Articolo metodologico

La valutazione dell'outcome primario in un modello suino di infarto miocardico acuto

DOI:

10.3791/54021

⸱

14 ottobre 2016

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Experimental Cardiology, University Medical Center Utrecht, 2Department of Cardiology, University Medical Center Utrecht, 3Department of Clinical Chemistry and Hematology, University Medical Center Utrecht, 4Interuniversity Cardiology Institutes of the Netherlands (ICIN)

In questo articolo

Sommario

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valutazione dei risultati affidabile e preciso è la chiave per la traduzione di terapie pre-clinici in trattamento clinico. Il documento corrente descrive come valutare tre clinicamente rilevanti parametri di outcome primario di performance cardiaca e danni in un modello di infarto miocardico acuto maiale.

Abstract

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La mortalità dopo infarto miocardico acuto rimane sostanziale ed è associata a morbilità significativa, come l'insufficienza cardiaca. Sono quindi necessarie nuove terapie per limitare il danno cardiaco, promuovere la sopravvivenza e ridurre il carico di malattia dell'insufficienza cardiaca. Gli esperimenti su animali di grandi dimensioni sono una parte essenziale del processo traslazionale, dalle terapie sperimentali a quelle cliniche. Per ottimizzare la traduzione clinica, sono necessarie misure di esito solide e rappresentative. Il presente manoscritto si propone di rispondere a questa esigenza descrivendo la valutazione di tre modalità di esito clinicamente rilevanti in un modello di infarto miocardico acuto (AMI) di maiale: dimensione dell'infarto in relazione alla colorazione dell'area a rischio (IS/AAR), ecocardiografia transesofagea tridimensionale (TEE) e anse pressione-volume (PV) basate sull'ammissione. La dimensione dell'infarto è il principale fattore determinante che guida la transizione dall'infarto del miocardio all'insufficienza cardiaca e può essere quantificata mediante colorazione IS/AAR. L'ecocardiografia è uno strumento affidabile e robusto nella valutazione della funzione cardiaca globale e regionale in cardiologia clinica. Qui, viene fornito un metodo per l'ecocardiografia transesofagea tridimensionale (3D-TEE) nei suini. Un'ampia comprensione delle prestazioni cardiache può essere ottenuta mediante loop pressione-volume (PV) basati sull'ammissione, compresi i parametri intrinseci della funzione miocardica che sono indipendenti dal pre e dal postcarico. In combinazione con un protocollo di studio sperimentale clinicamente fattibile, queste misure di esito forniscono ai ricercatori informazioni essenziali per determinare se nuove strategie terapeutiche potrebbero produrre obiettivi promettenti per futuri test negli studi clinici.

Introduzione

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L'insufficienza cardiaca con ridotta frazione di eiezione (HFrEF) rappresenta circa il 50% di tutti i casi di insufficienza cardiaca, colpisce circa 1 - 2% delle persone nel mondo occidentale 1. La causa più comune è l'infarto miocardico acuto (IMA). Come mortalità acuta dopo IMA è diminuito in modo significativo a causa di una maggiore consapevolezza e migliori opzioni di trattamento, l'enfasi si è spostata verso la sua sequele croniche; l'essere più importante HFrEF 2,3. Insieme con l'aumento dei costi sanitari 4, la crescente epidemia di insufficienza cardiaca sottolinea la necessità di nuove diagnosi e terapie, che può essere studiato in un modello suino altamente traslazionale di rimodellamento avverso dopo IMA come descritto in precedenza 5.

Entrambi, determinanti (ad esempio, dimensione dell'infarto) e funzionali valutazioni (ad esempio, l'ecocardiografia) di rimodellamento avverso sono spesso utilizzati per le prove di efficacia di nuove terapie, che indica la necessità di relmetodi iAble e relativamente poco costoso. Lo scopo della carta corrente è affrontare questa esigenza introducendo importanti e affidabili outcome per prove di efficacia in un modello suino di infarto miocardico acuto. Questi includono la dimensione infartuale (IS) in relazione alla zona a rischio (AAR), 3D l'ecocardiografia transesofagea (3D-TEE) e l'acquisizione ciclo dettagliata pressione-volume ammissione a base di (PV).

