Method Article

Specifici Sequenza Etichettatura degli acidi nucleici e proteine ​​con metiltransferasi e cofattore Analoghi

DOI:

10.3791/52014

November 22nd, 2014

In This Article

Summary

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DNA e proteine ​​sono la sequenza-specifica etichettati con affinità o gruppi reporter fluorescente con DNA o proteine ​​metiltransferasi e analoghi cofattore sintetici. A seconda della specificità cofattore di enzimi, aziridina o doppi analoghi cofattore attivati ​​sono impiegati per l'etichettatura di uno o due step.

Abstract

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S -Adenosyl-L-metionina (SAM) o AdoMet metiltransferasi-dipendente (MTase) catalizzano il trasferimento del gruppo metilico attivato dal AdoMet a specifiche posizioni in DNA, RNA, proteine ​​e piccole biomolecole. Questa reazione di metilazione naturale può essere espansa a un'ampia varietà di reazioni di alchilazione con analoghi sintetici cofattore. Sostituzione del centro solfonio reattiva di AdoMet con un anello di aziridina conduce cofattori accoppiabili con DNA da vari MTases DNA. Questi cofattori aziridina possono essere equipaggiati con gruppi reporter diverse posizioni della frazione adenina e utilizzati per S-specific equence M ethyltransferase- I nduced L Abel zione del DNA (sorridendo DNA). Come esempio tipico diamo un protocollo per biotinilazione di pBR322 plasmide DNA sequenza 5'-ATCG A T-3 'con il DNA MTase M.BseCI e il cofattore aziridina 6BAz inun passo. Estensione del gruppo metilico attivato con insaturi gruppi alchil risultati in un'altra classe di analoghi AdoMet che sono utilizzati per m ethyltransferase diretto T rasferimento di un ctivated ruppi G (MTAG). Poiché le catene laterali estesi vengono attivati ​​dal centro solfonio e il legame insaturo, questi cofattori sono chiamati analoghi AdoMet doppio attivati. Questi analoghi funzione non solo come cofattori per DNA MTases, come cofattori aziridina, ma anche per RNA, proteine ​​e piccole molecole MTases. Essi sono tipicamente utilizzati per modificazione enzimatica di substrati MTase con gruppi funzionali uniche che sono contrassegnati con gruppi del reporter in una seconda fase chimica. Questo è esemplificato in un protocollo per l'etichettatura di fluorescenza di proteine ​​istone H3. Un piccolo gruppo propargile viene trasferito dal SeAdoYn cofattore analogica alla proteina dalla lisina istone H3 4 (H3K4) MTase Set7 / 9 seguito da etichettatura clic delalkynylated H3 istone con TAMRA azide. Etichettatura MTase-mediata con analoghi cofattore è una tecnologia abilitante per molte applicazioni interessanti, tra cui l'identificazione e lo studio funzionale di substrati MTase e genotipizzazione del DNA e rilevazione metilazione.

Introduction

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Etichettatura specifica degli acidi nucleici e proteine ​​1,2 3,4 è di grande interesse per le caratterizzazioni funzionali, diagnosi medica e (nano) biotecnologie. Qui vi presentiamo un metodo enzimatico di etichettatura per questi biopolimeri che si basa su S -adenosyl-L-metionina (SAM AdoMet o) metiltransferasi-dipendente (MTases). Questa classe di enzimi (EC 2.1.1.) Rivolge singole posizioni nucleofili (azoto, ossigeno, zolfo e atomi di carbonio) all'interno specifici residui di acidi nucleici e proteine ​​e naturalmente trasferisce il gruppo metilico attivato della AdoMet cofattore (Figura 1A) 5. Inoltre, MTases po....

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Protocol

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1. Istruzioni generali

  1. Conservare aziridina cofattore 6BAz (in DMSO) e di proteine ​​MTase Set7 / 9 a -80 ° C e tutti gli altri reagenti tra cui doppio attivato cofattore SeAdoYn e DNA MTase M.BseCI (nel 50% glicerolo) a -20 ° C.
  2. Determinare la concentrazione di 6BAz e SeAdoYn tramite spettroscopia UV / Vis utilizzando i coefficienti di estinzione ε 269nm (6BAz) = 16000 centimetri -1 m -1 e ε 260nm (SeAdoYn) = 15400 centimetri -1 M -1 in acqua deionizzata. Determinare la concentrazione di MTases dal saggio Bradford o, se il coefficiente di estinzione è disponibile, tra....

