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Articolo metodologico

Circuiti neuronali riavvolgenti: un nuovo metodo per l'estensione veloce del neurite e la connessione neuronale funzionale

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DOI:

10.3791/55697

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13 giugno 2017

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In questo articolo

Sommario

Questa procedura descrive come avviare rapidamente, estendere e collegare neuriti organizzati in camere microfluidiche utilizzando perline poli-D-lisina fissate a micropipette che guidano l'allungamento del neurite.

Abstract

La lesione del cervello e del midollo spinale può portare a disabilità permanente e alla morte perché non è ancora possibile rigenerare i neuroni per lunghe distanze e ricollegarle con un bersaglio adeguato. Qui viene descritta una procedura per iniziare, allungare e collegare rapidamente nuovi circuiti neuronali funzionali a lunghe distanze. I tassi di estensione raggiunti raggiungono oltre 1,2 mm / h, 30-60 volte più velocemente rispetto ai tassi in vivo degli assoni in crescita più veloci del sistema nervoso periferico (0,02 a 0,04 mm / h) 28 e 10 volte più veloci di quanto riportato in precedenza per gli stessi Tipo neuronale in una fase precedente dello sviluppo 4 . In primo luogo, le popolazioni isolate di neuroni ippocampali del ratto vengono coltivate per 2-3 settimane in dispositivi microfluidici per posizionare le cellule in modo preciso, consentendo una facile micromanipolazione e una riproducibilità sperimentale. Successivamente, le perle ricoperte di poli-D-lisina (PDL) vengono poste sulle neurite per formare cont. AdesiveGli atti e la micromanipolazione pipettata vengono utilizzati per spostare il complesso bead-neurite risultante. Mentre il tallone viene spostato, estrae un nuovo neurite che può essere esteso su centinaia di micrometri e collegato funzionalmente a una cellula bersaglio in meno di 1 h. Questo processo consente la riproducibilità sperimentale e la facilità di manipolazione, escludendo strategie chimiche più lente per indurre la crescita del neurite. Le misure preliminari presentate qui dimostrano un tasso di crescita neuronale molto superiore a quelle fisiologiche. Combinando queste innovazioni permette la precisa creazione di reti neuronali nella cultura con un grado di controllo senza precedenti. È un metodo nuovo che apre la porta ad una pletora di informazioni e approfondimenti sulla trasmissione del segnale e sulla comunicazione all'interno della rete neuronale, nonché come un parco giochi in cui esplorare i limiti della crescita neuronale. Le potenziali applicazioni e gli esperimenti sono diffusi con implicazioni dirette per terapie che mirano a ricollegare la neuronaL circuiti dopo trauma o in malattie neurodegenerative.

Introduzione

Le lesioni al sistema nervoso centrale adulto (CNS) possono portare a disabilità permanente a causa di meccanismi multipli che limitano la ricrescita assonale 1 . Dopo l'infortunio, molti assoni CNS non formano un nuovo cono di crescita e non riescono a montare una risposta efficace rigenerativa 2 . Inoltre, i danni e il tessuto delle cicatrici che circondano lesioni del CNS inibiscono significativamente la crescita axonica 1 , 2 , 3 . Le terapie correnti per promuovere la rigenerazione del SNC dopo lesioni sono state focal....

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Protocollo

Tutte le procedure descritte di seguito sono state approvate dalla McGill University Animal Care Committee e sono conformi alle linee guida del Consiglio canadese di Animal Care.

1. Standardizzazione delle culture neuronali usando dispositivi microfluidici: Assemblaggio di apparecchiature

  1. Selezionare un dispositivo microfluidico adatto per l'esperimento desiderato. Per collegare i neuroni all'interno della stessa popolazione, utilizzare i Neuro Devices ( Figura 1 ) e collegare i neuroni in diverse popolazioni usa i dispositivi Co-Cultura ( Figura 6 ).
  2. ....

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Risultati

I neuroni ippocampali del ratto embrionale vengono coltivati ​​in dispositivi microfluidici per consentire un posizionamento preciso di cellule, PDL-perle e micromanipulatori. Il primo passo è quello di montare correttamente il dispositivo microfluidico su una copertura o un piatto di vetro. È essenziale che il dispositivo microfluidico sia ben attaccato al substrato per evitare che le cellule esca dalle camere e che si muovano sotto le parti del dispositivo che dovrebbero essere sigilla.......