Dimensione dell'infarto è il principale determinante di rimodellamento avverso e la sopravvivenza dopo IMA 6. Anche se tempestiva riperfusione del miocardio ischemico può salvare cardiomiociti reversibilmente feriti e limitare le dimensioni dell'infarto, riperfusione per sé provoca ulteriori danni attraverso la generazione di stress ossidativo e una risposta infiammatoria sproporzionata (danno da ischemia-riperfusione (IRI)) 7. Quindi, IRI è stato identificato come un obiettivo terapeutico promettente. La capacità di nuove terapie per diminuire la dimensione dell'infarto è quantificato valutando dimensioni dell'infarto in relazionealla zona a rischio (AAR). AAR quantificazione è obbligatoria per correggere variabilità inter-individuale in anatomia coronarica di modelli animali, come AAR grande porta ad una più ampia dimensione dell'infarto assoluto. Dal momento che la dimensione dell'infarto è direttamente correlata alla funzione cardiaca e della contrattilità miocardica, variazioni di AAR possono influenzare studiare misure di outcome a prescindere dalla modalità di trattamento 8.

Tridimensionale transesofagea (3D-TEE) è un metodo poco costoso sicuro, affidabile e, soprattutto, clinicamente applicabile per misurare la funzione cardiaca in modo non invasivo. Mentre ecocardiografia transtoracica (TTE) immagini sono limitati alle viste 2D lungo parasternale e asse corto nei suini 9, 3D-TEE può essere utilizzato per ottenere la completa immagini 3-dimensionali del ventricolo sinistro. Pertanto, non richiede approssimazioni matematiche di ventricolo sinistro (LV) volumi come regola modificata di Simpson 10. Quest'ultimo è a corto di correctly stima volumi LV dopo LV rimodellamento causa della mancanza di geometria cilindrica 11. Inoltre, 3D-TEE è preferibile rispetto ecocardiografia epicardico in quanto non richiede interventi chirurgici, che sono stati osservati per esercitare effetti cardioprotettivi del presente modello 12. Sebbene l'uso di 2D-TEE per la valutazione della funzione miocardica è stata descritta prima 13,14, limitazioni per quanto riguarda la geometria ventricolare sono simili a quelli osservati in 2D-TTE e dipendono dal grado di LV rimodellamento. Quindi, maggiore è l'infarto (e quindi maggiore è la probabilità di insufficienza cardiaca), le misurazioni 2D più probabili diventano viziata da ipotesi geometriche errate e maggiore è la necessità di tecniche 3D.

Tuttavia, la maggior parte delle modalità di imaging sono limitati nella loro capacità di valutare intrinseche proprietà funzionali del miocardio. PV loop fornire tali informazioni supplementari pertinenti e la loro acquisizione è pertantodescritto in dettaglio nel seguito.

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Protocollo

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Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dal Comitato Etico sulla sperimentazione animale della University Medical Center Utrecht (Utrecht, Paesi Bassi) e conformi alla 'Guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio'.

NOTA: Il protocollo per eseguire un palloncino di occlusione chiuso petto non è parte del manoscritto corrente e viene descritto in dettaglio altrove 5. In breve, i maiali (60 - 70 kg) sono sottoposti a 75 min pallone transluminale occlusione della porzione mediana della discendente anteriore sinistra (LAD).

