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Articolo metodologico

AFM e Microrheology nella cella tuorlo embrione di pesce zebra

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DOI:

10.3791/56224

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29 novembre 2017

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In questo articolo

Sommario

La mancanza di strumenti per misurare le proprietà dei materiali e parametri tensionale in vivo impedisce la convalida loro ruoli durante lo sviluppo. Abbiamo impiegato la microscopia a forza atomica (AFM) e rilevamento delle nanoparticelle di quantificare caratteristiche meccaniche sulla cella tuorlo intatto zebrafish embrione durante epiboly. Questi metodi sono affidabili e ampiamente applicabile evitando interventi intrusivi.

Abstract

Chiarire i fattori che dirigono l'organizzazione spazio-temporale dell'evoluzione tessuti è uno degli scopi principali nello studio dello sviluppo. Varie proposte sostengono di essere stati importanti contributi alla comprensione delle proprietà meccaniche delle cellule e dei tessuti nella loro organizzazione spazio-temporale in diversi processi morfogenetici e di sviluppo. Tuttavia, a causa della mancanza di strumenti affidabili e accessibili per misurare le proprietà dei materiali e parametri tensionale in vivo, convalida di queste ipotesi è stata difficile. Qui presentiamo metodi che impiegano la microscopia a forza atomica (AFM) e particle tracking con l'obiettivo di quantificare le proprietà meccaniche della cella tuorlo intatto zebrafish embrione durante epiboly. Epiboly è un processo inerente allo sviluppo conservato precoce cui studio è facilitata dalla trasparenza dell'embrione. Questi metodi sono ampiamente applicabili, affidabile e semplice da implementare poiché essi superare gli interventi intrusivi che potrebbero influire sulla meccanica del tessuto. È stata applicata una strategia semplice per il montaggio di campioni, registrazione di AFM e iniezioni di nanoparticelle e il rilevamento. Questo approccio rende questi metodi facilmente adattabile ad altre volte inerente allo sviluppo o organismi.

Introduzione

I principi fisici alla base del controllo biomeccanico di processi morfogenetici sono in gran parte indefiniti. Mentre studi biomeccanici a livello molecolare e cellulare stanno raccogliendo un considerevole slancio, l'esplorazione dei parametri biomeccanici a livello del tessuto/organismo è a sua infanzia. Idrodinamica regressione1 o Video microscopia di forza2 permettono ai ricercatori di distinguere le forze attive e passive, mentre laser microchirurgia3o la microscopia a forza atomica (AFM) meno intrusiva di cellule dissociate4 o in vivo 5

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Protocollo

Tutti i passaggi di protocollo descritti di seguito seguono le indicazioni di cura degli animali delle nostre istituzioni.

1. Zebrafish cultura

  1. Allevare e mantenere zebrafish adulto in condizioni standard.
    Nota: AB e TL embrioni di tipo selvaggio sono stati utilizzati per questo studio.
  2. Raccogliere gli embrioni e farli crescere a 28,5 ° C in E3 embrione medio24. Loro fase secondo morfologia come descritto in precedenza19.

2. atomic Force Microscopy

  1. Manuale dechorionate in scena gli embrioni di zebrafish (di età diverse secondo ....

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Risultati

Misure di tensione corticale
Per ogni punto di misura, cinque curve di forza-spostamento (F-z) sono state acquisite da AFM di dilagare il cantilever a 1 Hz con un'ampiezza di picco-picco di 5 µm (velocità = 10 µm/s) fino a un rientro massimo di ~ 2 µm. Questa procedura stava prendendo meno di 20 minuti e non è stata colpita dalla progressione di epiboly. Ogni condizione sperimentale è stato testato in almeno 5 embrioni.

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Discussione

Qui indichiamo che le proprietà del materiale e alcuni parametri biomeccanici della cella tuorlo zebrafish durante epiboly possono essere prontamente stimati mediante AFM e nanoparticelle microrheology.

Mentre AFM è stato impiegato per recuperare le caratteristiche reologiche di cellule e tessuti in condizioni fisiologiche4,5,25,28, qui abbiamo sviluppato un protocol.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano senza concorrenti interessi finanziari o altri conflitti di interesse.

Ringraziamenti

Ringraziamo Amayra Hernández-Vega e Philippe-Alexandre Pouille per partecipare alla configurazione di base per questi protocolli. Ringraziamo anche la piattaforma di Imaging molecolare dalla IBMB-PCB, Xavier Esteban e membri del laboratorio per il continuo supporto. Il programma di gruppi consolidati della Generalitat de Catalunya e DGI e Consolider sovvenzioni dal Ministero dell'economia e competitività della Spagna all'EMB e DN supportato questo lavoro.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Microscopio ottico invertitoNikonTE2000Visualizzazione del campione e del cantilever AFM
Microscopio a forza atomica (AFM)Sumisura-QualsiasiAFM commercializzato potrebbe essere impiegato
Microscopio confocale invertitoZeissLSM780Raccolta dati nanooreologici
Agarosio D1 Basso EEOConda8016.00Fusione di
embrioniLMP ultrapuro Agarosio (basso punto di fusione)Invitrogen16520-100Fissaggio degli embrioni Stampi per
microiniezione e trapianto di pesce zebra WorldPrecision InstrumentsZ-MOLDSFusione di embrioni. Realizzato su misura con le dimensioni originali può essere impiegato anche
Dumont 5 PinzeFST11251-201,5 mm
Si3N4 cantileverNovascanPT. GSMisurazione dell'embrione mediante AFM. Punta sferica: 4,5 & micro; m diametro e k=0,01 N/m
Nanoparticelle fluorescentiLife TechnologiesFluoSpheres F8811,per il monitoraggio della nanoreologia
Estrattore di micropipetteSutter InstrumentsP-2000Fabbricazione di microaghi su misura
Vetro capillare borosilicatoWarnerInstruments G100TF-4Fabbricazione di microaghi su misura
MicromanipolatoreNarishigeMN-153Manipolazione della micropipetta
MicroiniettoreEppendorfFemtoJet ExpressControllo del tempo e della pressione
di iniezione StereomicroscopioLeicaDFC365FXVisualizzazione degli embrioni durante l'iniezione Software di
analisiMathWorksMatlabAnalisi dei dati AFM e di tracciamento delle particelle
ZebrafishAB e TL wild type- Ceppi utilizzati per la raccolta di embrioni
Piastre di fondo in vetroMat TekP35G-0.170-14-CMontaggio di embrioni per la raccolta di dati nanoreologici
Micrometro da stadioFST29025-02Misurazione del volume di iniezione
diametro

Riferimenti

  1. Hernandez-Vega, A., et al. Polarized cortical tension drives zebrafish epiboly movements. EMBO J. 36, 25-41 (2017).
  2. Brodland, G. W., et al. Video force microscopy reveals the mechanics of ventral furrow invagination in Drosophila. Proc....

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Ristampe e permessi

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