Articolo metodologico

Bare Metal Stent ferromagnetico per Capture cellule endoteliali e conservazione

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DOI:

10.3791/53100

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18 settembre 2015

 ,  ,  ,  , 
1Division of Engineering, Mayo Clinic, 2Division of Cardiovascular Diseases, Mayo Clinic, 3Department of Cardioangiology, ICRC, St. Anne's University Hospital, 4Mayo Clinic College of Medicine

In questo articolo

Sommario

I nostri obiettivi erano di progettare, produrre e testare stent ferromagnetici per la cattura delle cellule endoteliali. Dieci stent sono stati testati per la frattura e altre 10 stent sono stati testati per magnetismo mantenuto. Infine, 10 stent sono stati testati in vitro e altre 8 stent sono stati impiantati in 4 maiali per mostrare la cattura e la conservazione delle cellule.

Abstract

È necessario un rapido endotelizzazione di stent cardiovascolari per ridurre la trombosi dello stent e per evitare la terapia anti-piastrinica che può ridurre il rischio di sanguinamento. La possibilità di utilizzare forze magnetiche per catturare e trattenere le cellule endoteliali escrescenza (EOC) marcate con nanoparticelle di ossido di ferro super-paramagnetiche (spion) è stato indicato in precedenza. Ma questa tecnica richiede lo sviluppo di uno stent meccanicamente funzionale da un materiale magnetico e biocompatibile seguita da in-vitro e in vivo alcune prove endotelizzazione rapida. Abbiamo sviluppato uno stent debolmente ferromagnetico in acciaio inox 2205 duplex utilizzando computer aided design (CAD) e il suo design è stata ulteriormente raffinata con analisi agli elementi finiti (FEA). Il disegno finale dello stent mostrato una deformazione principale sotto del limite frattura del materiale durante crimpatura meccanica ed espansione. Cento stent sono stati fabbricati e un loro sottoinsieme è stato utilizzato per prove meccaniche, retained misure di campo magnetico, studi in vitro di cattura delle cellule, e in vivo studi di impianto. Dieci stent sono stati testati per la distribuzione per verificare se sono sostenuti aggraffatura e l'espansione del ciclo senza guasti. Altri 10 sono stati magnetizzati con stent un forte magnete al neodimio e il loro campo magnetico conservato è stato misurato. Gli stent hanno mostrato che il magnetismo trattenuto era sufficiente a catturare spion marcato EOC nei nostri studi in vitro. Spion marcato EOC cattura e la conservazione sono stati verificati in modelli animali di grandi dimensioni mediante l'impianto di stent 1 magnetizzato e 1 stent controllo non magnetizzato in ognuno dei 4 maiali. Le arterie stent sono stati espiantati dopo 7 giorni e analizzati istologicamente. Gli stent debolmente magnetici sviluppati in questo studio sono stati in grado di attrarre e trattenere le cellule endoteliali spion marcato che possono promuovere una rapida guarigione.

Introduzione

I pazienti impiantati con stent vascolari realizzati con materiali trombogenici come acciaio inossidabile, cromo cobalto e cromo platino - sia stent metallici nudi (BMS) che stent a rilascio di farmaco (DES) - necessitano di terapia antipiastrinica per prevenire la formazione di trombi. I BMS guariscono rapidamente, ma sono soggetti a restenosi in stadio avanzato a causa di una guarigione incompleta. I DES richiedono una terapia antipiastrinica a lungo termine a causa della guarigione ritardata. La terapia antipiastrinica somministrata per evitare la trombosi a seguito di una guarigione incompleta o ritardata porta ad un aumento del rischio di sanguinamento e potrebbe non essere adatta per alcuni pazienti1,2. Uno stent ideale guarirà completamente e rapidamente, evitando così la terapia antipiastrinica a lungo termine e la restenosi in fase avanzata. Questa guarigione completa può essere ottenuta solo se lo stent viene rapidamente rivestito con un monostrato di cellule endoteliali dopo l'impianto. È stato dimostrato che il rivestimento degli stent con materiali biocompatibili come l'oro o altri biopolimeri migliora la tromboresistenza, ma nessuna di queste tecniche ha raggiunto la compatibilità ematica ideale, come potrebbe essere possibile rivestendo con cellule endoteliali3,4.

