato per filtrazione
10 ml di sali
25 ml Glucosio (20%)autoclavato per 20 minuti a 121 gradi C
aggiungere 1 L con H2O
CE-Glc Medium minimo
200 ml 5 x Sali C
10 ml di L-Triptofano (5 mg/ml), sterilizzato per filtrazione
10 ml di citrato ferrico di ammonio (CAF, 2,2 mg/ml), sterilizzato per filtrazione
10 ml III’ sali
20 ml Glutammato (40%)
25 ml Glucosio (20%), autoclavato per 20 min a 121 gradi C
aggiungere 1 L con H2O
sterili 5 x C sali 
20 g KH2PO4
80 g K2HPO4&toro; 3H2O
16,5 g (NH4)2SO4
aggiungere 1 L con autoclave sterile H2Oper 20 minuti a 121 gradi; Sali
III'
0,232 g MnSO4• 4H2O
12,3 g MgSO4• 7H2O
aggiungere 1 L con H2O sterile, autoclave per 20 min a 121 gradi; C
40% Soluzione
200 g di acido
regolare il pH a 7,0 aggiungendo circa 80 g KOH
aggiungere 0,5 L con autoclave sterile H2Oper 20 minuti a 121 gradi; C
0.9% Soluzione salina (NaCl)
aggiungere 1 L con autoclave sterile H2Oper 20 min a 121 ° C
50% soluzione di glicerolo
295 ml di glicerolo (87%)
aggiungere 0,5 L con autoclave sterile H2Oper 20 minuti a 121 gradi; C
Batteri (Tutti i ceppi sono basati sul ceppo Bacillus subtilis 168)
Bacillus subtilis BP40 (rocG+ gudBCR amyE::P gudB-yfp) di ceppi di laboratorio
Bacillus subtilis BP41 (rocG+ gudBCR amyE::P gudB-cfp) 
Bacillus subtilis BP52 (rocG+ gudB+ amyE::P gudB-cfp)
Bacillus subtilis BP156 (rocG+ gudB+ amyE::P gudB-yfp)
nutriente SP solido di lievitoIII'Cdi glutammatoL-glutammicoRaccolta

Riferimenti

  1. Buescher, F. I., et al. Global network reorganization during dynamic adaptations of Bacillus subtilis metabolism. Science. 335, 1099-1103 (2012).
  2. Gunka, K., Stannek, L., Care, R. A., Commichau, F. M.

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Ristampe e permessi

Tag

Monitoraggio della competizione intraspecificametodo di coculturamicroscopia a fluorescenza stereoscopicaanalisi del conteggio delle colonieceppi di Bacillus subtilisset di filtri per fluorescenzamisurazione della densità otticacoltivazione su piastra di agar