Method Article

Imaging potenziale di membrana con due tipi di geneticamente codificati fluorescenti di sensori di tensione

DOI:

10.3791/53566

February 4th, 2016

In This Article

Summary

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Viene descritto un metodo per l'imaging dei cambiamenti nel potenziale di membrana utilizzando indicatori di tensione geneticamente codificati.

Abstract

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Gli indicatori di tensione geneticamente codificati (GEVI) sono migliorati al punto che stanno iniziando ad essere utili per le registrazioni in vivo. Mentre l'obiettivo finale è quello di visualizzare l'attività neuronale in vivo, si deve essere in grado di visualizzare l'attività di una singola cellula per garantire il successo delle preparazioni in vivo. Questa procedura descriverà come visualizzare il potenziale di membrana in una singola cellula per fornire una base per l'imaging in vivo. Qui descriviamo i metodi per l'imaging di GEVI costituiti da un dominio di rilevamento del voltaggio fuso a una singola proteina fluorescente (FP) o a due proteine fluorescenti in grado di trasferire energia di risonanza di Förster (FRET) in vitro. L'utilizzo di uno splitter di immagini consente la proiezione simultanea di immagini create da due diverse lunghezze d'onda sulla stessa fotocamera CCD (Charge-Coupled Device). Lo splitter di immagini posiziona un secondo cubo filtro nel percorso della luce. Questo secondo cubo filtrante è costituito da un dicroico e due filtri di emissione per separare le lunghezze d'onda fluorescenti del donatore e dell'accettore a seconda degli FP del GEVI. Questa configurazione consente la registrazione simultanea dei partner fluorescenti accettori e donatori mentre il potenziale di membrana viene manipolato tramite la configurazione del patch clamp per l'intera cellula. Quando si utilizza un GEVI costituito da un singolo FP, il secondo cubo filtro può essere rimosso consentendo agli specchi nello splitter di immagini di proiettare una singola immagine sulla camera CCD.

Introduction

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Il principale obiettivo di questo lavoro è quello di dimostrare l'imaging ottico delle variazioni di potenziali di membrana in vitro utilizzando proteine ​​fluorescenti geneticamente codificate. cambiamenti di imaging del potenziale di membrana offre l'eccitante possibilità di studiare l'attività dei circuiti neuronali. Quando i cambiamenti nella membrana risultato potenziale in un cambiamento intensità di fluorescenza, ogni pixel della telecamera diventa un elettrodo surrogata per misure non intrusivi di attività neuronale. Da oltre quarant'anni, coloranti organici voltaggio-sensibile sono stati utili per osservare i cambiamenti nel potenziale di membrana <....

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Protocol

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dichiarazione etica: Il protocollo sperimentazione animale è stato approvato dalla cura degli animali e del Comitato Istituzionale Usa presso KIST protocollo animale 2014-001.

1. Installazione apparecchiature

  1. configurazione Imaging
    1. Inserire un microscopio invertito a fluorescenza su un tavolo isolamento dalle vibrazioni. Utilizzare un alto ingrandimento (lente immersione in olio 60X con 1,35 apertura numerica) lente obiettivo e un cubo filtrante con uno specchio dicroico e filtri adatti per le proteine ​​fluorescenti utilizzate per imaging tensione.
      Nota: Questa configurazione utilizza un microscopio invertito per....

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Results

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Transitoriamente cellule transfettate possono presentare una significativa variazione di intensità di fluorescenza e il grado di espressione membrana plasmatica. Anche sullo stesso vetrino alcune cellule avranno diversi livelli di fluorescenza interna. Questo è probabilmente dovuto alla quantità di agente trasfezione assorbita dalla cella. Di tanto in tanto, troppo espressione fa sì che la cellula di sperimentare la risposta proteina spiegato con conseguente apoptosi 27 (lumin.......