Uno stent può essere rivestito con cellule endoteliali dopo l'impianto attirando le cellule progenitrici circolanti. Questa tecnica di autosemina può essere ottenuta utilizzando ligandi e anticorpi. Ma questa tecnica è limitata dal basso numero di cellule progenitrici endoteliali circolanti. Una strategia promettente consiste nel fornire le cellule direttamente allo stent immediatamente dopo l'impianto durante un breve periodo di occlusione del flusso sanguigno3,5. Questa strategia richiede una tecnica per catturare rapidamente le cellule e trattenerle sullo stent anche dopo aver ripristinato il flusso sanguigno. Abbiamo sviluppato una tecnica in cui uno stent magnetico viene utilizzato per attrarre e trattenere le cellule endoteliali marcate magneticamente consegnate dopo l'impianto. Per raggiungere questo obiettivo, è necessario un BMS funzionale con proprietà magnetiche sufficienti per catturare e trattenere le cellule endoteliali marcate magneticamente6.

In questo articolo, discutiamo i metodi per progettare, produrre e testare uno stent in acciaio inossidabile 2205. Gli stent sono stati progettati utilizzando CAD e FEA. Gli stent prodotti sono stati magnetizzati utilizzando un magnete al neodimio e il campo magnetico trattenuto è stato misurato utilizzando una sonda con microsensore a magnetoresistenza. Durante i nostri esperimenti in vitro, abbiamo quindi testato gli stent per la cattura di cellule marcate magneticamente in un piatto di coltura. Infine, gli stent sono stati testati in vivo impiantando stent magnetici e non magnetici in 4 maiali e analizzando istologicamente le arterie con stent.

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Protocollo

Tutti gli studi sugli animali sono stati approvati dalla cura degli animali e del Comitato Istituzionale Utilization (IACUC) presso la Mayo Clinic.

1. Progettazione e analisi di un 2205 in acciaio inossidabile Stent

  1. Progettare un stent di metallo nudo con CAD
    1. Effettuare un cilindro cavo estruso selezionando in funzione 'Estrusione / base' con lo spessore di parete pari allo spessore stent puntone.
    2. Progettare un modello di stent su un piano di schizzo diverso tangente al cilindro estruso. Effettuare la larghezza del modello piatto per abbinare la circonferenza del cilindro cavo estruso.
    3. Trasferire sul cilindro cavo utilizzando la funzione di avvolgere il design modello piatto.
    4. Salvare la parte nel suo formato nativo e anche in formato ACIS deve essere esportato per FEA.
  2. Analisi agli elementi finiti per i modelli stent
    1. Importare la geometria solida salvato in formato ACIS nel modulo parte del software FEA per ulteriori analysè.
    2. Modello 2 cilindri analitici coassialmente allo stent nella parte modellatore del software FEA. Il cilindro esterno ha un diametro iniziale maggiore del diametro dello stent per simulare la pressa e il cilindro interno ha un diametro iniziale di 1 mm per simulare un pallone per gonfiaggio.
    3. Fare doppio clic sulla voce di albero del modellatore assemblea 'casi' di montare sopra dette parti in posizioni relative.
    4. Utilizzare il modulo di maglia del software FEA, specificare il tipo di elemento come 20 nodi elemento esaedrica con l'integrazione ridotta, specificare le dimensioni dell'elemento, e maglie dello stent.
    5. Specificare attrito coppie a contatto rigide tra lo stent e due cilindri, rispettivamente nelle "Proprietà" della interazione del modello.
    6. Assegnare comportamento sforzo-deformazione elasto-plastico di acciaio inossidabile 2205 al modello dello stent.
    7. Definire condizioni al contorno per crimpare primo luogo il cilindro esterno di 1 mm che simula il cRimping dello stent. Rimuovere il cilindro esterno per simulare il rilassamento dello stent crimpato. Espandere il cilindro interno di 3 mm per simulare l'espansione e, infine, rimuovere il cilindro interno per simulare recoil dello stent.
    8. Definire i parametri di simulazione, tra cui il numero di processori e quantità di RAM allocati nella voce albero modello di 'Analisi' ed eseguire la simulazione.
    9. Una volta che la simulazione, aprire il file risultato (filename.odb) e post-elaborare i risultati di studiare le deformazioni principali e migliorare iterativamente il disegno stent per ottenere una deformazione principale del 20%, che è inferiore al limite cedimento del materiale, .

