Questa procedura descrive come avviare rapidamente, estendere e collegare neuriti organizzati in camere microfluidiche utilizzando perline poli-D-lisina fissate a micropipette che guidano l'allungamento del neurite.
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Articolo metodologico
Questa procedura descrive come avviare rapidamente, estendere e collegare neuriti organizzati in camere microfluidiche utilizzando perline poli-D-lisina fissate a micropipette che guidano l'allungamento del neurite.
La lesione del cervello e del midollo spinale può portare a disabilità permanente e alla morte perché non è ancora possibile rigenerare i neuroni per lunghe distanze e ricollegarle con un bersaglio adeguato. Qui viene descritta una procedura per iniziare, allungare e collegare rapidamente nuovi circuiti neuronali funzionali a lunghe distanze. I tassi di estensione raggiunti raggiungono oltre 1,2 mm / h, 30-60 volte più velocemente rispetto ai tassi in vivo degli assoni in crescita più veloci del sistema nervoso periferico (0,02 a 0,04 mm / h) 28 e 10 volte più veloci di quanto riportato in precedenza per gli stessi Tipo neuronale in una fase precedente dello sviluppo 4 . In primo luogo, le popolazioni isolate di neuroni ippocampali del ratto vengono coltivate per 2-3 settimane in dispositivi microfluidici per posizionare le cellule in modo preciso, consentendo una facile micromanipolazione e una riproducibilità sperimentale. Successivamente, le perle ricoperte di poli-D-lisina (PDL) vengono poste sulle neurite per formare cont. AdesiveGli atti e la micromanipolazione pipettata vengono utilizzati per spostare il complesso bead-neurite risultante. Mentre il tallone viene spostato, estrae un nuovo neurite che può essere esteso su centinaia di micrometri e collegato funzionalmente a una cellula bersaglio in meno di 1 h. Questo processo consente la riproducibilità sperimentale e la facilità di manipolazione, escludendo strategie chimiche più lente per indurre la crescita del neurite. Le misure preliminari presentate qui dimostrano un tasso di crescita neuronale molto superiore a quelle fisiologiche. Combinando queste innovazioni permette la precisa creazione di reti neuronali nella cultura con un grado di controllo senza precedenti. È un metodo nuovo che apre la porta ad una pletora di informazioni e approfondimenti sulla trasmissione del segnale e sulla comunicazione all'interno della rete neuronale, nonché come un parco giochi in cui esplorare i limiti della crescita neuronale. Le potenziali applicazioni e gli esperimenti sono diffusi con implicazioni dirette per terapie che mirano a ricollegare la neuronaL circuiti dopo trauma o in malattie neurodegenerative.
Le lesioni al sistema nervoso centrale adulto (CNS) possono portare a disabilità permanente a causa di meccanismi multipli che limitano la ricrescita assonale 1 . Dopo l'infortunio, molti assoni CNS non formano un nuovo cono di crescita e non riescono a montare una risposta efficace rigenerativa 2 . Inoltre, i danni e il tessuto delle cicatrici che circondano lesioni del CNS inibiscono significativamente la crescita axonica 1 , 2 , 3 . Le terapie correnti per promuovere la rigenerazione del SNC dopo lesioni sono state focal....
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Tutte le procedure descritte di seguito sono state approvate dalla McGill University Animal Care Committee e sono conformi alle linee guida del Consiglio canadese di Animal Care.
1. Standardizzazione delle culture neuronali usando dispositivi microfluidici: Assemblaggio di apparecchiature
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I neuroni ippocampali del ratto embrionale vengono coltivati in dispositivi microfluidici per consentire un posizionamento preciso di cellule, PDL-perle e micromanipulatori. Il primo passo è quello di montare correttamente il dispositivo microfluidico su una copertura o un piatto di vetro. È essenziale che il dispositivo microfluidico sia ben attaccato al substrato per evitare che le cellule esca dalle camere e che si muovano sotto le parti del dispositivo che dovrebbero essere sigilla.......
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Grazie alla micromanipolazione standard e ai dispositivi innovativi microfluidici, è stata sviluppata una nuova tecnica per avviare, allungare e collegare rapidamente nuovi circuiti neuronali funzionali a grandi distanze. La micromanipolazione della pipetta è uno strumento comune nella maggior parte dei laboratori neuroscienze 4 , 13 . La vera sfida per ottenere risultati riproducibili e affidabili è stata la standardizzazione di culture neuronali sane e posizio.......
