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Articolo metodologico

Osservando divisione mitotica e Dynamics in un embrione vivo Zebrafish

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DOI:

10.3791/54218

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15 luglio 2016

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In questo articolo

Sommario

La mitosi è fondamentale per ogni organismo vivente e i difetti spesso portano al cancro e ai disturbi dello sviluppo. Utilizzando questo protocollo di imaging e il pesce zebra come sistema modello, i ricercatori possono visualizzare la mitosi in un organismo vertebrato vivo e la moltitudine di difetti che si verificano quando i processi mitotici sono difettosi.

Abstract

La mitosi è fondamentale per la crescita e la differenziazione organismal. Il processo è altamente dinamico e richiede ordinato eventi per realizzare una corretta condensazione della cromatina, l'attaccamento ai microtubuli cinetocoro, segregazione dei cromosomi, e citocinesi in un piccolo lasso di tempo. Errori nel delicato processo può portare a malattie umane, tra cui difetti di nascita e il cancro. Gli approcci tradizionali che indagano stati di malattia mitotico umani spesso si basano su sistemi di coltura cellulare, che non hanno la naturale fisiologia e contesto di sviluppo / tessuto-specifica vantaggiosa quando si studia la malattia umana. Questo protocollo supera molti ostacoli, fornendo un modo per visualizzare, ad alta risoluzione, la dinamica dei cromosomi in un sistema di vertebrati, il pesce zebra. Questo protocollo saranno i dettagli di un approccio che può essere usato per ottenere immagini dinamiche di cellule in divisione, che comprendono: la trascrizione in vitro, allevamento zebrafish / raccolta, embrione embedding, e time-lapse imaging. Ottimizzazione e modifications di questo protocollo sono anche esplorati. Utilizzando H2A.F / Z-EGFP (etichette cromatina) e mCherry-CAAX (etichette cella a membrana) embrioni mRNA-iniettato, mitosi in AB wild-type, auroraB hi1045, e hi2865 ESCO2 zebrafish mutante viene visualizzato. Ad alta risoluzione delle immagini dal vivo in zebrafish permette di osservare più mitosi per quantificare statisticamente difetti mitotici e tempi di progressione mitotico. Inoltre, si osservano osservazione di aspetti qualitativi che definiscono i processi impropri mitosi (ad esempio, difetti congressione, missegregation di cromosomi, ecc) e gli esiti cromosomiche improprio (ad esempio, aneuploidia, poliploidia, micronuclei, etc.). Questo test può essere applicato alla osservazione di tessuti differenziazione / sviluppo ed è suscettibile all'uso di zebrafish mutante e agenti farmacologici. Visualizzazione di come difetti di mitosi portare a disturbi del cancro e di sviluppo sarà notevolmentemigliorare la comprensione della patogenesi della malattia.

Introduzione

La mitosi è un essenziale processo cellulare fondamentale per la crescita, la differenziazione e la rigenerazione in un organismo vivente. Dopo accurata preparazione e la replicazione del DNA in interfase, la cella è innescato per dividere. La prima fase della mitosi, profase, viene avviata dall'attivazione della ciclina B / Cdk1. Prophase è caratterizzata dalla condensazione del materiale cromatina in cromosomi. Nucleare ripartizione busta avviene al passaggio tra profase e prometafase. In prometafase, centrosomi, il centro di nucleazione per la formazione del fuso, cominciano a migrare verso poli opposti, estendendo microtubuli in cerca di attaccamento cinetoco....

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Protocollo

1. in vitro Trascrizione

  1. Linearizzare pCS2-H2A.F / Z-EGFP e / o vettori pCS2-mCherry-CAAX per restrizione NotI enzima digerire 31. L'utilizzo di un RNA nel kit di trascrizione in vitro, generare 5 'prodotti mRNA ricoperti da ogni modello, secondo il protocollo del produttore.
  2. Purificare i mRNA innevate con un kit di purificazione. Seguire le istruzioni del produttore. Eluire con RNasi-free H 2 O.
  3. Determinare la concentrazione di RNA mediante assorbanza a 260 nm utilizzando uno spettrofotometro. (OD 260 x diluizione x 40 mcg / ml).
  4. Diluire l'RNA a 100 ng / ....