2. Stent fabbricazione e la sperimentazione per la piegatura e di espansione

  1. Stent fabbricazione
    1. Ottenere i tubi in acciaio inossidabile 2205 di pistola foratura e molatura di precisione barra magazzino materiale presso una società di lavorazioni meccaniche di precisione, come azione di precisione Prodotti in Pioneer,OH.
    2. Trasferire i tubi a terra di precisione e il modello di progettazione dello stent piatta ad una società di stent taglio come Laserage Technology Corporation a Waukegan, IL per taglio laser e elettrolucidatura.
    3. Passivare la superficie degli stent elettrolucidate da essi submersing in un acido forte (50% HCl) per 10 minuti seguiti da una base (10% NaHCO3) per altri 10 min. ATTENZIONE: maneggiare sostanze chimiche con i dispositivi di protezione adeguata e sotto una cappa aspirante. Infine, lavare gli stent con alcool etilico e acqua deionizzata. Questo processo è chiamato decapaggio acido.
  2. Prove di stent fabbricati per la piegatura e l'espansione
    1. Crimp lo stent su un pallone a tre ante con una mano tesa strumento di piegatura. Tenere lo stent e il pallone a tre ante in pinza. Premere la maniglia per deformare radialmente lo stent da crimpare sul pallone.
    2. Ispezionare lo stent a pressare utilizzando un microscopio per uniforme aggraffatura e qualsiasi segno di fallimento nella struttura a causaper deformazione plastica.
    3. Espanderlo al diametro progettato 3 mm pressurizzando il palloncino a tre ante con acqua. Esaminare gli stent espanso per le fratture microscopiche e l'espansione uniforme.

3. Caratterizzazione di stent per Retained Campo Magnetico

NOTA: magnete cilindrico del diametro di 2 pollici e 1 pollice di altezza è stato utilizzato in questo studio. I poli del magnete sono allineate lungo l'asse. La densità di flusso magnetico superficiale del magnete è di circa 1 T.

  1. Magnetizzare gli stent diametralmente o assiale con un forte magnete al neodimio. Tenere il stent vicino al magnete forte per circa 1 min per la magnetizzazione.
  2. Tenere il stent su una delle facce piane con il suo diametro lungo le linee del campo magnetico per essere magnetizzate diametralmente o tenere lo stent accanto alla superficie cilindrica con asse lungo le linee del campo magnetico per magnetizzare assialmente. Fiel magnetico a nuovod dello stent è risultato essere stabile per almeno 24 ore, ma utilizzare lo stent non appena possibile dopo magnetizzazione.
  3. Montare gli stent individualmente su mandrini di vetro e poi montare i mandrini di vetro nel mandrino precisione dell'apparecchio sondaggio magnetica. Sonda microsensore magnetica può essere posizionata con precisione vicino allo stent senza toccare la superficie con la XYZ fasi di montaggio del dispositivo di tastatura magnetica (Figura 4).
  4. Misurare la lettura basale della microsensore magnetico lontano dallo stent e quindi misurare il campo magnetico trattenuto sulla superficie dello stent posizionando la sonda con le fasi XYZ del proiettore tastatura magnetica.

4. magnetici Studi cellulare Capture

  1. Ottenere cellule, l'etichettatura con spion e colorazione con colorante fluorescente
    1. Derivare le cellule endoteliali escrescenza (EOC) da sangue periferico suino come descritto in 5,7. Cultura in un pallone T-75 until circa l'80% confluenti (5x10 6 a 8x10 6 cellule).
    2. Sintetizzare SPIONs come diametro di 10 nm magnetite (Fe 3 O 4) nucleo circondato da 50 poli di spessore nm (lattico-co-glicolico acido) (PLGA) Coperture come descritto in 8,9.
    3. Incubare la EOC derivato con spion ad una concentrazione di 200 ug / ml di mezzo di coltura cellulare per 16 ore a 37 ° C.
    4. Aspirare il mezzo di coltura cellulare delicatamente. Lavare delicatamente le cellule aggiungendo 10 ml di tampone fosfato salino (PBS) al pallone, dondolo, e aspirare il PBS.
    5. Colorare le cellule con colorante fluorescente (CM-DII) per la visualizzazione durante gli esperimenti. Ciò avviene secondo le istruzioni del fabbricante aggiungendo il colorante a 10 ml di mezzo di coltura cellulare ad una concentrazione di 5 microlitri / ml e incubando le cellule con per 30 minuti a 37 ° C.
    6. Lavare le cellule con PBS come al punto 4.1.4 e incubare con 3 ml di 0,25% soluzione di tripsina-EDTA per 5 min a 37 ° C persollevare le cellule dal pallone.
    7. Trasferire la sospensione cellulare in una provetta da 15 ml, rabboccare con PBS e centrifugare a 500 xg per 5 min a formare un pellet di cellule.
    8. Risospendere il pellet cellulare in PBS ad una concentrazione di 1-2x10 6 cellule / ml e miscelare accuratamente pipettando in e fuori del tubo conico più volte.
  2. Studi in vitro di cellule
    1. Progettare e fabbricare (ad esempio, stampa 3D) un semplice attrezzo per tenere lo stent appena sopra la superficie di un vetrino di vetro.
    2. Smagnetizzare uno stent utilizzando un degausser elettromagnetica o magnetizzare uno stent diametralmente o assiale con un forte magnete al neodimio.
    3. Pipettare il EOC spion marcato sospesa in PBS nel piatto contenente gli stent di controllo assiale magnetizzati o diametralmente magnetizzate o non magnetizzate. Immagine gli stent con EOC sospesa in PBS immediatamente per la fluorescenza usando un microscopio a fluorescenza invertito.
5. in vivo Animal Studies