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L'autore Margaret H Magdesian è il CEO di Ananda Devices che produce gli strumenti utilizzati in questo articolo.
Vorremmo ringraziare Yoichi Miyahara per molte discussioni e approfondimenti utili. MA e PG riconoscono il finanziamento da NSERC.
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Dispositivi di co-coltura | Dispositivi Ananda Disponibili | in commercio presso http://www.anandadevices.com | |
| Neuro dispositivi Dispositivi | Disponibili in commercio presso http://www.anandadevices.com | ||
| n. 1 Vetrino coprioggetti rotondo da 25 mm | Warner Instruments | 64-0705 | |
| Piatti con fondo in vetro da 35 mm #0, non rivestiti, irradiati con raggi gamma | Incorporazione MatTex | P35G-0-20-C | |
| Piastra per colture cellulari da 35 mm, non pirogena, sterile | Corning Inc | 430165 | |
| Piastra Petri da 95 mm x 15 mm, coperchio scorrevole, polistirene sterile | Fisherbrand | FB0875714G | |
| Provette da centrifuga da 50 mL con graduazioni stampate e tappi piatti VWR | 89039-656 | ||
| Provetta conica in polipropilene da 15 mL, modello 17 x 120 mm, non pirogena, falco sterile | |||
| Neurobasal Medium | Life Technologies | 21103-049 | Soluzione extracellulare |
| Integratore B-27 (50X), | Integratore B-27 senza siero (50X), 17504044 senza siero | Soluzione extracellulare | |
| Pennicilina, Streptomiozina, Glutammina | Thermo Fisher Scientific | 11995-065 | Soluzione extracellulare |
| 200 μ L Pipettatori | VWR | 89079-458 | |
| 2 - 20 μ L Pipettors | Puntali resistenti agli aerosol | 2149P | |
| BD Falcon 3mL Pipette di trasferimento [Non sterili] | BD Falcon | 357524 | |
| Glucosio | Gibco | 15023-021 | Soluzione extracellulare |
| HEPES | Sigma | 7365-45-9 | Soluzione extracellulare/Perline |
| NaCl | Sigma-Aldrich | 7647-14-5 | Soluzione |
| extracellulareKCl | Sigma-Aldrich | 7447-40-7 | Soluzione extracellulare |
| CaCl2 | Sigma-Aldrich | 10043-52-4 | Soluzione extracellulare |
| MgCl2 | Sigma-Aldrich | 7786-30-3 | Soluzione extracellulare |
| #5 Dumont Dumostar Pinzette 11 cm | World Precision Instruments | 500233 | |
| Strumenti di dissezione | Braun, Aesculap | ||
| Po-D-lisina bromidrato | Sigma-Aldrich | P6407 | |
| Micro particelle a base di polistirene, 10 μ m | Sigma-Aldrich | 72986 | |
| Tubi in borosilicato | King Precision Glass, Inc. | 14696-2 | |
| Estrattore di pipette orizzontale | Sutter Instruments | P-97 | |
| , serie PCS-5000 | SD Instruments | MC7600R | |
| Siringa da 1 mL | BD Luer-Lok | 309628 | |
| Microscopio invertito | Olympus | IX71 | |
| Obiettivo | Olympus | UIS2, LUCPLFLN 40X | |
| CCD | Camera Photometrics | Cascade II: 512 | |
| Leibovitz's (1x) L-15 Medium | Life Technologies | 11415-064 | Dissezione di ratto |
| Typsin-EDTA (0,05%), Phenol red | Life Technologies | 25300054 | Dissezione |
| di rattoDMEM (1x) Dulbecco's Modified Eagle Medium [+4,5 g/L D-glucosio, + L-glutammina, + 110 mg/L di piruvato di sodio] | Life Technologies | 11995-065 | Dissezione di ratto |
| HBSS (1x) Soluzione salina bilanciata di Hank [- Cloruro di calcio, - Cloruro di magnesio, - Solfato | Life Technologies | 14170-112 | Dissezione di ratto |
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