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Articolo metodologico

Salvataggio e caratterizzazione del virus ricombinante da un nuovo mondo Clone infettivo del virus Zika

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DOI:

10.3791/55857

7 giugno 2017

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive il recupero del virus infettivo da Zika da un clone infetto cDNA a due plasmide.

Abstract

I cloni infetti cDNA consentono la manipolazione genetica di un virus, facilitando così il lavoro sui vaccini, la patogenesi, la replicazione, la trasmissione e l'evoluzione virale. Qui descriviamo la costruzione di un clone infettivo per il virus Zika (ZIKV), che attualmente sta causando uno scoppio esplosivo nelle Americhe. Per evitare la tossicità per i batteri che è comunemente osservato con i plasmidi derivati ​​da flavivirus, abbiamo generato un sistema a due plasmidi che separa il genoma al gene NS1 ed è più stabile di quelli a piena lunghezza che non possono essere recuperati con successo senza mutazioni. Dopo la digestione e la legatura per unire i due frammenti, l'RNA virale a piena lunghezza può essere generato mediante trascrizione in vitro con T7 RNA polimerasi. Dopo l'elettroporazione di RNA trascritto nelle cellule, è stato recuperato il virus che ha mostrato simili cinetica di crescita in vitro e fenotipi di virulenza e infezione in vivo nei topi e nelle zanzare rispettivamente.

Introduzione

Il virus Zika (ZIKV; Family Flaviviridae : Genus Flavivirus ) è un flavivirus dalle zanzare che è arrivato in Brasile nel 2013-14 ed è stato successivamente associato ad un massiccio focolaio di malattia febbrile che si è diffuso in tutte le Americhe 1 . Inoltre, ZIKV è stato collegato a gravi conseguenze della malattia, come la sindrome di Guillain-Barré negli adulti e la microcefalia nei feti e nei neonati 2 . Poco noto su ZIKV prima della sua diffusione rapida nell'emisfero occidentale. Ciò comprendeva la mancanza di strumenti molecolari, ostacolando così la ricerca meccanicistica. Gli ....

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Protocollo

1. Trasformazione e recupero dei plasmidi di cloni infettivi

  1. Trasformare entrambi i plasmidi (separatamente) utilizzando un protocollo di trasformazione commerciale ( ad esempio , NEB 5 Minute Transformation Protocol) con alcune modifiche. Entrambi i plasmidi contengono un gene che codifica per la resistenza all'ampicillina, quindi utilizzare ampicillina o carbenicillina per la selezione. La carbenicillina è preferita, in quanto è più stabile.
    1. Rimuovere le celle (vedere tabella dei materiali) da congelatore da -80 ° C e scongelare su ghiaccio per 5-10 min. Brodo Lysogeny (LB) (contenente 10 g / L NaCl e 25 μg / mL car....

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Risultati

Il protocollo qui descritto consente di recuperare il virus Zika derivato dal clone infettivo. La manipolazione del sistema clone infettiva a due plasmidi è semplice quando viene eseguita con cura, rispetto alle versioni a piena lunghezza che sono altamente instabili (dati non mostrati). Dopo la digestione e la legatura dei due pezzi distinti, il RNA ricoperto viene prodotto usando la trascrizione in vitro con la T7 polimerasi, che viene poi elettroporato in cellule Ver.......

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Discussione

Qui descriviamo un metodo per il recupero di un sistema di clone bipartito di cDNA infettivo per ZIKV. I cloni precedentemente descritti per ZIKV soffrono di attenuazione o richiedono l'aggiunta di introni, rendendo i plasmidi più grandi e impedendo il salvataggio nelle cellule degli insetti. Il virus infettivo può essere recuperato utilizzando il sistema di clonazione a due plasmidi in cellule di mammifero o di insetto (dati non mostrati). Inoltre, il virus recuperato da questo sistema si comporta in modo simile al viru.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno niente da rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori vorrebbero ringraziare Kristen Bullard-Feibelman, Milena Veselinovic e Claudia Rückert per la loro assistenza nella caratterizzazione del virus derivato dal clone. Questo lavoro è stato sostenuto in parte da sovvenzioni dell'Istituto Nazionale di Allergia e Malattie Infettive, NIH con sovvenzioni AI114675 (BJG) e AI067380 (GDE).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
NEB Stable CompetentE. coliNew England BioLabsC3040H
Carbenicillina, sale disodicovari
Zyppy Plasmid Miniprep KitZymo ResearchD4036
ZymoPURE Plasmid Maxiprep KitZymo ResearchD4202
SalI-HFNew England BioLabsR3138S20.000 unità/ml
NheI-HFNew England BioLabsR3131S20.000 unità/ml
ApaLINew England BioLabsR0507S10.000 unità/ml
EcoRI-HFNew England BioLabsR3101S20.000 unità/ml
BamHI-HFNew England BioLabsR3136S20.000 unità/ml
HindIII-HFNew England BioLabsR3104S20.000 unità/ml
illustra Kit di amplificazione TempliPhi 100GE Healthcare Life Sciences25640010
NucleoSpin Gel e PCR Clean-upMacherey-Nagel740609.5
Fosfatasi alcalina per gamberetti (rSAP)New England BioLabsM0371S1.000 unità/ml
Fosfatasi alcalina, intestinale di vitello (CIP)New England BioLabsM0290S10.000 unità/ml
DNA T4 LigasiNew England BioLabsM0202S400.000 unità/mL
Kit mRNA HiScribe T7 ARCANew England BioLabsE2065S
Vero cellsATCCCCL-81
ECM 630 Sistema di elettroporazione ad alta produttivitàBTX45-0423Sono accettabili altre macchine.
LB Brodo con agar (Miller)SigmaL3147Può essere fatto in casa pure.
Il fantastico brodoSigmaT0918può essere fatto in casa pure.
Petri DishCelltreat229693
Provette per colturaVWR International60818-576
Palloni T75Celltreat229340
Palloni T182Celltreat229350
1x PBSCorning21-040-CV
RPMI 1640 con L-glutamminaCorning10-040-CV
DMEM con L-glutammina e 4,5 g/L di glucosioCorning10-017-CV
Siero fetale bovino (FBS)Atlas BiologicalsFP-0500-A
Polvere di adraganteMP BioMP 104792
Crystal VioletAmresco0528-1006
Etanolo denaturatoVWR InternationalBDH1156-1LP
Piastraa 6 pozzettiCelltreat229106
piastra a 12 pozzettiCelltreat229111
Sequenziamento OligosIDTvedi tabella 1
Qubit 3.0ThermoFisherQubit 3.0altri metodi sono accettabili.
Kit di analisi Qubit dsDNA BRThermoFisherQ32850altri metodi sono accettabili.
Kit di analisi Qubit RNA HSThermoFisherQ32852altri metodi sono accettabili.
La cabina di biosicurezza di classe IIvariaN/AQuesto è necessario per il lavoro con virus vivi.

Riferimenti

  1. Kindhauser, M. K., Allen, T., Frank, V., Santhana, R. S., Dye, C. Zika: the origin and spread of a mosquito-borne virus. Bull World Health Organ. 94 (9), 675C-686C (2016).
  2. Oehler, E., et al. Zika virus infection complicated by Guill....

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Ristampe e permessi

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Sistema a due plasmiditrascrizione di RNA viralerecupero post elettroporazionecellule Verosaggio delle placchecinetica di crescitainfezione del topotrasmissione tramite zanzara