Method Article

Sviluppo e caratterizzazione di In Vitro Microvasi Rete e misurazioni quantitative di endoteliale [Ca 2+] i E ossido nitrico Produzione

DOI:

10.3791/54014

May 19th, 2016

In This Article

Summary

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Le cellule endoteliali primarie della vena ombelicale umana (HUVEC) sono state coltivate fino alla confluenza all'interno di un dispositivo di rete microfluidica. Sono state illustrate le distribuzioni della giunzione delle cellule endoteliali e della F-actina e sono stati quantificati in tempo reale a livello di singola cellula le variazioni della concentrazione intracellulare di calcio e della produzione di ossido nitrico in risposta all'adenosina trifosfato (ATP).

Abstract

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Le cellule endoteliali (ECS) che ricoprono le pareti dei vasi sanguigni in vivo sono costantemente esposti a scorrere, ma EC coltivate sono spesso coltivati ​​in condizioni statiche e mostrano un fenotipo pro-infiammatorio. Sebbene lo sviluppo di dispositivi microfluidici è stato abbracciato dagli ingegneri più di due decenni, le loro applicazioni biologiche rimangono limitati. Un modello in vitro microvasi più fisiologicamente rilevanti convalidato da applicazioni biologiche è importante per far avanzare il campo e colmare il divario tra in vivo e in vitro. Qui, presentiamo procedure dettagliate per lo sviluppo della rete microrecipiente coltivate utilizzando un dispositivo microfluidico con una capacità di perfusione a lungo termine. Abbiamo anche dimostrare le sue applicazioni per misurazioni quantitative dei cambiamenti agonisti indotte CE [Ca 2 +] i e l'ossido nitrico (NO) la produzione in tempo reale utilizzando confocale e microscopia a fluorescenza convenzionale. La rete dei microvasi formatolavoro con perfusione continua mostrato giunzioni ben sviluppati tra EC. Distribuzione VE-caderina era più vicino a quello osservato nei microvasi intatti di monostrati CE staticamente in coltura. ATP-indotta aumenti transitori in CE [Ca 2+] i e la produzione di NO sono stati quantitativamente misurata a livello individuale cellulari, che ha convalidato la funzionalità dei microvasi in coltura. Questo dispositivo microfluidico consente EC di crescere sotto una ben controllata, flusso fisiologicamente rilevanti, il che rende l'ambiente di coltura cellulare più vicino in vivo rispetto che nelle culture 2D convenzionali, statiche. Il disegno di rete microcanali è altamente versatile, e il processo di fabbricazione è semplice e ripetibile. Il dispositivo può essere facilmente integrato nel sistema microscopica confocale o convenzionale consentendo imaging ad alta risoluzione. Più importante, perché la rete microrecipiente coltura può essere formata da ECS umani primari, questo approccio servirà come strumento utile per studiare comepatologicamente emocomponenti alterati da campioni di pazienti influenzano EC umane e forniscono informazioni sulle problematiche cliniche. Anche può essere sviluppato come piattaforma per lo screening di droga.

Introduction

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Le cellule endoteliali (ECS) che ricoprono le pareti dei vasi sanguigni in vivo sono costantemente esposti a scorrere, ma EC coltivate sono spesso coltivati ​​in condizioni statiche e mostrano un fenotipo pro-infiammatorio 1,2. La tecnologia microfluidica consente un fluido controllato con precisione attraverso un microscala geometricamente vincolata (sub-millimetrica) canali 3, che prevede la possibilità per le cellule in coltura, in particolare per ECS vascolare, di crescere in condizioni di flusso desiderate. Queste caratteristiche rendono le condizioni di coltura cellulare più vicino a in vivo rispetto alle tradizionali, co....

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Protocol

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1. fabbricazione di dispositivi Microfluidic

  1. Fotolitografia di fabbricazione standard di un SU-8 50 Master Mold
    1. Pulire il wafer di silicio prima spin-coating. Risciacquare un wafer di silicio 2 pollici nudo con acetone per 15 min seguito da alcol isopropilico (IPA) per 15 min. Disidratare il wafer ponendolo su una piastra riscaldante a 150 ° C per 1 ora. Dopo la disidratazione, raffreddare il wafer a temperatura ambiente.
    2. Spin-coat wafer di silicio con SU-8 fotosensibile. Aggiungere 2 ml di SU-8 photoresist sul wafer. Rampa wafer a 500 rpm a 100 rpm accelerazione / sec per 10 sec, seguita da 1,000 rpm a 300 rpm accelerazione / sec per 30....

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Results

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Questa sezione mostra alcuni dei risultati ottenuti con la rete microrecipiente coltura sviluppata con questo protocollo. Il modello microcanali è una ramificazione rete a tre livelli (Figura 1A). In questo disegno, a 159 micron di larghezza rami del canale madre in due 126 micron canali di larghezza, e rami di nuovo in quattro canali 100 micron figlia di larghezza. Una simulazione numerica 3D è stato eseguito per stimare le distribuzioni di sollecitazione di taglio sott.......

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Discussion

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In questo articolo, presentiamo protocolli dettagliati per lo sviluppo della rete dei microvasi colta, la caratterizzazione di giunzioni CE e citoscheletro distribuzione F-actina, e le misurazioni quantitative della CE [Ca 2+] i e la produzione di NO utilizzando un dispositivo di microfluidica. Il dispositivo microfluidico perfuso fornisce un modello in vitro che consente uno stretto simulazione delle geometrie microvascolari in vivo e condizioni di flusso shear. Dal momento.......