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Results

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One-step Etichettatura del DNA tramite aziridina Cofattori

Questa reazione viene effettuata ad esempio con il DNA MTase M.BseCI, che modifica il secondo residuo di adenina nel doppio filamento 5'-ATCG A T-3 'sequenza ed ha un sito di riconoscimento sul plasmide pBR322 (Figura 4A). Per verificare l'etichettatura plasmide, pBR322 è sfidato con la endonucleasi di restrizione (REase) R.TaqI (5'-TCGA-3 '). R.TaqI ha sette siti pBR322, uno dei quali è inc.......

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Discussion

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Etichettatura in un unico passaggio di DNA con MTases DNA e cofattori aziridina (DNA sorridendo) è un metodo robusto ma alcuni aspetti deve essere considerato al momento di pianificare l'esperimento.

Cofattore Aziridine: La concentrazione 6BAz per l'etichettatura del DNA con M.BseCI era di 60 micron. Quando si utilizzano altri MTases DNA la concentrazione cofattore dovrebbe essere ottimizzato, ad esempio concentrazioni partire da 20 micron sono stati impiegati con i.......

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Disclosures

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Gli autori rivelano il seguente interesse finanziario concorrente: E.W. è inventore di brevetti correlati.

Acknowledgements

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Gli autori ringraziano Kerstin Glensk per aver preparato gli MTases M.BseCI e Set7/9 e ringraziano il finanziamento da parte dell'Iniziativa di Eccellenza dei Governi Federali e Länder tedeschi e dell'Università RWTH di Aquisgrana. Gli autori sono lieti di fornire 6BAz e SeAdoYn o altri analoghi cofattoriali per la ricerca collaborativa.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
6BAzSintetizzato secondo Weinhold et al., numero di brevetto US 8,129,106, pubblicato il 6 marzo 2012.
β-MercaptoetanoloServa28625
Acido aceticoFisher Scientific10304980
Soluzione di acrilammide/bis, 37,5:1Serva10688
Agarosio ultrapuroInvitrogeno16500100
Persolfato di ammonio (APS)Serva13375
Bis-TrisGerbu1304
Acido boricoGerbu1115
Blu di bromofenolo Sale di NaServa15375
Solfato di rame (II)AldrichC1297
CloroformioFisher Scientific10020090
Coomassie Blu brillanteServa17525
Sale disodico EDTAGerbu1034
EtanoloMerck100983
GelRed (10.000x in acqua)Biozio41003
Glicerolo (99,5%)Gerbu2006
FastRuler Scala DNA a bassa gammaThermo ScientificSM1103
Histone H3Plasmide di espressione ottenuto dal Dr. Philipp Voigt e dal Prof. Danny Reinberg; espressione e isolamento secondo T. J. Richmond et al., J. Mol. Biol. 1997, 272, 301-311.
Plasmide di espressione M.BseCIottenuto dal Dr. Michael Kokkinidis; espressione e isolamento secondo Kapetaniou et al., Acta Cryst. 2006, F63, 12-14.
MetanoloFisher Scientific 10675112
Cloruro di magnesio esaidratoJ.T. Baker4003
MOPSGerbu1081
Cloruro di sodioGerbu1112
Striscia di pH (Neutralit)Merck1.095.330.001
pBR322Thermo ScientificSD0041
R.TaqI (10 u/µ l)Thermo ScientificER0671
SeAdoYnsintetizzato secondo Willnow et al., ChemBioChem 2012, 13, 1167-1173.
Plasmide di espressione Set7/9ottenuto dal Prof. Danny Reinberg, espressione e isolamento secondo D. Reinberg et al., Genes Dev.2002, 16, 479-489.
StreptavidinaGerbu3058
(+)-Sodio L-ascorbatoSigma Life ScienceA7631
SDS Gerbu granulare1833
di-sodio idrogenofosfatoMerck106,586
TAMRA azideSintetizzato secondo il riferimento 30: Willnow et al., ChemBioChem 2012, 13, 1167-1173.
Tampone TaqI (10x)Thermo ScientificB28
N,N,N',N'-Tetrametiletilendiammina (TEMED)Acros Organics42058
Tris-HClGerbu1028
Tris-X (TRIS-base)Gerbu1018
Tris(3-idrossipropiltriazolil-metil)ammina (THPTA)Sigma-Aldrich762342

References

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  1. Gottfried, A., Weinhold, E. Sequence-specific covalent labelling of DNA. Biochem. Soc. Trans. 39, 623-628 (2011).
  2. Zohar, H., Muller, S. J. Labeling DNA for single-molecule experiments: methods of labeling internal specific sequences on double-stranded ....

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Methyltransferase LabelingSequence specific DNA LabelingProtein Fluorescence LabelingAziridine Cofactor AnaloguesDouble activated AdoMet AnaloguesM BseCI DNA MethyltransferaseSet7 9 Histone MethyltransferaseSMILing DNA TechniquemTAG Enzymatic TransferClick Chemistry Labeling

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