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Articolo metodologico

Esame ecocardiografico ed istologico della morfologia cardiaca nel topo

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DOI:

10.3791/55843

26 ottobre 2017

In questo articolo

Sommario

L'esame ecocardiografico è frequente nei topi. Sono stati sviluppati dispositivi costosi ultrasuono ad alta definizione per questo scopo. Questo protocollo descrive una procedura ecocardiografica conveniente combinata con analisi morfometriche istologico per determinare la morfologia cardiaca.

Abstract

Un numero crescente di modelli murini geneticamente modificati è diventato disponibile negli ultimi anni. Inoltre, il numero di studi farmacologici effettuati nei topi è alto. Caratterizzazione fenotipica di questi modelli del mouse richiede anche l'esame della morfologia e funzione cardiaca. L'ecocardiografia e la formazione immagine a risonanza magnetica (MRI) sono comunemente utilizzati approcci per caratterizzare la funzione cardiaca e morfologia nei topi. Apparecchiatura ecocardiografica e MRI specializzati per l'uso in piccoli roditori è costoso e richiede uno spazio dedicato. Questo protocollo descrive misure cardiache nei topi usando un sistema ecocardiografico clinico con una sonda vascolare umano 15 MHz. Misurazioni eseguite su topi adulti anestetizzati. Almeno tre sequenze di immagini sono registrati e analizzati per ogni animale in M-mode nella visualizzazione parasternale asse corto. In seguito, viene eseguito l'esame istologico cardiaco e del cardiomyocyte diametri sono determinati su ematossilina-eosina - o germe di grano dell'agglutinina (WGA)-paraffina sezioni macchiate. La densità del vaso è determinato morfometrico dopo Pecam-1 immunostaining. Il protocollo è stati applicati con successo agli studi farmacologici e diversi modelli animali genetici sotto condizioni di base, così come dopo infarto miocardico sperimentale di legatura permanente del (dell'arteria coronaria discendente anteriore sinistra LAD). Nella nostra esperienza, indagine ecocardiografica è limitata agli animali anestetizzati ed è fattibile in topi adulti peso corporeo di almeno 25 g.

Introduzione

Una grande varietà di modelli murini geneticamente modificati sono disponibili e il numero di studi farmacologici nei topi è alta1,2. Ecocardiografia e MRI sono gli approcci comunemente utilizzati per la caratterizzazione fenotipica della funzione cardiaca e la morfologia in questi modelli del mouse3. L'obiettivo del protocollo presentato è quello di analizzare la funzione cardiaca e morfologia in topi adulti. Combina ecocardiografica, istologiche e immunohistochemical misurazioni. L'esame ecocardiografico è ampiamente usato in topi4,....

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Protocollo

gli esperimenti descritti qui sono stati effettuati in conformità con le leggi pertinenti istituzionale e francese sul benessere degli animali, linee guida e criteri. Essi sono stati approvati dal comitato etico francese (Comité Institutionnel d ' Ethique Pour il ' animale de Laboratoire; numero NCE/2012-106).

1. ecocardiografia

  1. determinare il peso del corpo del mouse usando una bilancia di laboratorio standard, tenendola leggermente dalla coda per assicurare il posizionamento corretto.
  2. Anestetizzare l'animale tramite l'iniezione intraperitoneale (i.p.) di 50 mg/kg pentobarbital 25

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Risultati

Nella Figura 1, rappresentante registrazioni ecocardiografiche dimostrano l'utilità di ecocardiografia per identificare fenotipi cardiaci in topi geneticamente modificati. La differenza tra un mouse con la normale funzione cardiaca (Figura 1A) e un animale con un ventricolo di sinistra dilatato e ridotta funzione di LV (Figura 1B) possa essere facilmente identificata. Figura 2

