Method Article

Applicazione di morsetto di patch automatico guidato per immagini per lo studio dei neuroni in fettine di cervello

DOI:

10.3791/56010

July 31st, 2017

In This Article

Summary

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Questo protocollo descrive come effettuare esperimenti automatici con patch-cluster guidati dall'immagine utilizzando un sistema recentemente sviluppato per apparecchiature elettrofisiologiche standard in vitro .

Abstract

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Il morsetto di patch a cellule intere è il metodo standard gold per misurare le proprietà elettriche delle singole cellule. Tuttavia, il morsetto di patch in vitro rimane una tecnica impegnativa e di bassa produttività grazie alla sua complessità e all'alta dipendenza dal funzionamento e dal controllo da parte degli utenti. Questo manoscritto dimostra un sistema di bloccaggio automatico delle patch per le esperienze di morsetti di patch a cellule in vitro in fette acute del cervello. Il nostro sistema implementa un algoritmo basato su visione informatica per rilevare le celle con etichette fluorescenti e per indirizzarle per la patch completamente automatica usando un micromanipulator e un controllo interno della pressione della pipetta. L'intero processo è altamente automatizzato, con requisiti minimi per l'intervento umano. Le informazioni sperimentali in tempo reale, tra cui la resistenza elettrica e la pressione interna della pipetta, sono documentate elettronicamente per analisi futura e per ottimizzazione a diversi tipi di cellule. Anche se il nostro sistema è descritto nel contesto di brai acutiN può essere applicato anche alla messa a punto automatizzata di patch di neuroni dissociati, culture di fetta organotipica e altri tipi di cellule non neuronali.

Introduction

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La tecnica della pinzetta patch è stata sviluppata da Neher e Sakmann negli anni '70 per studiare i canali ionici delle membrane eccitabili 1 . Da allora, il bloccaggio della patch è stato applicato allo studio di molti soggetti diversi a livello cellulare, sinaptico e a livello di circuito sia in vitro che in vivo, in diversi tipi di cellule, inclusi neuroni, cardiomiociti, oociti Xenopus e liposomi artificiali 2 . Questo processo prevede la corretta identificazione e il targeting di una cella di interesse, il controllo di micromanipulatore intricato per spostare la pipetta patch in prossimità del....

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Protocol

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1. Impostazione del sistema

  1. Costruire l'unità di controllo della pressione.
    1. Montare l'unità di controllo della pressione in base alla mappa del circuito ( Figura 1 ). Saldare le parti necessarie sul circuito stampato (PCB) realizzato secondo gli schemi dei circuiti elettrici ( figura 1b ). Utilizzare resistori standard, LED, transistori campo-effetto (Semiconductor Metal-Oxide Semiconductor), condensatori e connettori (vedi tabella dei materiali ). Le elettrovalvole a saldare sul PCB. Collegare il sensore della pompa dell'aria e della pressione dell'aria a....

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Results

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Il nostro sistema è stato testato sulla sua capacità di patch delle cellule in fette cerebrali acute, cellule staminali pluripotenti indotte da mouse (iPSCs) differenziate in neuroni e cellule HEK 293 artificialmente esprimendo canali di interesse. La Figura 3 mostra un esperimento che usa i topi transgenici Thy1-ChR2-YFP (B6.Cg-Tg (Thy1-COP4 / EYFP) 18Gfng / J) targeting neuroni piramidali strati 5 fluorescenti etichettati nella corteccia visiva. La cellula.......

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Discussion

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Qui descriviamo un metodo per le registrazioni automatiche delle morsetti di patch guidate dall'immagine in vitro . I passi chiave di questo processo sono riepilogati come segue. Innanzitutto, la visione informatica viene utilizzata per riconoscere automaticamente la punta della pipetta usando una serie di immagini acquisite tramite un microscopio. Queste informazioni vengono poi utilizzate per calcolare la funzione di trasformazione delle coordinate tra il microscopio ei sistemi di coordinate del manipolat.......

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Disclosures

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Una domanda di brevetto non provvisorio "SISTEMI E METODI PER L'ELETTROFISIOLOGIA DI PATCH CLIP ELETROFISIOLOGICO AUTOMATICO GUIDATA IN VITRO", US N ° di serie: 15 / 353,719, è stata depositata il 16 novembre 2016, rif. N. PRF 67270-02.

Acknowledgements

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Siamo grati per il sostegno finanziario della Fondazione Whitehall. Vorremmo ringraziare Samuel T. Kissinger per i preziosi commenti.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
TelecameraCCD QImagingRolera Bolt
Impianto di elettrofisiologiaScientificaSliceScope Pro 2000Include microscopio e manipolatori. Il software di controllo del manipolatore fornito dal produttore dimostrato in questo manoscritto è " Linlab2".
AmplificatoreMolecular DevicesMultiClamp 700BAmplificatore per microelettrodi controllato da computer
DigitalizzatoreMolecular DevicesSorgente luminosa LED Axon Digidata 1550
Cool LEDpE-100lunghezza d'onda di 488 nm
Scheda di acquisizione datiCalcolo di misuraUSB1208-FSDAQ.
Vedere il manuale all'indirizzo: http://www.mccdaq.com/pdfs/manuals/USB-1208FS.pdf
ElettrovalvoleThe Lee Co.
Pompa dell'ariaIndustria virtualeVMP1625MX-12-90-CH
Sensore di pressione dell'ariaSemiconduttore FreescaleMPXV7025G
Slice hold-down Warnerinstruments64-1415 (SHD-40/2)Kit di ancoraggio Slice, piatto per camera RC-40, 2,0 mm, 19,7 mm
PythonAnacondaversione 2.7 (32 bit per Windows)
Morsetti a viteSparkfunPRT - 08084Terminali a vite passo 3,5 mm (2 pin)
(2 pin)
MOSFET a canale N 60 V 30 ASparkfunCOM - 10213
Prese DIP Coda a saldare - 8 pinSparkfunPRT-07937
LED - Base Rosso 5 mmSparkfunCOM-09590
LED - Verde di base 5mmSparkfunCOM-09592
/ connettore di alimentazione cilindrico CC (SMD)SparkfunPRT-12748
Alimentatore adattatore da parete - 12 V CC 600 mASparkfunTOL-09442
Cavo di collegamento - Assortimento (nucleo solido, 22 AWG)SparkfunPRT-11367
Rubinetto di bloccaggio maschio x femmina x femminaARK-PLASRCX10-GP0
Fisherbrand Tygon S3 E-3603 Tubi flessibiliFisher scientific14-171-129Diametro esterno: 1/8
Diametro interno: 1/16 in.
Cavo coassiale BNC maschio a BNC maschioBelkin ComponentsF3K101-06-E
Resistenza da 560 Ohm (tolleranza del 5%)Radioshack2711116
Picospritzer ValvolageneralePicospritzer II
LHDA0531115H https://www.continuum.io/downloads Jack

References

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  1. Sakmann, B., Neher, E. Patch clamp techniques for studying ionic channels in excitable membranes. Annu Rev Physiol. 46, 455-472 (1984).
  2. Collins, M. D., Gordon, S. E. Giant liposome preparation for imaging and patch-clamp electrophysiology. J Vis Exp. (76), ....

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Automated Patch ClampImage Guided Patch ClampWhole Cell Patch ClampAcute Brain SlicesComputer Vision AlgorithmFluorescent Cell DetectionMicromanipulator ControlInternal Pipette PressureElectrical Resistance MonitoringGigaseal Formation

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