Method Article

I neuroni di imaging all'interno di sezioni di cervello spesse Uso del metodo di Golgi-Cox

DOI:

10.3791/55358

April 18th, 2017

In This Article

Summary

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Presentiamo un protocollo secondo il metodo di colorazione Golgi-Cox in sezioni di cervello spesse, per visualizzare neuroni con lunghi alberi dendritiche contenuti in campioni di tessuto singoli. Due varianti di questo protocollo sono anche presentati che coinvolgono di contrasto viola cresile, e il congelamento dei cervelli non trasformati per la conservazione a lungo termine.

Abstract

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Il metodo di Golgi-Cox di neurone colorazione è stato impiegato per più di duecento anni per far progredire la nostra comprensione del neurone morfologia all'interno di campioni di cervello istologici. Mentre è preferibile dal punto di vista pratico per preparare sezioni di cervello del spessore maggiore possibile, al fine di aumentare la probabilità di identificare neuroni colorati che sono completamente contenuti all'interno delle singole sezioni, questo approccio è limitato dal punto di vista tecnico dalla distanza di lavoro di alta Ingrandimento obiettivi del microscopio. Riportiamo qui un protocollo per macchiare neuroni utilizzando il metodo Golgi-Cox in sezioni di cervello di topo che vengono tagliati a 500 spessore um, e visualizzare neuroni tutta la profondità di queste sezioni utilizzando un microscopio verticale dotato di alta risoluzione 30X 1,05 NA silicone obiettivo ad immersione in olio, che ha una distanza di lavoro di 800 micron. Si segnala inoltre due varianti utili di questo protocollo che può essere impiegato per colorazione di contrasto alla superficie dimontato sezioni di cervello con il violetto cresolo Nissl macchia, o di congelare cervelli interi per la conservazione a lungo termine prima di sezionamento e lavorazione finale. Il protocollo principale e le sue due varianti producono sezioni di cervello spesse colorate, durante il quale gli alberi pieni neurone e spine dendritiche dendritiche possono essere visualizzati in modo affidabile e quantificate.

Introduction

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La visualizzazione dei singoli neuroni all'interno di campioni di tessuto consente l'analisi in situ di Neuron caratteristiche morfologiche, che ha notevolmente avanzato la nostra comprensione del cervello e come può essere influenzata dalla malattia endogena o fattori ambientali esogeni. Il metodo di colorazione Golgi-Cox è una soluzione economica, mezzi relativamente semplici di colorando un campione casuale di neuroni nel cervello. Primo sviluppato da Golgi 1 e modificato da Cox 2 nel 1800, i ricercatori hanno ulteriormente perfezionato questa tecnica nel corso degli anni per produrre chiare neuroni,....

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Protocol

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topi CD1-deformazione adulte di sesso femminile sono stati utilizzati in questo studio. colorazione simile può essere realizzato utilizzando entrambi i sessi alle varie età. Animali da esperimento sono stati curati secondo i principi e le linee guida del Consiglio canadese cura degli animali, e il protocollo sperimentale è stato approvato dalla University of Animal Care Comitato Guelph.

1. Golgi-Cox colorazione

  1. Golgi-Cox impregnazione di Brains
    1. Rendere la soluzione Golgi-Cox di 1% (w / v) dicromato di potassio, 0,8% (w / v) cromato di potassio e 1% (w / v) di cloruro mercurico sciogliendo il bicromato ....

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Results

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Questo protocollo di colorazione Golgi-Cox e le sue due varianti descritte opzionali possono essere impiegati per visualizzare i singoli neuroni a 400 - 500 um di spessore sezioni del cervello. Rappresentativi montaggi di immagini bidimensionali Z-proiezioni catturate con un obiettivo 10X e 5 micron passi nell'asse Z sono mostrati in Figura 1: A1 - C1 per una grande area di sezioni di cervello coronali che include l'area corteccia anteriore cingolata 1 e la corteccia mot.......

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Discussion

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Descriviamo qui un protocollo di colorazione Golgi-Cox insieme a due varianti utili per la visualizzazione neuroni all'interno delle sezioni di cervello spesse. Come mostrato nelle Rappresentante dei risultati, l'uso di un obiettivo ad alta risoluzione che ha una lunga distanza di 800 micron di lavoro permette la visualizzazione affidabile di intere neuroni per tutta la profondità di sezioni di cervello tagliate a 500 micron. Questo studio di sezioni di cervello relativamente spessi aumenta la probabilità che i .......

