Articolo metodologico

Diffusione molecolare nel plasma membrane dei linfociti primari misurati da Fluorescence Correlation Spectroscopy

DOI:

10.3791/54756

1 febbraio 2017

In questo articolo

Sommario

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Viene descritto un metodo per misurare la diffusione delle proteine nelle membrane delle cellule immunitarie primarie utilizzando la spettroscopia di correlazione della fluorescenza (FCS). In questo articolo viene illustrato l'uso di anticorpi per la marcatura fluorescente.

Abstract

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correlazione spettroscopia di fluorescenza (FCS) è una tecnica potente per studiare la diffusione delle molecole all'interno delle membrane biologiche con elevata risoluzione spaziale e temporale. FCS può quantificare la concentrazione e diffusione molecolare coefficiente di molecole marcate fluorescenza nella membrana cellulare. Questa tecnica ha la capacità di esplorare le caratteristiche di diffusione molecolare delle molecole nella membrana plasmatica di cellule immunitarie in stato stazionario (cioè, senza processi che influenzano il risultato durante il tempo di misurazione effettiva). FCS è adatto per studiare la diffusione di proteine ​​che vengono espresse a livelli tipici per proteine ​​più endogene. Qui, un metodo semplice e robusto per determinare la velocità di diffusione delle proteine ​​di membrana cellulare sui linfociti primari è dimostrata. Un modo efficace per eseguire misure su cellule vive colorate con anticorpo e osservazioni comuni che si verificano dopo l'acquisizione sono descritti. I progressi recentinello sviluppo di coloranti fluorescenti fotostabili può essere utilizzato coniugando anticorpi di interesse appropriarsi coloranti che non candeggiare ampiamente durante le misurazioni. Inoltre, questo permette la rilevazione di entità diffondenti lentamente, che è una caratteristica comune di proteine ​​espresse nelle membrane cellulari. La procedura di analisi per estrarre i parametri di concentrazione e di diffusione molecolare dalle curve di autocorrelazione generate viene evidenziato. In sintesi, viene fornito un protocollo di base per misurazioni FCS; può essere seguito da immunologi con una comprensione della microscopia confocale ma nessun'altra esperienza precedente di tecniche per la misurazione di parametri dinamici, come i tassi di diffusione molecolare.

Introduzione

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Molte funzioni cellule immunitarie si affidano a diffusione molecolare e interazioni all'interno delle membrane. Membrane biologiche sono complesse, e molti fattori che possono essere importanti per la funzione delle cellule immunitarie possono influenzare la velocità di diffusione traslazionale delle proteine all'interno delle membrane cellulari 1. Abbiamo recentemente dimostrato che le cellule natural killer (NK), i linfociti appartenenti al sistema immunitario innato, mostrano la diffusione differenziale delle due proteine studiate a livello della membrana cellulare a seconda dello stato di attivazione delle cellule NK

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Protocollo

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1. La colorazione per FCS

  1. Isolare le cellule NK murine da linfociti di milza con etichettatura tallone magnetico, come da protocollo 16 del produttore. Utilizzare 2-3 x 10 5 cellule per esempio per le seguenti operazioni.
    NOTA: Utilizzare la selezione negativa per arricchire la popolazione di cellule bersaglio, lasciando intatta, in modo che le cellule possono essere etichettati con anticorpi primari sola. Vedi di riferimento 2 per informazioni più dettagliate su isolamento delle cellule da topi 2.
  2. Per le cellule murine esprimono recettori Fc, bloccare i recet....

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Risultati

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Un tipico risultato genera una curva di autocorrelazione con un tempo di transito nella gamma da 10 msec a 400 msec per le proteine ​​di membrana. Il numero di molecole può variare tra 0,5 e circa 200 per micron 2 per proteine endogenamente espressi. Controllare attentamente che il CPM non è inferiore al previsto. Questo può significare che vi è una influenza del segnale di fondo. Come regola generale, il segnale CPM sulle cellule che viene accettato per analisi non deve esser.......

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Discussione

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Questo protocollo per FCS può essere utilizzato per la valutazione delle dinamiche molecolari di molecole di superficie su tutti i tipi di cellule immunitarie (murina, umana, o altre specie). Misure FCS spazio-temporali dinamica molecolare fino a risoluzione di una singola molecola in cellule vive. La densità molecolare, nonché le dinamiche dei tassi di diffusione e di clustering delle proteine ​​di interesse, possono essere estratte dalle curve di autocorrelazione.

L'etichettatura fluor.......

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Dichiarazioni

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

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Ringraziamo il Dr. Vladana Vukojević, Centro di Medicina Molecolare, Karolinska Institutet per la manutenzione dello strumento Zeiss ConfoCor 3 e per suggerimenti utili per quanto riguarda le misure di cella. Questo studio è stato finanziato da sovvenzioni dal Vetenskapsrådet (concessione numero 2012- 1629), Magnus Bergvalls Stiftelse, e da Stiftelsen Claes Groschinskys minnesfond.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Kit di isolamento cellulare MACS NK mouse IIMiltenyi Biotec NordenAB130-096-892Selezione negativa di cellule NK
Fetale Siero bovinoSigma-AdlrichF7524inattivato a caldo
-Prodotto in casa 
Roswell Park Memorial Institute medio 1640PAA La società di colture cellulari E15-848Clone di
anticorpo medio trasparente 2.4G2Thermo Fischer Scientific553140Per il blocco dei recettori Fc.
Anticorpo anti-Ly49A Anticorpo monoclonale prodotto in casa e coniugato in casa ad Alexa fluor 647
Clone JR9.318
Anticorpo H-2Dd.BD Pharmingen558915coniugato internamente al clone MFP488
34.5.8S
MFP488MobiotechMFP-A2181Colorante fluorescente per la coniugazione di anticorpi.
Poli-L-LisinaSigma-AldrichP8920Diluita in acqua distillata (1,10)
Poli-L-Lisina (20 kDa) innestata con polietilenglicole (2 kDa)SuSoS AGPLL(20)-g[3,5]-PEG(2)Diluitain PBS (pH 7,4) a 0,5 mg/ml.
Cloruro di rodamina 110Sigma-Aldrich432202Coefficiente di diffusione noto: 3,3 &volte; 10− 10 m2/sec 19
Alexa fluor 647Thermo Fisher Scientific A20006Coefficiente di diffusione noto: 4,4 &volte; 10− 10 m2/sec 20
Microscopio confocale ZeissLSM510
Software: Confocor 3Zeiss
Software: Matlab con toolbox per il montaggio a curvaMatlabVersione R2013b
Nunc Lab-Tek Coverglass a cameraTermo-scientifico 1554118 pozzetti, fondo in borosilicato 1.0
Soluzione salina tamponata con fosfato

Riferimenti

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  1. Goni, F. M. The basic structure and dynamics of cell membranes: an update of the Singer-Nicolson model. Biochim Biophys Acta. 1838, 1467-1476 (2014).
  2. Bagawath-Singh, S., et al. Cytokin....

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Membrana plasmaticaMicroscopia confocaleCurva di autocorrelazioneCoefficiente di diffusioneColoranti fluorescentiColorazione con anticorpiImaging di cellule vive

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