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Discussione

Sono stati sviluppati diversi metodi per valutare la struttura cardiaca e funzione in topi, tra cui l'ecocardiografia, MRI contrapporre-aumentato, micro CT e scansione PET. Grazie alla sua economicità e semplicità, l'ecocardiografia è la tecnica più ampiamente usata per l'analisi funzionale in topi11. In generale, a causa delle piccole dimensioni del cuore e l'alta frequenza della frequenza cardiaca nei topi, trasduttori con una frequenza > MHz 10 dovrebbe essere usato, anche se misure di succ.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Il lavoro è stato sostenuto dal governo francese (National Research Agency, ANR) attraverso il programma "Investimenti per il futuro" LABEX SIGNALIFE (riferimento ANR-11-LABX-0028-01) e da sovvenzioni a K. d. W. dalla Association pour la Recherche sur le Cancer, Fondation de France e pianificare l'Inserm di cancro. D. B. e V. a. ricevuto borse di studio dalla Fondation pour la Recherche Médicale e dalla città di Nizza, rispettivamente. L'ecocardiografo e il trasduttore sono state gentilmente fornite da Philips. Ringraziamo la Borderie r., S. Destree, M. Cutajar-Bossert, r. Landouar, r. Martres, r. Biancardini e S. M. Wagner per la loro assistenza di tecnico qualificat....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Agglutinina del germe di grano (WGA) tetrametilrodamina coniugataLife Technologies, Sonde molecolariW849
Capra biotinilata Anticorpo IgG di coniglioVectorlabsBA-1000
Kit di blocco avidina/biotinaVectorlabsSP-2001
VECTASTAIN Elite ABC HRP Kit (perossidasi, standard)VectorlabsPK-6100
Mezzo di montaggio antisbiadimento VECTASHIELD con DAPIVectorlabsH-1200
SIGMAFAST 3,3'-DiaminobenzidinaSigmaD4168
Soluzione di perossido di idrogenoSigmaH1009
Anticorpo anti-Pecam-1 (CD31)Abcamab28364
Gel per trasmissione degli ultrasuoni, Gel Aquasonic 100Parker
Sonda ecografica lineare, ecocardiografoPhilips Healthcare
Philips HealthcareIE33 xMATRIX
LeicaDMi8
per11525304TDAPI
Leica11525310TxR
, SPOT RT3 Color SliderSpot Software di imaging
, software avanzato e di base SPOT 5.2spot
Imaging Forbici
Forbici grandiStrumenti per la scienza14501-14
Lame per bisturiStrumenti per la scienza10023-00
Graefe ForcipeFine Science Tools11650-10
Rasoio per roditoriHarvard Apparatus34-0243
cassette per inclusione di paraffinaSakura4155F
neutro tamponato FormalinaSakura8727
XileneSakura8733
Paraffine TEK IIISakura4511
apparecchio automatizzato per inclusione, Tissue-Tek VIPSakura6032
Tissue-Tek TEC 5Sakura5229
Accu-Edge S35Sakura4685
Tissue-TekSakura9533
, Tissue-TekSakura9582
Terreno di montaggio: Tissue-TekSakura1408
scatole per vetriniSakura3958
soluzione di eosinaSakura8703
soluzione di ematossilinaSakura8711
microtomo RM2125RTLeica720-1880 (VWR
bagno d'acqua Leica HI1210,Leica720-0113(VWR)
EtanoloVWRACRO444220050
provette da 15 mlVWR734-0451
Vaschetta di vetro coloranteVWRMARI4220004
VWMARI4200005R
IncubatorBinder9010-0012
Compresse di perossido di idrogeno DAB e urea, SIGMAFAST 3,3′-Diaminobenzidinacompresse SigmaD4293
PBS (10X)Thermo Fisher Scientific70011044
compresse L15-7io, microscopio , set di filtri per fluorescenza DAPI, set di filtri LeicaFotocamera digitale Computer di imaging fini Dell Strumenti per la scienza 14028-10 stazione per inclusione in paraffina, lame per microtomo , vetrini per microscopia , vetrini coprioggetti , , , , , , , ),

Riferimenti

  1. Ormandy, E. H., Dale, J., Griffin, G. Genetic engineering of animals: ethical issues, including welfare concerns. Can Vet J. 52 (5), 544-550 (2011).
  2. Karl, T., Pabst, R., von Hörsten, S. Behavioral phenotyping of mice in pharmacological and toxicological resear....

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Ristampe e permessi

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