Entrambi, tridimensionale transesofagea (3D-TEE) e le misure di loop pressione-volume (PV) possono essere eseguiti al basale, a breve termine ea lungo termine di follow-up. Si noti che queste misure sono considerate inaffidabili nelle prime ore dopo infarto miocardico causa di aritmie frequenti in questa fase. dimensione dell'infarto (IS) e l'area a rischio (AAR) le misure sono preferably valutata a breve termine di follow-up (24-72 ore) 15,16, dal momento che i cambiamenti in microcircolo e diradamento cicatrice miocardica secondaria culminano nei risultati meno affidabili. dimensioni dell'infarto colorazione viene eseguita usando 2,3,5-trifeniltetrazolio cloruro (TTC) (ATTENZIONE, irritante), che è considerato altamente riproducibili e relativamente poco costoso. TTC è una polvere bianca che si dissolve colorlessly in soluzione salina. A contatto con vari deidrogenasi, viene convertito in un colore rosso mattone. In tal modo, si discrimina tra praticabile (rosso) e tessuto miocardico morti (bianco). Per una panoramica su entrambi determinazione dimensioni dell'infarto invasiva e non invasiva, i lettori sono indirizzati a una revisione globale su questo tema 17.

La figura 1 mostra la sequenza temporale compreso l'anestesia, la preparazione chirurgica e le misure di outcome primari utilizzati in questo studio.

1. Farmaci e Anestesia

  1. Assicurarsi che l'animale non mangia obere per almeno 5 ore prima della procedura. Il pre-trattamento, anestesia e protocolli di trattamento del dolore post-operatorio sono stati descritti in dettaglio altrove 5.
  2. In breve, il giorno prima dell'intervento una patch buprenorfine (5 mg / ora) viene applicato alla pelle che è attiva per sette giorni per limitare dolore post-operatorio. Il giorno della chirurgia, suini sedare mediante iniezione intramuscolare di 0,4 mg / kg midazolam, 10 mg / kg ketamina e 0,014 mg / kg di atropina. Attendere circa 10 - 15 minuti. Inserire un G cannula 18 in una delle vene dell'orecchio e somministrare 5 mg / kg tiopentale sodico per indurre anestesia.
  3. Intubare il maiale utilizzando un tubo endotracheale (formato 8.5 per i suini di 60 - 70 kg). Se necessario, eseguire palloncino di ventilazione (frequenza 12 / min) e il trasporto del maiale per la sala operatoria.
  4. Al suo arrivo in sala operatoria, iniziare la ventilazione meccanica a pressione positiva con FiO 2 0,50, 10 ml / kg volume corrente e una frequenza di 12 / min utilizzando continuaregistrazione capnografia.
  5. Inizia anestesia bilanciata da infusione endovenosa continua di una combinazione di midazolam (0,5 mg / kg / ora), sufentanil (2,5 mg / kg / ora) e pancuronio (0,1 mg / kg / ora).
  6. Confermare l'anestesia per testare il riflesso corneale e il monitoraggio del modello di respirazione (ad esempio, la respirazione spontanea in combinazione con ventilazione meccanica indica anestesia incompleta). Utilizzare veterinario pomata per gli occhi per prevenire la secchezza mentre l'animale è sotto anestesia.

2. 3D ecocardiografia transesofagea (TEE)

  1. Per consentire il monitoraggio della frequenza cardiaca e l'acquisizione dati, collegare l'animale al 5 derivazioni ECG sulla macchina ecocardiografia.
  2. Posto l'animale in posizione laterale destra. Assicurarsi che la sonda è dritto e flessibile alla punta sbloccando il pezzo operativo.
  3. Aprire la bocca del maiale e inserire con cautela la sonda eco nell'esofago. Se necessario, utilizzare un laringoscopio per visualizzazione. Fare attenzione a evitare di finire nel normale sacchetto faringe anatomica, simile diverticolo di Zenker un 18.
  4. Inserire la sonda per 50 - 60 cm (misura dalla punta del muso). Lentamente ruotare la sonda e flettere la testa in posizione anterolaterale sinistro per visualizzare cuore (Figura 2A - B). Assicurarsi che tutte le pareti sono ben visibili.
  5. Utilizzare l'opzione "volume completo 3D" sul display della macchina ecocardiografia per visualizzare due immagini perpendicolari del ventricolo sinistro, come mostrato nella Figura 2C -. D Poi massimizzare la larghezza settore che viene acquisita selezionando "FV Opt Volume". Pausa ventilazione passando temporaneamente la ventilazione meccanica e premere il tasto "Acquisisci" per ottenere misure complete di volume.
  6. Dopo l'acquisizione eco, assicurarsi che la punta è flessibile sbloccando il pezzo operativo. Quindi rimuovere lentamente la sonda dall'animale.
    NOTA: Non lasciare the animale incustodito fino a quando non ha ripreso conoscenza sufficiente a mantenere decubito sternale. Non restituire un animale che ha subito un intervento chirurgico per la compagnia di altri animali fino alla completa guarigione.
  7. Eseguire l'analisi in linea con il software validato come descritto in precedenza 19.

