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Articolo metodologico

Efficiente Espressione cellulari di mammifero e Passo singolo Purificazione di extracellulare glicoproteine ​​per cristallizzazione

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DOI:

10.3791/53445

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23 dicembre 2015

 ,  , 

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo è un protocollo rapido ed economico per la produzione di proteine di mammifero glicosilate secrete e la successiva purificazione in un solo passaggio con rese sufficienti di proteine omogenee per la cristallografia a raggi X e altri studi biofisici.

Abstract

La produzione di proteine secrete nei mammiferi per studi strutturali e biofisici può essere impegnativa, dispendiosa in termini di tempo e costosa. Qui descritto è un protocollo efficiente in termini di tempo e costi per l'espressione di proteine secrete in cellule di mammifero e la purificazione in un'unica fase utilizzando la cromatografia di affinità con nichel. Il sistema si basa sulla trasfezione transitoria su larga scala di cellule di mammifero in sospensione, che riduce notevolmente il tempo di produzione delle proteine, in quanto elimina passaggi come lo sviluppo di virus di espressione o la generazione di linee cellulari ad espressione stabile. Questo protocollo utilizza agenti di trasfezione economici, che possono essere facilmente prodotti con una semplice modifica chimica, o agenti di trasfezione a prezzo moderato, che aumentano la resa grazie a una maggiore efficienza di trasfezione e a una minore citotossicità. Un attento monitoraggio e mantenimento dei livelli di glucosio nei terreni aumenta la resa proteica. Il controllo della maturazione dei glicani nativi nella fase di espressione aumenta la resa finale di proteine di mammifero correttamente ripiegate e funzionali, che sono proprietà ideali per perseguire la cristallografia a raggi X. In alcuni casi, la purificazione in un singolo passaggio produce proteine di purezza sufficiente per la cristallizzazione, che è dimostrato qui come caso di esempio.

Introduzione

La comprensione della struttura delle proteine ​​a livello atomico è la chiave per scoprire le basi molecolari dei percorsi e delle malattie biologiche. X-ray cristallografia di proteine ​​è il / metodo applicabile più ampiamente usato per determinare le strutture macromolecolari. La sfida principale di questo metodo è l'ottenimento di una quantità sufficiente di propriamente piegato, proteina pura. Questo diventa un problema particolare quando si lavora con le proteine ​​secrete di mammifero, che subiscono specifiche modificazioni post-traduzionali.

Proteine ​​batteri-espresse sono la fonte primaria di proteine ​​cristallizzate depos....

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Protocollo

1. Produzione di milligrammo quantità di DNA plasmidi per larga scala trasfezione transiente

  1. Clonare la proteina di interesse in un alto numero di copie di mammifero vettore di espressione mediante clonazione sito di restrizione, o altra tecnica appropriata.
    1. Per ottenere risultati ottimali, utilizzare pHLsec 7 vettore, che ha un built-in C-terminale 6His-tag, un promotore forte sequenza di Kozak e un segnale di secrezione ottimizzato.
  2. Trasforma il plasmide sulle cellule competenti.
    1. Aggiungere 20 ml di cellule competenti di E. coli su 1 pg di DNA plasmidico e incubare in ghiaccio per 30 min.
    2. Cellule....

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Risultati

Qui di seguito i risultati di questo sistema di espressione applicata ad un dominio secreto 13 kDa immunoglobuline (Ig) dalla proteina di attivazione del recettore umano espresso sulle cellule mieloidi (2 hTREM2, residui 19-132). TREM2 è una proteina transmembrana di tipo I che contiene un singolo dominio extracellulare Ig che ha due ponti disolfuro e due siti di glicosilazione N-linked. A differenza di molte altre proteine ​​dominio Ig 8, TREM2 non era suscettibile di ripiegamento da corpi di inclusione batt.......

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Discussione

Cellule HEK 293F offrono produzione robusta di proteine ​​che richiedono modificazioni post-traslazionali. Questo sistema permette l'espressione rapida e scalabile di proteine ​​ripiegate in modo nativo contenenti disolfuri, glicosilazione e fosforilazione che altrimenti assente utilizzando più strumenti di espressione di routine. Inoltre, questo sistema può essere utilizzato per l'espressione e la purificazione di complessi multi-proteici semplicemente co-trasfezione di plasmidi multipli. Oltre TREM2, questo si.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da NIH R01-HL119813 (a T.J.B.), American Lung Association RG-196051 (a T.J.B.), una sovvenzione pilota e di fattibilità CIMED (a T.J.B.), American Heart Association Predoctoral Fellowships 14PRE19970008 (a Z.Y.) e 15PRE22110004 (a D.L.K.).

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Fiasche di colturaGeneMateF-5909B
293 Freestyle MediaGibco/Life Technologies12338-018
GlutaMAXGibco/Life Technologies35050-061Utilizzo al posto del
reagente di trasfezione Glutammine Hype 5Oz BiosciencesHY01500
reagente di trasfezione 293fectinLife Technologies
reagente di trasfezione PEISigma-Aldrich408727
Maxiprep KitQiagen12162
Ni-NTA Superflow Qiagen30430
Endo HfNEBP0703L
Resina di amilosioNEBE8021S
Cell Boost R05.2HyCloneSH30584.02Integratore per colture cellulari
GlucCellCESCO BioengineeringDG2032Sistema di monitoraggio del glucosio
Opti-MEMLife Technologies519850.91Terreno privo di siero per trasfezione di DNA
Luria Broth (LB Media)Life Technologies10855-001
GC10 Competent CellsSigma-AldrichG2919
12347019

Riferimenti

  1. Meyer, S., et al. Multi-host expression system for recombinant production of challenging proteins. PLoS One. 8, e68674(2013).
  2. Chang, V. T., et al. Glycoprotein structural genomics: solving the glycosylation problem. Structure. 15

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Ristampe e permessi

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