  1. Impianto di stent
    1. Disegna sangue periferico da 4 maiali Yorkshire sani - peso di circa 50 kg - tre settimane prima di impianto di stent, rispettivamente, e la cultura EOC come descritto in 5,7.
    2. Somministrare farmaci anti-piastrinici di partenza 3 giorni prima dell'intervento (aspirina 325 mg e clopidogrel 75 mg al giorno).
    3. Il giorno impianto dello stent, anestetizzare i maiali con intramuscolare Telazol, Xilazina, e atropina (5 / 2-3 / 0,05 mg / kg, rispettivamente), come indicato nelle linee guida istituzionali applicabili cura degli animali e l'uso.
    4. Intubare e posizionare il maiale inalazione di 1-2,5% anestesia isoflurano.
    5. Radere la regione ventrale del collo del maiale e condurre la procedura in condizioni sterili generali.
    6. Implant 1 magnetizzato e 1 stent non magnetizzato nell'arteria coronaria destra (RCA) usando la tecnica di cateterizzazione cardiaca standard.
      1. Catheterizzazione di animali deve essere effettuata da un cardiologo interventista addestrato. Accedere alla carotide destra con una guaina French 9.
      2. Incannulare l'obiettivo coronarica e iniettare mezzo di contrasto iodato per ottenere immagini fluoroscopiche.
      3. Mettere un filo guida coronarico standard di 0.014 pollici nell'arteria. Far avanzare il palloncino e stent utilizzando questo filo guida e distribuire il stent in un vaso di diametro 3-3,5 mm.
    7. Occludere il flusso di sangue all'interno prossimale RCA agli stent impiantati utilizzando un over pallone filo e fornire circa 2x10 6 EOC autologo marcato con spion sospeso in 4 ml di PBS attraverso il catetere centrale su un periodo di 2 min.
    8. Ripristinare il flusso di sangue al RCA dopo 2 min di occlusione aggiuntivo.
    9. Trasferire l'animale alla sala di risveglio e monitorare attentamente l'animale fino a che non ha ripreso conoscenza.
    10. Continuare a somministrare farmaci anti-piastrinici (aspirina 325 mg e clopidogrel 75 mg) inviare operativamente fino sacrificio.
  2. Espianto stent e istologia
    1. Euthanize gli animali 7 giorni dopo l'intervento dapprima anestetizzare l'animale come spiegato precedentemente e quindi somministrare per via endovenosa una dose letale di pentobarbital sodio (100 mg / kg) secondo le linee guida istituzionali applicabili cura degli animali e di uso.
    2. Chirurgicamente raccogliere i segmenti arteriosi stent. Fissare le arterie espiantati in 10% formalina tampone per almeno 30 min. Lasciare i campioni in buffer di formalina per ulteriori analisi istologica.
    3. Esternalizzare il campione fissato alle strutture in grado di svolgere l'istologia con stent di metallo. Durante questo processo, i campioni vengono incorporare in metilmetacrilato, in sezione, e analizzati istologicamente usando la tecnica di colorazione di Mallory con Prussia macchia blu per particelle di ferro.

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Risultati

Disegno stent iterativo basato su FEA (Figura 1) ha mostrato uno stent che può crimpare ed espandere con un ceppo principale 20%, che è inferiore al 30% deformazione ultima. Piegatura e di prova di espansione (Figura 2) non ha mostrato segni di frattura. Immagini di stent deformato mostrato buon accordo con deformazioni FEA calcolate e anche foto microscopia mostrato fratture (Figura 3). Come previsto dalle misure di campo magnetico a nuovo (figure 4 e 5),...