3. pressione-volume ammissione basata su loop di acquisizione

  1. Pre-immergere le punte di rilevamento della ammettenza catetere 7 F tetra-polare in soluzione fisiologica 0,9% (temperatura ambiente a 37 ° C) per almeno 20 minuti per assicurare una corretta idratazione e minimale drift pressione basale durante l'esperimento 20.
  2. Somministrare farmaci e l'anestesia come descritto nella sezione 1.
  3. Eseguire la preparazione chirurgica e di ottenere un accesso vascolare come descritto in precedenza 5.
    1. In breve, la barba e pulire il collo. Disinfettare l'area chirurgica con iodio 2% e coprire le parti non sterili dei suini con teli chirurgici sterili.
    2. Rendereun'incisione mediale nel collo per esporre l'arteria carotide e la vena giugulare interna. Inserire un 8 F guaina in arteria carotide e F guaina 9 nella vena giugulare.
  4. Inserire un catetere di Swan-Ganz (SG) attraverso la guaina 9 F nella vena giugulare e cuneo in una piccola arteria polmonare gonfiando il palloncino sulla punta del catetere. Dopo un adeguato posizionamento nella parte periferica del polmone, sgonfiare il palloncino. Collegare il SG a un dispositivo di output cardiaco esterno.
  5. Attaccare una siringa da 20 ml contenente 0,9% soluzione salina sterile per porta di iniezione che si collega al lume con la debouchment più prossimale. Misurare la gittata cardiaca da una rapida infusione di 5 ml di soluzione fisiologica 0,9% (temperatura ambiente) e di ottenere tassi di cuore per calcolare gittata sistolica (SV). Ripetere questa procedura per tre volte e calcolare la media SV.
    NOTA: La portata cardiaca è (automaticamente) calcolata usando l'equazione termodiluizione Stewart-Hamilton ed è basato su cambiamenti di temperatura nelarteria polmonare upon infusione di soluzione salina temperatura ambiente 21.
  6. Rimuovere il catetere SG. Inserire un 8 F Fogarty catetere attraverso la guaina 9 F nella vena giugulare e posizionarlo nella vena cava inferiore.
  7. Calibrare il segnale di pressione del catetere ciclo FV tramite il pulsante "Fine" "Corso" e, mentre la punta resta in soluzione fisiologica 0,9%. Poi inserire il SV misurata nel sistema.
  8. Far avanzare il catetere ciclo fotovoltaico attraverso l'8 F guaina nella carotide e centrare la punta del ventricolo sinistro (LV) in fluoroscopia.
  9. Selezionare la più grande segmento collocato adeguatamente tracciando il segnale di conduttanza grezzo contro il segnale di pressione. Assicurarsi che i cicli di pressione-conduttanza sono di forma rettangolare. segnale di fase è prevista in una traccia sinusale con valori compresi tra 3 e 5 gradi. Pausa di ventilazione ed eseguire una linea di base scansione per convertire conduttanza a Volume.
    1. Accettare i dati di base da partepremendo il tasto "Continua" quando i segnali sono stabili (nessun aritmie), la frequenza cardiaca è pari a ECG o le frequenze cardiache di pressione derivato e telesistolico (ES) telediastolica conduttanza / (ED) sono adeguatamente percepito dal sistema 20.
      NOTA: Quest'ultima può essere verificata tracciando segnale conduttanza grezzo contro il segnale di pressione e confrontando i valori di conduttanza ES / DE derivate dalla linea di base scansione in tempo reale conduttanza. Se uno dei requisiti di cui sopra non è soddisfatta, ripetere la procedura.
  10. Acquisire basali loop pressione-volume registrando 10 - 12 battiti consecutivi nei apnea mettendo in pausa la ventilazione.
  11. Gonfiare il catetere di Fogarty sotto guida fluoroscopica per ridurre il precarico e registrare 10 - 12 battiti consecutivi come descritto sopra. Assicurarsi che la pressione arteriosa sistolica rimane> 60 mmHg e non aritmie interferire con le misurazioni.
  12. Rimuovere i cateteri ciclo Fogarty e fotovoltaici. Mantenere la registrazione arteriosa pressure prima e durante la rimozione del catetere ciclo PV per abilitare correggere la deriva pressione (cioè, ex vivo pre e post-procedurale basale differenza di pressione).
    NOTA: Non lasciare l'animale incustodito fino a quando non ha ripreso conoscenza sufficiente a mantenere decubito sternale. Non restituire un animale che ha subito un intervento chirurgico per la compagnia di altri animali fino alla completa guarigione.
  13. Eseguire l'analisi offline delle misurazioni geometriche e dei parametri funzionali con un software validato 22.

