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Articolo metodologico

Misurare la rigidità

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DOI:

10.3791/54630

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19 ottobre 2016

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In questo articolo

Sommario

Presentiamo protocolli dettagliati per l'isolamento delle aorte dal topo e la misurazione del loro modulo elastico utilizzando la microscopia a forza atomica.

Abstract

irrigidimento arteriosa è un fattore di rischio significativo e biomarker per malattie cardiovascolari e un segno distintivo di invecchiamento. Microscopia a forza atomica (AFM) è uno strumento analitico versatile per la caratterizzazione viscoelastiche proprietà meccaniche per una varietà di materiali che vanno dal disco (plastica, vetro, metallo, ecc) le superfici di celle su qualsiasi substrato. È stato ampiamente utilizzato per misurare la rigidità delle cellule, ma usato meno frequentemente per misurare la rigidità di aorte. In questo articolo, descriveremo le procedure per l'utilizzo in modalità AFM contatto per misurare la ex vivo modulo elastico delle arterie scaricati mouse. Descriviamo la nostra procedura per l'isolamento di aorte del mouse, e quindi fornendo informazioni dettagliate per l'analisi AFM. Questo include le istruzioni passo-passo per l'allineamento del raggio laser, la taratura della costante della molla e la sensibilità deflessione della sonda AFM, e l'acquisizione di curve di forza. Forniamo anche un protocollo dettagliato per analy datisis delle curve di forza.

Introduzione

Le proprietà biomeccaniche delle arterie sono un fattore determinante nelle malattie cardiovascolari (CVD) e nell'invecchiamento. La rigidità arteriosa, un importante fattore di rischio indipendente dal colesterolo e un indicatore della progressione delle CVD, aumenta con il danno vascolare, l'aterosclerosi, l'età e il diabeteda 1 a 8. L'irrigidimento della parete arteriosa è associato a un aumento della dedifferenziazione, della migrazione e della proliferazione delle cellule muscolari lisce vascolari9-12. Inoltre, l'aumento della rigidità arteriosa è stato collegato a una maggiore adesione dei macrofagi1, alla permeabilità endotelial....

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Protocollo

lavori di animali in questo studio è stato approvato dai comitati cura e l'uso istituzionale animali della University of Pennsylvania. I metodi sono stati eseguiti in conformità con le linee guida approvate.

1. Preparare il mouse e isolamento dell'aorta

  1. Anestetizzare un mouse con ketamina (80 - 100 mg / kg), xilazina (8 - 10 mg / kg) e acepromazine (1 - 2 mg / kg) per via intraperitoneale. Confermare l'anestesia con un test coda pizzico. Una volta che il mouse è completamente anestetizzato, eutanasia il mouse dislocazione cervicale.
  2. Posizionare il mouse sul dorso e il pin il mouse in una tavola di dissezio....

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Risultati

La figura 5A mostra un'immagine a contrasto di fase dell'aorta discendente (toracica) da un 6 mesi di età, di sesso maschile C57BL / 6 del mouse. Il cantilever AFM è posto direttamente sopra il tessuto e pronto per il rientro. Figure 5B e 5C mostrano curve rappresentative forza ottenuti mediante AFM rientranza in modalità contatto. Linee verdi mostrate nelle figure 5B e 5C rappresentano le migliori curve di adattamento ott.......

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Discussione

AFM indentazione può essere utilizzato per caratterizzare la rigidità (modulo elastico) di cellule e tessuti. In questo lavoro, forniamo dettagliate protocolli passo-passo per isolare l'aorta discendente e arco aortico nel topo e determinare il modulo elastico di queste regioni arteriosi ex vivo. Ora riassumere e discutere le questioni tecniche e le limitazioni del metodo descritto in questo articolo.

Diversi problemi tecnici possono sorgere in isolamento e l'analisi di topo.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

L'analisi AFM è stata eseguita su strumentazione supportata dal Pennsylvania Muscle Institute e dall'Institute for Translational Medicine and Therapeutics, Perelman School of Medicine, l'Università della Pennsylvania. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni NIH HL62250 e AG047373. YHB è stato supportato da una borsa di studio post-dottorato dell'American Heart Association.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
BioScope Catalyst AFM systemBruker
Nikon Eclipse TE 200 microscopio invertitoNikon Instruments
Sonda AFM in nitruro di silicioNovascan TechnologiesPT. SI02. SN.10,06 N/m a sbalzo; 1 µ m SiO2
particella Dumont #5 pinzeFine Science Tools11251-10Vedere la sezione 1.4
Dumont #5SF pinzeFine Science Tools11252-00Vedere la sezione 1.8
Forbici fini-ToughCutFine Science Tools14058-11Vedere la sezione 1.4 (di medie dimensioni)
Vannas-Tü Forbici a mollaBingen Fine Science Tools15008-08Vedere la sezione 1.6 (di piccole dimensioni)
Piatto per colture cellulari da 60 mm trattato con TC353004
Soluzione salina tamponata con fosfato di Dulbecco, 1xCorning21-031-CMSenza calcio e magnesio
Krazy Glue liquido istantaneo per tutti gli usiKrazyGlue KG58548RVedere la sezione 2.2
Punte con caricamento gel, 1 - 200 & micro; lFisher02-707-139Vedere la sezione 2.2
Pinzette a puntaMicroscopia elettronicaSciences 78092-CPVedere la sezione 3.2
Piatti con fondo in vetro trasparente da 50 mmTED PELLA14027-20Vedere la sezione 4.4
Corning

Riferimenti

  1. Kothapalli, D., et al. Cardiovascular Protection by ApoE and ApoE-HDL Linked to Suppression of ECM Gene Expression and Arterial Stiffening. Cell Rep. 2, 1259-1271 (2012).
  2. Liu, S. -L., et al. Matrix me....

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Ristampe e permessi

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