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Discussion

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Il sistema nervoso utilizza tensione in diversi modi, inibizione provoca un leggero iperpolarizzazione, ingresso sinaptica provoca un leggero depolarizzazione e un'azione potenziali risultati in un cambiamento relativamente grande tensione. La possibilità di misurare le variazioni del potenziale di membrana dalla Gevis offre il potenziale promettente di analizzare diversi componenti di circuiti neuronali contemporaneamente. In questo rapporto si dimostra un metodo fondamentale per le modifiche di imaging del potenzi.......

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Disclosures

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Acknowledgements

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Questo lavoro è stato supportato dal programma World Class Institute (WCI) della National Research Foundation of Korea finanziato dal Ministero dell'Istruzione, della Scienza e della Tecnologia della Corea Grant WCI 2009-003 e dal Korea Institute of Science and Technology Institutional Program Project 2E24210. Sungmoo Lee è stata supportata dal Global Ph.D. Fellowship program (NRF-2013H1A2A1033344) della National Research Foundation (NRF) sotto il Ministero dell'Istruzione (MOE, Corea).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Microscopio InvertitoObiettivo OlympusIX71
60X (apertura numerica = 1,35)OlympusUPLSAPO 60XO
Filtro di eccitazioneSemrock  FF02-472/30Per l'imaging di tensione della pHluorin super eclittica in Bongwoori
Specchio dicroicoSemrockFF495-Di03-25x36
Filtro di emissioneSemrockFF01-497/LP
75W Lampada ad arco allo xenoCAIRNOptoSourceIlluminatore LED e laser sono anche sorgenti luminose efficaci
Telecamera CCD a bassa velocitàHitachiKP-D20BU
Adattatore per fotocamera a doppia portaOlympusU-DPCAD
Telecamera CCD ad alta velocitàRedShirtImaging, LLCNeuroCCD-SM
Splitter di immaginiCAIRNOptosplit 2
Filtro di eccitazioneSemrockFF01-475/23-25Per l'imaging della tensione di GEVI basato su coppie FRET composto da Clover e mRuby2)
Specchio dicroicoSemrockFF495-Di03-25x36
Filtro di emissioneChromaET520/40
Specchio dicroicoSemrockFF560-FDi01-25X36
Filtro di emissioneChromaET645/75
Sistema di isolamento dalle vibrazioniSistemi cinetici250BM-IC, 5702E-3036-31
Camera di patchingWarner instrumentsRC-26G, 64-0235
#0 Micro Coverglass (22 x 40 mm)Microscopia elettronica Sciences72198-20
Regolatore di temperaturaWarner instrumentsTC-344B
#0 (0,08 ~ 0,13 mm) - vetrino coprioggetti in vetro diametro 10 mmTed Pella260366
Agente di lipofezioneLife Technologies11668-027
Reagente fosfato di calcioClontech - Takara631312
Amplificatore patch clampUSB HEKAEPC 10
Software di acquisizione dati multicanaleHEKAPatchmaster
Software di acquisizione e analisi delle immaginiRedShirtImagingNeuroplex
Software applicativo per fogli di calcoloMicrosoftMicrosoft Excel 2010
Softwaredi analisi datiOriginLabOriginPro 8.6.0
Lente d'ingrandimentoQioptiq LINOSOptem Accoppiatore fotocamera standard 0,38x SC38 J clamp
Microscopio confocaleNikonNikon A1R
Reagente anti-sbiadimentoLife TechnologiesP36930
Amplificatore

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Salzberg, B. M., Davila, H. V., Cohen, L. B. Optical recording of impulses in individual neurones of an invertebrate central nervous system. Nature. 246, 508-509 (1973).
  2. Cohen, L. B., et al. Changes in axon fluorescence during act....

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Genetically Encoded Voltage IndicatorsFluorescent Voltage SensorsFRET based GEVISingle Fluorescent ProteinImage SplitterWhole Cell Patch ClampHEK293 CellsMembrane Potential ImagingFluorescence Change AnalysisCCD Camera Acquisition

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