4. Area a rischio (AAR) e Infarct Dimensioni (IS) Quantificazione

  1. Sciogliere 1,00 g Evans blu (ATTENZIONE 23, tossici) in 50 ml di soluzione salina allo 0,9%, riempire due 50 ml siringhe Luer lock con 20 ml e 30 ml di soluzione al 2% blu Evans, rispettivamente, e mantenere a temperatura ambiente.
    NOTA: Lavoro in una cappa aspirante e indossare una maschera antipolvere per limitare l'esposizione alle polveri pericolose e utilizzare guanti e occhiali protettivi per evitare il contatto frla pelle e gli occhi om.
  2. Prendendo le precauzioni simili, sciogliere 1% 2,3,5-trifenil-tetrazoliumchloride (TTC) (ATTENZIONE, irritante) a 37 ° C 0,9% soluzione salina e mantenere a 37 ° C.
  3. Chirurgicamente preparare l'animale per ottenere l'accesso vascolare per entrambe le arterie carotidee. Eseguire una sternotomia per consentire la visualizzazione diretta degli effetti in vivo Evans blu infusione 5.
  4. Inserire un 7 F e 8 F introduttore guaina nella rispettiva carotide. In alternativa, inserire entrambe le guaine introduttori in un'unica carotide o utilizzare una delle arterie femorali per uno dei due cateteri guida.
  5. Collegare due Y-connettori standard ad un 7 F JL4 e 8 F JL4 catetere guida, rispettivamente. Per un approccio femorale, utilizzare un JR4 per la coronaria destra (RCA) e un JL4 per l'arteria coronaria sinistra (LCMA). Collegare un rubinetto supplementare a tre vie con 10 centimetri di estensione ad entrambe le Y-connettori.
  6. Somministrare 100 UI / kg di eparina. Posizionare il ca guida 8 F JL4theter nel ostio della LMCA tramite una delle due guaine introduttori.
  7. Utilizzando un "filo guida 0,014, avanzare un catetere di dilatazione coronarica attraverso il catetere LCMA e posizionare il pallone nel sito in cui è stato eseguito occlusione coronarica durante MI induzione. Non ancora, non gonfiare.
  8. Posizionare il secondo catetere guida 8 F JL4 nel ostio della RCA attraverso il secondo introduttore.
  9. Eseguire una angiografia coronarica (CAG) infondendo mezzo di contrasto in fluoroscopia per confermare il corretto posizionamento di entrambi i cateteri guida e il palloncino nelle arterie coronarie, utilizzando antero-posteriore e Lao 30 ° viste.
  10. Fissare le due da 50 ml siringhe contenenti 30 ml (LCMA) e 20 ml (RCA) 2% Evans blu ai rispettivi rubinetti a tre vie collegate ai Y-connettori sui cateteri guida.
  11. Gonfiare il palloncino e confermare l'occlusione della coronaria da CAG. Solo quando il palloncino blocca completamente il passaggio di qualsiasi mezzo di contrasto, iniettare Evans blue dvoi attraverso entrambi i cateteri guida (5 ml / s), mentre il palloncino viene gonfiato.
  12. Immediatamente dopo il completamento di Evans blue infusione, indurre la fibrillazione ventricolare posizionando una batteria 9 V sulla parte non infartuata del cuore.
  13. Incidere la vena cava per scaricare la pressione e assicurarsi un gruppo di aspirazione è disponibile per permettere il drenaggio del sangue.