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Disclosures

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Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Acknowledgements

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Questo lavoro è stato sostenuto da un Discovery Grant CDCB dalle scienze naturali e ingegneria Research Council del Canada (NSERC), un John R. Evans Leaders Fund infrastruttura di ricerca concessione di CDCB dal Canada Fondazione per l'innovazione (CFI numero di progetto 30381), e un Discovery Grant NJM da NSERC. ELL è stato sostenuto da una borsa di studio Ontario Laureato e da una borsa di studio OVC dalla Ontario Veterinary College presso l'Università di Guelph. CDS è stato supportato da una ricerca assistentato Undergraduate Student da NSERC. ALM è stato sostenuto da una borsa di studio Alexander Graham Bell da NSERC e da una borsa di studio OVC dalla Ont....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
bicromato di potassioFisher ScientificP188-100Cromato di potassio pericoloso
Fisher ScientificP220-100
Cloruro di mercurioFisher ScientificS25423Carta
da filtro Whatman grado 1Fisher Scientific1001-185
isofluranoPartner farmaceutici del Canada
fiala di scintillazione da 20 mLFisher Scientific03-337-4
saccarosioBioshop CanadaSUC700.1
fosfato di sodio monobasicoSigma AldrichS5011-500G
fosfato di sodio bibasicoSigma AldrichS9390-500G
provetta conica da 50 mLFisher Scientific12-565-271
isopentanoFisher ScientificAC126470010Conosciuto anche come 2-metilbutano; agar pericoloso
Sigma AldrichA1296-100G
piatto di pesatura piccoloFisher Scientific02-202-100
vibratomoLeicaVT1000 S Piastre
coltura tissutale a 6 pozzettiFisher Scientific08-772-1b
inserti per colture tissutali con fondo a reteFisher Scientific07-200-214
paraformadelide (PFA), 16%Microscopio elettronicoSciences 15710-S
Idrossido di ammonioFisher ScientificA669S-500
Pericoloso Kodak Fissativo ASigma AldrichP7542
superfrost plus vetriniFisher Scientific12-550-15
Agente di compensazione CitroSolvFisher Scientific22-143-975
alcol etilico anidroAlcoli commercialiN/A
cresil violaSigma AldrichC1791
permountFisher ScientificSP15-100
microscopio
verticale modello Olympus BX53telecamera a colori, 12 bitMBF BiosciencesDV-47dQImaging part 01-MBF-2000R-F-CLR-12
Tavolino per microscopio motorizzato 3D, controller ed enodersMBF BiosciencesN/AFornito e integrato con il microscopio da MBF Biosciences
Obiettivo per microscopio 4XOlympus4x 0.16 N.A. UplanSApo
10X obiettivo per microscopioOlympus10x 0.3 N.A. UPlan FL N 
Obiettivo per microscopio 30XOlympus30x 1.05 N.A. UPlanSApo 
Obiettivo per microscopio 60XOlympus60x 1.42 N.A. PlanAPO N
olio da immersione in siliconeOlympusZ-81114
Software NeurolucidaMBF BiosciencesVersione 10
Software ImageJU. S. National Institutes of HealthVersione correnteCon il plug-in OME Bio-Formats installato
SoftwarePhotoshopAdobeversione CS6
pericoloso pericolosa CP0406V2 per pericoloso

References

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  1. Golgi, C. Sulla struttura della sostanza grigia del cervello. Gazzetta Medica Italiana. Lombardia. 33, 244-246 (1873).
  2. Cox, W. H. Imprägnation des centralen Nervensystems mit Quecksilbersalzen. Archiv f. mikrosk. Anat. 37, 16-21 (1891).
  3. Zaqout, S., Kaindl, A. M. Golgi-Cox Staining Step by Step....

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Golgi Cox MethodNeuron StainingThick Brain SectionsSilicone Oil ImmersionCresyl Violet StainBrain SectioningVibratome SectioningImage Stack AcquisitionDendritic Tree VisualizationSpine Density Analysis

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