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Discussione

Abbiamo sviluppato uno stent magnetica che può funzionare come un stent di metallo nudo e in grado di attirare le cellule endoteliali spion marcato. In studi precedenti che coinvolgono stent magnetici, i ricercatori hanno usato nichel stent rivestiti commerciali e bobine o mesh in materiali magnetici a causa della indisponibilità di uno stent ferromagnetico 5,10-14. Altri gruppi hanno usato anche la natura paramagnetica attualmente in commercio stent in acciaio inox 304-grado per il targeting di nanoparticell...

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano Tyra Witt, Cheri Mueske, Brant Newman e Dr. Peter J. Psaltis, MBBS, PhD per i loro preziosi contributi. Questo studio è stato sostenuto finanziariamente dal Fondo Europeo di Sviluppo Regionale – FNUSA-CICR (n. CZ.1.05/1.100/02.0123), American Heart Association Scientist Development Grant (AHA #06-35185N), National Institutes of Health (T32HL007111) e The Grainger Innovation Fund – Grainger Foundation.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
2205 Acciaio inossidabileCarpenter Technology CorporationBarra tonda materiale stock
AbaqusDassault systemsSoftware
AtropinaPrescrizione farmaco.
ClopidogrelNome commerciale: Plavix. Farmaco da prescrizione.
CM-DiILife TechnologiesV-22888Sonde molecolari, Eugene, OR
Terreno di crescita endoteliale-2LonzaCC-3162
Strumento di crimpatura portatileIngegneria a blocchiM1-RMC
Acido cloridrico (HCl)Sigma AldrichMFCD00011324ATTENZIONE: indossare attrezzature protettive e maneggiare sotto la cappa aspirante
Anestesiacon isofluranoPiramal Critical Care, Inc.
Alcool etilicoSigma AldrichMFCD00003568
NdFeB magnete 2" Dia x 1" di spessoreIncredibili magnetiD1000PMagnete a disco magnetizzato assialmente con poli su facce piatte
PalloncinoQualsiasi palloncino a tre ante OTW disponibile in commercio può essere utilizzato
Soluzione salina tamponata con fosfatoLife Technologies10010-023Comunemente noto come
PBS Bicarbonato di sodio (NaHCO3)Sigma AldrichMFCD00003528
Pentobarbital di sodioZoetisNome commerciale: Sleepaway (26%), FatalPlus, Beuthanasi. Sostanza controllata da ordinare solo da veternarian veternarian
SolidWorksDassault systemsSoftware
SpinTJ-020 micro sensoreMicroMagneitcs Sensible SolutionsSonda lunga STJ-020 microsensore
SPIONMayo ClinicNanoparticelle sintetizzate internamente (Rif: Lee, S. J. et al. Nanoparticelle di ossidi ferrici magnetici incapsulati con poli(D,L latide-co-glicolide) e le loro applicazioni all'agente di contrasto per risonanza magnetica. J Magn Magn Mater 272, 2432-2433, doi:DOI 10.1016/j.jmmm.2003.12.416 (2004))
TelazolZoetisSostanza controllata da ordinare solo da veternarian
Trypsin EDTALife Technologies25200-056Gibco, Grand Island, NY
XylazineBayer Animal HealthNome commerciale: Rompun. Posizione solare controllata da ordinare solo da un veternariano autorizzato
a tre ante Over-The-Wire