  14. Sgonfiare il pallone, ritrae insieme con entrambi i cateteri guida e espiantare il cuore da dissezione membrane che circondano. Un taglio trasversale attraverso le navi di grandi dimensioni (ad esempio, aorta, arteria polmonare / vene) consente la completa espianto. Rapidamente lavare sangue e colorante superfluo sulla superficie esterna e nelle cavità cardiache con 0,9% di soluzione salina.
  15. sezionare con cura il ventricolo sinistro ed effettuare tagli in 5 10 mm sezioni spesse pari dall'apice basare, in un piano parallelo al atrioventricolare (AV) scanalatura.
  16. Fotografare entrambi i lati di ogni cinque fette separatamente in condizioni di luce ambientale,come possibile Evans blue washout può verificarsi nel passaggio successivo. Per la calibrazione, assicurarsi un righello è presente nell'immagine.
  17. Incubare per 10 min in soluzione TTC 1% a 37 ° C, trasformando le sezioni intorno dopo 5 min a parità di colorazione.
  18. Anche in questo caso, fotografare entrambi i lati di tutte e cinque le sezioni separatamente in condizioni di luce ambientale e assicurarsi un righello viene visualizzato nell'immagine per la calibrazione.
  19. Pesare tutte le sezioni. Utilizzare il software adatto per le analisi 5. Quando si utilizza ImageJ (versione 1.47), fare clic sul pulsante "Retta". Ora, disegnare una linea retta con una distanza nota utilizzando il righello nell'immagine (ad esempio, 5 cm). Fai clic su "Analizza" -> "Imposta scala" e inserire la distanza nella casella "distanza nota". Questo procedimento consente di calibrare distanza in pixel per unità SI di lunghezza.
  20. Utilizzando il pulsante "Poligono selezioni", selezionare l'area totale che corrisponde al miocardio LV nel presente iml'età, cliccare su "Analizza" -> "Misura" per acquisire misurazioni. Eseguire questa procedura per entrambi i lati di ogni fetta del miocardio, e media per fetta.
    1. Moltiplicare per il peso della fetta proporzionale al peso totale di tutti i cinque fette e media queste misurazioni per tutte le sezioni.
  21. Effettuare misure simili per l'area a rischio (AAR) e la dimensione infartuale (IS). Divide IS / AAR, AAR / LV e IS / LV e moltiplicare per 100% per ottenere rispettive misure di outcome 5.

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Risultati

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3D ecocardiografia transesofagea

3D l'ecocardiografia transesofagea (3D-TEE) può essere utilizzato per la valutazione della funzione cardiaca globale. Dopo AMI, la funzione cardiaca globale si differenzia da valori basali sani. In particolare, la frazione di eiezione ventricolare sinistra (FEVS) diminuisce da 59 ± 4% a 37 ± 6% dopo una settimana di riperfusione (n = 10) (GPJ Van Hout, 2015). è anche ...

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Discussione

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Rimodellamento cardiaco è in gran parte in base alla dimensione infarto del miocardio e la qualità di infarto miocardico riparare 6,26. Per valutare il primo in modo standardizzato, la presente manoscritto fornisce un metodo elegante di infusione in vivo blu Evans combinato con ex vivo TTC colorazione, che è stato convalidato e ampiamente utilizzati 8,16,27,28. Questo metodo consente la quantificazione della zona a rischio (AAR) e dimensioni dell'infarto in relazione AAR ...