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Disclosures

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Gli autori non hanno interessi in competizione o conflitto di interessi da dichiarare.

Acknowledgements

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Questo lavoro è stato sostenuto dal National Heart, Lung, and Blood Institute concede HL56237, National Institute of Diabetes e Digestiva e Malattie renali Istituto DK97391-03, National Science Foundation (NSF-1.227.359 e EPS-1003907).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
ATPSigma-AldrichA2383
AcetoneFisher ScientificA929
Punzone per biopsiaMiltex33-31 AA
Albumina bovinaMP Biomedicals810014
Estratto di cervello bovino (BBE)LonzaCC-4098
Vetrino coprioggettiFisher Scientific12-542C
DAF-2 DACalbiochem251505
destranoSigma-Aldrich31390
Asino anti-capra IgG (H+L) Anticorpo secondarioTecnologie per la vitaA-11055
DPBS, senza calcio, senza magnesioGibco14190-250
DRAQ5 (colorazione dei nuclei) Tecnologia di segnalazione cellulare4084
Integratore per la crescita delle cellule endoteliali (ECGS)Sigma-AldrichE2759-15MG
Siero fetale bovinoGibco16000-044
FibronectinaGibcoPHE0023
Fluo-4 AMLife technologiesF-14201
Gelatina da pelle suinaSigma-AldrichG1890-100G
Gentamicina (50 mg/ml)Gibco15750-078
Vetrino coprioggetti in vetroFisher Scientific12-548B
Vetro Pasteur pippetteVWR14672
Eparina sale sodico dalla mucosa intestinale suinaSigma-AldrichH3393-10KU
HEPES Soluzione salina tamponataLonzaCC-5024
Cellule endoteliali della vena ombelicale umana (HUVEC)LonzaCC-2517
Alcool isopropilico (IPA)VWR89125
L-Glutammina (200 mM)Gibco25030-081
Ingrediente
NaCl (132 mM)Fisher ScientificS671-3
KCl (4.6 mM)Fisher ScientificoP217-500
CaCl2 · 2H2O (2.0 mM)Fisher ScientificC79-500
MgSO4 · 7H2O (1,2 mM)Fisher ScientificM63-500
Glucosio (5,5 mM)Fisher ScientificBP350-1
NaHCO3 (5,0 mM)Fisher ScientificS233-500
Hepes Salt (9,1 mM)Research Organics6007H
Hepes Acid (10,9 mM)Research Organics6003H
MCDB 131 Colture Tecnologie perla media vita10372-019
Microscopia elettronicaparaformaldeideScienze 15710
Falloidina (colorazione F-actina)Sigma-AldrichP1951
Soluzione salina tamponata con fosfato Life technologies14040-133
Polidimetilsilossano (PDMS)Dow Corning CorporationSylgard 184
ScalpelExel Int29552
Scotch3M34-8711-3070-3
Wafer di silicioVWR14672
SU-8 fotoresistMicroChemSU-8 2050 Y111072
Sviluppatore SU-8
Sigma-AldrichZ707503-100EA
Triton X-100Chemical BookT6878
Soluzione neutralizzante della tripsinaGibcoR-002-100
Soluzione di tripsina/EDTA (TE)GibcoR-001-100
TubingCole-ParmerTubo microforo in PTFE, 0,012" ID x 0,030" OD
VE-caderinaSanta Cruz BiotechnologySC-6458
Nome dell'attrezzaturaAziendaNumero di catalogoComments/Description
Biosafety Cappa laminareNuAireNU-425 Classe II, Tipo A2
Fotocamera CCDHamamatsuORCA
Microscopio confocaleLeicaTCS SL
EssiccatoreBel-ArtF42022
Piastra riscaldanteWenescoHP-1212
IncubatoreForma Scientific3110
Forno IsotempBarnstead3608-5
Litografia bancoKarl SussMA6 Litografia
Microscopio otticoNikonL200 ND & Diaphod 300
Otturatore per la telecamera CCDStrumento Sutter Lambda10-2
Pulitore al plasmaPVA TePla / Harrick plasmaM4L / PDC-32G
Spin coaterBrewer ScienceCee 200X
Sistema di pompe a siringaHarvard Apparatus703005
Nome del software AziendaNumero di catalogoComments/Description
CAD softwareAutodeskAutoCAD 2015
software di simulazione CDCOMSOLCOMSOL Multiphysics 4.0.0.982
Acquisizione e analisi di immagini per la produzione di NO Metafluordi imaging universale
soluzione di ringer per mammiferi Fiasche per colture tissutali MicroChem Y020100 a contatto

References

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  1. Curry, F. R. E., Adamson, R. H. Vascular permeability modulation at the cell, microvessel, or whole organ level: towards closing gaps in our knowledge. Cardiovasc Res. 87, 218-229 (2010).
  2. Michel, C. C., Curry, F. E. Microvascular permeability. Physiol Rev

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Microvessel NetworkEndothelial CellsMicrofluidic DeviceShear FlowCalcium ImagingNitric Oxide ProductionConfocal MicroscopyFluorescence MicroscopyVE cadherin StainingATP Stimulation

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