Riferimenti

  1. Garg, S., Serruys, P. W. Coronary stents: current status. J Am Coll Cardiol. 56, 1-42 (2010).
  2. Austin, D., et al. Drug-eluting stents versus bare-metal stents for off-label indications: a propensity score-matched outcome study. Circ Cardiovasc Interv. 1 (1), 45-52 (2008).
  3. Polyak, B., et al. High field gradient targeting of magnetic nanoparticle-loaded endothelial cells to the surfaces of steel stents. P Natl Acad Sci USA. 105 (2), 698-703 (2008).
  4. Tassiopoulos, A. K., Greisler, H. P. Angiogenic mechanisms of endothelialization of cardiovascular implants: a review of recent investigative strategies. J Biomat Sci-Polym E. 11 (11), 1275-1284 (2000).
  5. Pislaru, S. V., et al. Magnetic forces enable rapid endothelialization of synthetic vascular grafts. Circulation. 114, I314-I318 (2006).
  6. Uthamaraj, S., et al. Design and validation of a novel ferromagnetic bare metal stent capable of capturing and retaining endothelial cells). Ann Biomed Eng. 42 (12), 2416-2424 (2014).
  7. Gulati, R., et al. Diverse origin and function of cells with endothelial phenotype obtained from adult human blood. Circ Res. 93 (11), 1023-1025 (2003).
  8. Lee, S. J., et al. Nanoparticles of magnetic ferric oxides encapsulated with poly(D,L latide-co-glycolide) and their applications to magnetic resonance imaging contrast agent. J Magn Magn Mater. 272 (3 Special Issue), 2432-2433 (2004).
  9. Lee, S. J., et al. Magnetic enhancement of iron oxide nanoparticles encapsulated with poly(D,L-latide-co-glycolide). Colloid Surface A. (1-3), 255-251 (1016).
  10. Forbes, Z. G., et al. Locally targeted drug delivery to magnetic stents for therapeutic applications. Computer Architectures for Machine Perception, 2003 IEEE International Workshop on. , 1-6 (2003).
  11. Rathel, T., et al. Magnetic Stents Retain Nanoparticle-Bound Antirestenotic Drugs Transported by Lipid Microbubbles. Pharm Res-Dordr. 29 (5), 1295-1307 (2012).
  12. Gunn, J., Cumberland, D. Stent coatings and local drug delivery - state of the art. Eur Heart J. 20 (23), 1693-1700 (1999).
  13. Lu, A., Jia, G., Gao, G., Wang, X. The effect of magnetic stent on coronary restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty in dogs. Chin Med J (Engl. 114 (8), 821-823 (2001).
  14. Kempe, H., Kempe, M. The use of magnetite nanoparticles for implant-assisted magnetic drug targeting in thrombolytic therapy. Biomaterials. 31 (36), 9499-9510 (2010).
  15. Chorny, M., et al. Targeting stents with local delivery of paclitaxel-loaded magnetic nanoparticles using uniform fields. P Natl Acad Sci USA. 107 (18), 8346-8351 (2010).
  16. Polyak, B., Friedman, G. Magnetic targeting for site-specific drug delivery: applications and clinical potential. Expert Opin Drug Del. 6 (1), 53-70 (2009).
  17. Liu, J. Y., et al. Magnetic stent hyperthermia for esophageal cancer: an in vitro investigation in the ECA-109 cell line. Oncol Rep. 27 (3), 791-797 (2012).
  18. Gunn, J., Cumberland, D. Does stent design influence restenosis. Eur Heart J. 20 (14), 1009-1013 (1999).
  19. Aviles, M. O., et al. In vitro study of ferromagnetic stents for implant assisted-magnetic drug targeting. J Magn Magn Mater. 311 (1), 306-311 (2007).
  20. Mardinoglu, A., et al. Theoretical modelling of physiologically stretched vessel in magnetisable stent assisted magnetic drug targeting application. J Magn Magn Mater. 323 (3-4), 324-329 (2011).
  21. Liu, Z. Y., et al. Stress corrosion cracking of 2205 duplex stainless steel in H2S-CO2 environment. J Mater Sci. 44 (16), 4228-4234 (2009).
  22. Alverez-Armas, I., Degallaix-Moreuill, S. Duplex stainless steels. , Wiley-ISTE. (2009).
  23. Tefft, B. J., et al. Magnetizable Duplex Steel Stents Enable Endothelial Cell Capture. Ieee T Magn. 49 (1), 463-466 (2013).
  24. Pelton, A. R., et al. Fatigue and durability of Nitinol stents. J Mech Behav Biomed Mater. 1 (2), 153-164 (2008).
  25. Knowles, M., et al. Finite element analysis of a balloon-expandable stent and superior mesenteric arterial wall interaction. J Vasc Surg. 60 (6), 1722-1723 (2014).
  26. Veeram Reddy, S. R., et al. A novel biodegradable stent applicable for use in congenital heart disease: bench testing and feasibility results in a rabbit model. Catheter Cardiovasc Interv. 83 (3), 448-456 (2014).
  27. Shellock, F. G. MR imaging of metallic implants and materials: a compilation of the literature. AJR Am J Roentgenol. 151 (4), 811-814 (1988).
  28. Lopic, N., et al. Quantitative determination of magnetic force on a coronary stent in MRI. J Magn Reson Imaging. 37 (2), 391-397 (2013).

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