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Articolo metodologico

Flusso analisi di citometria di Natural Killer cellulare Lytic attività nel Sangue umano intero

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DOI:

10.3791/54779

17 marzo 2017

In questo articolo

Sommario

Questo lavoro descrive un flusso di lavoro avanzato per la determinazione accurata e rapida della conta delle cellule NK (Natural Killer) e della citotossicità delle cellule NK in campioni di sangue umano.

Abstract

citotossicità delle cellule NK è una misura ampiamente utilizzato per determinare l'effetto di un intervento esterno sulla funzione delle cellule NK. Tuttavia, la precisione e la riproducibilità di questo test possono essere considerati instabili, sia a causa di errori dell'utente oa causa della sensibilità delle cellule NK di manipolazione sperimentale. Per eliminare questi problemi, un flusso di lavoro che li riduce al minimo è stato stabilito ed è presentato qui. Per illustrare, abbiamo ottenuto campioni di sangue, in vari momenti, da corridori (n = 4), che sono stati sottoposti ad un intenso periodo di esercizio. In primo luogo, le cellule NK sono contemporaneamente identificati e isolati attraverso CD56 tagging e smistamento magnetico-based, direttamente dal sangue intero e da un minimo di un millilitro. Le cellule NK ordinati vengono rimossi di eventuali anticorpi reagenti o tappatura. Essi possono essere contati per stabilire un accurato conteggio delle cellule NK per millilitro di sangue. In secondo luogo, le cellule NK ordinati (effettori cellule o E) possono essere miscelati con 3,3'-Diotadecyloxacarbocyanine perclorato (DIO) etichettato cellule K562 (cellule bersaglio o T) in un saggio-ottimale 1: 5 T: rapporto E e analizzato utilizzando un flusso-citometria di imaging che permette la visualizzazione di ogni evento e l'eliminazione di falsi positivi o falsi negativi (come doppiette o cellule effettrici). Questo flusso di lavoro può essere completato in circa 4 ore, e consente di ottenere risultati molto stabili anche quando si lavora con campioni umani. Quando disponibile, gruppi di ricerca possono testare diversi interventi sperimentali in soggetti umani, e confrontare le misurazioni attraverso diversi punti di tempo senza compromettere l'integrità dei dati.

Introduzione

cellule killer naturali sono un elemento essenziale del sistema immunitario innato. Mentre sono molto disciplinati, hanno la capacità di riconoscere ed eliminare le cellule anomale attraverso il contatto cellula-cellula e senza attivazione preventiva 1. Come tali, essi formano una linea veloce di difesa contro le infezioni. Esercizio, particolarmente intenso, ha dimostrato di deprimere transitoriamente il sistema immunitario 2, 3, 4, 5. Cellule NK sono particolarmente soggetti a questo effetto ....

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Protocollo

NOTA: Tutte le procedure di raccolta del sangue sono state condotte in conformità con le linee guida stabilite dalla Appalachian State University (ASU) Institutional Review Board (IRB).

1. Raccolta Sangue intero

  1. Avere un flebotomo certificato prelevare il sangue secondo le linee guida dell'Organizzazione Mondiale della Sanità.
  2. Disegnare il sangue in un 4 ml di tubo di raccolta del sangue contenente acido Di-Potassio etilendiamminotetraacetico (K 2 EDTA). Capovolgere tubo di raccolta sangue secondo le istruzioni del produttore. Mantenere tubo di raccolta di sangue a temperatura ambiente su un agitatore mecca....

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Risultati

Determinazione del numero di cellule NK
L'effetto della corsa pesante sul conteggio delle cellule NK nel sangue intero è stato misurato, utilizzando il protocollo di esercizio descritto nella Figura 2. I campioni di sangue sono stati elaborati prima dell'esercizio, immediatamente dopo l'esercizio, 1,5 ore dopo l'esercizio, e, infine, 24 e 48 ore dopo il prelievo di sangue iniziale. La concentrazione di cellule NK per millilitro di sangue intero è stato misurato per .......

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Discussione

Il metodo descritto in questo studio misura direttamente l'attività specifica di cellule NK di un individuo in risposta a stimoli (in questo caso particolare, esercizio prolungato). Tipicamente, le cellule NK sono isolati dal proprio sangue utilizzando gradienti di densità o di separazione delle cellule utilizzando una combinazione di marcatori. Mentre questi metodi sono ampiamente utilizzati, hanno molti svantaggi: sono in termini di tempo, coinvolgono più manipolazioni, e sono fortemente dipendenti dell'utente.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo progetto è stato supportato dalla sovvenzione competitiva dell'Agriculture and Food Research Initiative n. 2100-68003-30395 dell'USDA National Institute of Food and Agriculture.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Linfoblasti K-562ATCCCCL-243
Terreni di Dulbecco modificati di IscoveATCC30-2005Alto glucosio, con L-Glutammina, con HEPES, Alfa-filtrato
sterile Minimo Terreno essenzialeATCCCRL-2407Senza ribonucleosidi e desossiribonucleosidi ma con 2 mM di L-glutammina e 1,5 g/L di bicarbonato di sodio
Soluzione blu di tripano 0,4%AmrescoK940-100MLSoluzione
di colorazione con ioduro di propridioBD Pharmingen51-66211E
Soluzione di marcatura cellulare Vybranto DiOVybrantoV-22886
autoMACS Pro SeparatorMiltenyi Biotec130-092-545
autoMACS Running BufferMiltenyi Biotec130-091-221
autoMACS Tampone di lavaggioMiltenyi Biotec130-092-987
autoMACS ColonneMiltenyi Biotec130-021-101
Sangue intero CD56 MicroBeads, umanoMiltenyi Biotec130-090-875
ImageStream X Mark II Citometro a flusso per imagingEMD Millipore
SpeedbeadsAmnis Corporation400030
0,4-0,7% di ipoclorito (sterilizzatore)VWRJT9416-1
Coltro ClenzBeckman Coulter8546929
70% di isopropanolo (degorizzatore)EMD Millipore1.3704
D-PBS (fluido guaina)EMD MilliporeBSS-1006-B (1X)Senza calcio o magnesio
INSPIRE SoftwareEMD MilliporeVersione Mark II, settembre 2013
Ideas Software applicativoEMD MilliporeVersione 6.1, luglio 2014
per colture tissutali

Riferimenti

  1. Cerwenka, A., Lanier, L. L. Natural killer cells, viruses and cancer. Nat Rev Immunol. 1 (1), 41-49 (2001).
  2. Nieman, D. C. Exercise, infection, and immunity. Int J Sports Med. 15, Suppl 3 131-141 (1994).
  3. Romeo, J., Warnberg, J., Pozo, T., Marcos, A.

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Ristampe e permessi

Tag

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