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Risultati

La figura 2 mostra la capacità di osservare molte divisioni cellulari che utilizzano un ampio panorama di un campo di tipo selvaggio coda zebrafish AB. Oltre sette cellule mitotiche vengono esposte in un arco di tempo 14 min (Film 1). Entro il corso di due ore, più di 40 eventi mitotico sono stati catturati. In media, 50 cellule in divisione sono stati osservati nel 30 AB e divisione delle cellule in AUR B m / m embrioni

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Discussione

L'uso di questo metodo permette di dedurre ripartizione nucleare envelope, formazione di una piastra di metafase da allegati microtubuli cinetocoro, e la segregazione dei cromatidi fratelli per formare due nuove cellule in vivo e in un modo dipendente dal tempo. La capacità di osservare mitosi in zebrafish è vantaggioso su campioni fissati e sistemi di coltura cellulare perché le cellule vengono ripreso nella fisiologia naturale, il tessuto è trasparente che permette proteine ​​fluorescenti da utilizzare, s.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Ringraziamo Kristen Kwan per i vettori pCS2-H2A.F/Z-EGFP e pCS2-mCherry-CAAX. Ringraziamo Chris Rodesch per averci insegnato l'imaging dal vivo nel pesce zebra. Ringraziamo Shawn Williams, Erik Malarkey e Brad Yoder per l'assistenza nell'imaging confocale presso UAB e l'High Resolution Imaging Facility presso UAB. La struttura di imaging ad alta risoluzione è supportata dall'UAB Comprehensive Cancer Center Support Grant (P30CA013148) e dal Rheumatic Disease Core Center (P30 AR048311). J.M.P. è supportato dal National Institute of Neurological Disease and Stroke (NIH R21 NS092105) e da sovvenzioni pilota dell'American Cancer Society (ACS IRG-60-001-53-IRG) e dell'UAB C....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Vettori pCS2Regalo di K. KwanPer il plasmide di interesse
Enzima di restrizione NotI-HFNew England BioLabsR3189SPer la restrizione digest del plasmide
mMessage SP6 kitLife TechnologiesAM1340Per la trascrizione in vitro
RNeasy Mini kitQiagen74104Per la purificazione dell'mRNA
100 x 15 mm piastre di PetriFisherScientific FB0875712Per l'alloggiamento di embrioni stampo
per microiniezionefatto in casaPer contenere embrioni durante la microiniezione
Agarosio IIAmresco0815-25GPer l'inclusione di embrioni
TricainaSigma-AldrichE10521-10GPer l'anestetizzazione di embrioni
Cloruro di sodioSigma-AldrichS9888Per l'acqua dell'embrione (E3 Blue), disciolto in UltraPure H2O
Cloruro di potassioSigma-AldrichP3911Per l'acqua dell'embrione (E3 Blue), disciolto in UltraPure H2O
Cloruro di calcio diidratoSigma-AldrichC8106Per l'acqua dell'embrione (E3 Blue), disciolto in UltraPure H2O
Solfato di magnesioFisher ScientificM7506Per l'acqua dell'embrione (E3 Blue), disciolta in UltraPure H2O
Metilene Blue HydrateSigma-AldrichMB1Per l'acqua dell'embrione (E3 Blue), disciolta in UltraPure H2O
100 mm provetta di colturaFisher Scientific50-819-812Per agar fuso
35 mm di vetro vetrino coprioggetto fondo piatto di coltura MatTek CorpP35G-0-20-C N. 0, vetro da 20 mm, per l'inclusione di embrioni
#5 pinzetteDumont72701-DPer la dechorionizzazione di embrioni
21 G 1 1/2 gaugeago Becton Dickinson305167Per il posizionamento di embrioni in agar
Microscopio da dissezioneNikon AZ100Per lo screening e l'inclusione di embrioni, qualsiasi cannocchiale da dissezione andrà bene
Microscopio confocaleNikon A1+Per l'imaging time-lapse
Software confocaleNIS Elements AR 4.13.00Per l'acquisizione e l'elaborazione delle immagini

Riferimenti

  1. Musacchio, A., Hardwick, K. G. The spindle checkpoint: structural insights into dynamic signalling. Nat Rev Mol Cell Biol. 3 (10), 731-741 (2002).
  2. Li, X., Nicklas, R. B. Mitotic forces control a cell-cycle checkpoint. Nature. 373 (6515), 630-632 (1995).
  3. Rieder....

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