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Discussione

Grazie alla micromanipolazione standard e ai dispositivi innovativi microfluidici, è stata sviluppata una nuova tecnica per avviare, allungare e collegare rapidamente nuovi circuiti neuronali funzionali a grandi distanze. La micromanipolazione della pipetta è uno strumento comune nella maggior parte dei laboratori neuroscienze 4 , 13 . La vera sfida per ottenere risultati riproducibili e affidabili è stata la standardizzazione di culture neuronali sane e posizio.......

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Dichiarazioni

L'autore Margaret H Magdesian è il CEO di Ananda Devices che produce gli strumenti utilizzati in questo articolo.

Ringraziamenti

Vorremmo ringraziare Yoichi Miyahara per molte discussioni e approfondimenti utili. MA e PG riconoscono il finanziamento da NSERC.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Dispositivi di co-colturaDispositivi Ananda Disponibiliin commercio presso http://www.anandadevices.com
Neuro dispositivi DispositiviDisponibili in commercio presso http://www.anandadevices.com
n. 1 Vetrino coprioggetti rotondo da 25 mmWarner Instruments64-0705
Piatti con fondo in vetro da 35 mm #0, non rivestiti, irradiati con raggi gammaIncorporazione MatTexP35G-0-20-C
Piastra per colture cellulari da 35 mm, non pirogena, sterileCorning Inc430165
Piastra Petri da 95 mm x 15 mm, coperchio scorrevole, polistirene sterileFisherbrandFB0875714G
Provette da centrifuga da 50 mL con graduazioni stampate e tappi piatti VWR89039-656
Provetta conica in polipropilene da 15 mL, modello 17 x 120 mm, non pirogena, falco sterile
Neurobasal MediumLife Technologies21103-049Soluzione extracellulare
Integratore B-27 (50X),Integratore B-27 senza siero (50X), 17504044 senza sieroSoluzione extracellulare
Pennicilina, Streptomiozina, GlutamminaThermo Fisher Scientific 11995-065Soluzione extracellulare
200 μ L PipettatoriVWR89079-458
2 - 20 μ L PipettorsPuntali resistenti agli aerosol2149P
BD Falcon 3mL Pipette di trasferimento [Non sterili]BD Falcon357524
GlucosioGibco15023-021Soluzione extracellulare
HEPESSigma7365-45-9Soluzione extracellulare/Perline
NaClSigma-Aldrich7647-14-5Soluzione
extracellulareKClSigma-Aldrich7447-40-7Soluzione extracellulare
CaCl2Sigma-Aldrich10043-52-4Soluzione extracellulare
MgCl2Sigma-Aldrich7786-30-3Soluzione extracellulare
#5 Dumont Dumostar Pinzette 11 cmWorld Precision Instruments500233
Strumenti di dissezioneBraun, Aesculap
Po-D-lisina bromidratoSigma-AldrichP6407
Micro particelle a base di polistirene, 10 μ mSigma-Aldrich72986
Tubi in borosilicatoKing Precision Glass, Inc.14696-2
Estrattore di pipette orizzontaleSutter InstrumentsP-97
, serie PCS-5000SD InstrumentsMC7600R
Siringa da 1 mLBD Luer-Lok309628
Microscopio invertitoOlympus IX71
ObiettivoOlympusUIS2, LUCPLFLN 40X
CCDCamera PhotometricsCascade II: 512
Leibovitz's (1x) L-15 MediumLife Technologies11415-064Dissezione di ratto
Typsin-EDTA (0,05%), Phenol redLife Technologies25300054Dissezione
di rattoDMEM (1x) Dulbecco's Modified Eagle Medium [+4,5 g/L D-glucosio, + L-glutammina, + 110 mg/L di piruvato di sodio]Life Technologies11995-065Dissezione di ratto
HBSS (1x) Soluzione salina bilanciata di Hank [- Cloruro di calcio, - Cloruro di magnesio, - SolfatoLife Technologies14170-112Dissezione di ratto
Ananda 352097 Micromanipolatori Brown-Flaming di magnesio]

Riferimenti

  1. Chew, D. J., Fawcett, J. W., Andrews, M. R. The challenges of long-distance axon regeneration in the injured CNS. Prog. Brain. Res. 201, 253-294 (2012).
  2. Bradke, F., Fawcett, J. W., Spira, M. E. Assembly of a new growth cone after axotomy: the precursor to ax....

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Ristampe e permessi

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