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Dichiarazioni

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

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Gli autori ringraziano Marlijn Jansen, Joyce Visser, Grace Croft, Martijn van Nieuwburg, Danny Elbersen ed Evelyn Velema per il loro eccellente supporto tecnico durante gli esperimenti sugli animali.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Ecocardiografia transesofagea 3-dimensionale
iE33
Philips-Aquasonic
®reg; 100Parker Laboratories Inc.01-34È possibile utilizzare un prodotto alternativo
Manico a batteria tipo C (manico per laringoscopio)Riester12303
Ri-Standard Lama Miller MIL 4 (lama per laringoscopio)Riester12225
Qlab 10.0 (3DQ Advanced)Philips-
NameAziendaNumero di catalogoComments
Acquisizione del loop pressione-volume
Defibrillatore cardiacoPhilips
0,9% SalineBraun
8 F Set di introduttori per guaina percutaneaArrowCP-08803È possibile utilizzare
un prodotto alternativo9 F Radifocus® Kit standard Introduttore II TerumoRS*A90K10SQIl prodotto alternativo può essere utilizzato
Catetere Fogarty 8 FEdward Life Sciences62080814FIl prodotto alternativo può essere utilizzato
7 F Criticath™ Catetere SP5107H TD (Swan-Ganz)Becton Dickinson (BD)680078È possibile utilizzare un prodotto alternativo
Ultraview SL Monitor paziente e modulo di comando invasivo (dispositivo esterno per la gittata cardiaca)Spacelabs Healthcare91387È possibile utilizzare un prodotto alternativo
ADVantage system™TransonicSciSense-7
F (7,0 VSL Pigtail / senza lume)multicanale Transonic SciSense
(Iworx 404)di analisi Iworx-Labscribe
V2.0Iworx-Prodottoalternativo può essere utilizzato
NomeAziendaNumero di catalogoComments
Dimensione dell'infarto / quantificazione dell'area a rischio
Diatermia-Prodottoalternativo può essere utilizzato
Coltello Lebsch-Prodottoalternativo Può essere utilizzato
Martello-Prodottoalternativo può essere utilizzato
Cera per midollo osseoSynetureProdotto alternativo può essere utilizzato
Forbici Klinkenberg-Prodottoalternativo può essere utilizzato
Divaricatore-Prodottoalternativo può essere utilizzato
Forbici chirurgiche-7
F Set introduttore guaina percutanea ArrowCP-08703Il prodotto alternativo può essere utilizzato
8 F Set introduttore guaina percutaneaArrowCP-08803Il prodotto alternativo può essere utilizzato
7 F JL4 catetere guida Boston ScientificH749 34357-662Il prodotto alternativo può essere utilizzato
8 catetere guida F JL4Boston ScientificH749 34358-662 È possibile utilizzare un prodotto alternativo
Valvole di controllo dello spurgo COPILOT Abbott Vascolare1003331Prodotto alternativo può essere utilizzato
BD Connecta™  Franklin Lakes394995È possibile utilizzare un prodotto alternativo
Agente di contrastoTelebrix
Persuader 9 Steerable Guidewire 9 (0,014", 180 cm, punta diritta), rivestimento idrofiloMedtronic Inc.9PSDR180HSIl prodotto alternativo può essere utilizzato
ZAFFIRO e commercio; Catetere per dilatazione coronarica (palloncino PTCA adatto alle dimensioni della particolare arteria coronaria (2,75 - 3,25 mm))OrbusNeich103-3015È possibile utilizzare un prodotto alternativo
Evans Blue Sigma-AldrichE2129-100GTossico. Il prodotto alternativo può essere utilizzato
2,3,5-trifenil-tetrazolio cloruro (TTC)Sigma-AldrichT8877-100Girritante. Il prodotto alternativo può essere utilizzato
Batteria da 9 V-
Righello-
FotocameraSony-
ImageJNational Institutes of Health-È possibile utilizzare un prodotto alternativo
trasduttore Philips-X7-2t Gel di trasmissione a ultrasuoni Software di analisi Catetere ad ammissione tetrapolare Sistema di acquisizione Software

Riferimenti

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