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Articolo metodologico

Microinjection di proteine CRISPR/Cas9 in Channel Catfish, Ictalurus punctatus, embrioni per Gene Editing

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DOI:

10.3791/56275

20 gennaio 2018

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Un protocollo di microiniezione semplice ed efficiente per l'editing di gene in embrioni di pesce gatto della manica usando il sistema CRISPR/Cas9 è presentato. In questo protocollo, guida RNA e proteina Cas9 erano microiniettati in tuorlo di embrioni di topo. Questo protocollo è stato convalidato battendo fuori due geni immuno-correlati di pesce gatto della manica.

Abstract

È stato sequenziato il genoma completo del channel catfish, Ictalurus punctatus, portando a maggiori opportunità per studiare la funzione del gene di pesce gatto della manica. Knockout del gene è stato utilizzato per studiare queste funzioni di gene in vivo. Il cluster regolarmente intervallate proteine brevi ripetizioni/CRISPR palindromi associato 9 (CRISPR/Cas9) sistema è un potente strumento utilizzato per modificare le sequenze di DNA genomic per alterare la funzione del gene. Mentre l'approccio tradizionale è stato introdurre gli embrioni di singola cellula attraverso microiniezioni CRISPR/Cas9 mRNA, questo può essere un processo lento e inefficiente nel pesce gatto. Qui, un protocollo dettagliato per il microinjection di embrioni di pesce gatto della manica con CRISPR/Cas9 proteina è descritto. Brevemente, le uova e lo sperma sono stati raccolta e quindi artificiale fecondazione eseguita. Le uova fecondate sono state trasferite in una piastra Petri contenente soluzione di Holtfreter. Volume di iniezione è stato calibrato e poi guida RNAs/Cas9 targeting per il pedaggio/interleukin 1 recettore dominio contenenti adattatore molecola (TICAM 1) gene e ramnosio binding lectin (RBL) gene sono stati microiniettati in tuorlo di embrioni di topo. Il Ko del gene era successo come indels sono stati confermati dal sequenziamento del DNA. Le alterazioni della sequenza di proteina preveduta a causa di queste mutazioni incluso frameshift e troncato proteine a causa di codoni di stop prematuri.

Introduzione

Microiniezione è una comune tecnica di laboratorio utilizzata per distribuire una piccola quantità di una sostanza come DNA, RNA, proteine e altre macromolecole nelle cellule o embrioni attraverso un capillare di vetro1. Microiniezione viene eseguita utilizzando l'installazione di attrezzature speciali tra cui un microinjector, micromanipolatore e un microscopio2. La tecnica è stata utilizzata dai ricercatori per modificare geneticamente molti organismi attraverso la generazione di transgenetica, TNA knockouts genica e la terapia genica, con l'obiettivo di comprendere le dinamiche di componenti intracellulari

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Protocollo

Questo esperimento è stato condotto presso l'unità di ricerca genetica di pesce, E. W. Shell pesca Research Center, Auburn University, AL. Tutti i protocolli sperimentali utilizzati in questo esperimento sono stati approvati dal comitato di uso (AU-IACUC) e Auburn University istituzionale Animal Care prima che l'esperimento è stato avviato. Un elenco delle attrezzature e rifornimenti usati in questo esperimento può essere trovato nella tabella materiali. Di seguito sono i passaggi e le procedure di preparazione e microiniezione di embrioni di topo pesce gatto della manica come illustrato nella Figura 1.

1. selezi....

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Risultati

Per dimostrare l'efficienza del protocollo microiniezione, gRNAs progettato per indirizzare il pesce gatto della manica pedaggio/interleukin 1 dominio contenenti adattatore molecola (TICAM1) del gene del recettore e ramnosio binding lectin (RBL) gene sono stati microiniettati.

TICAM 1
Sequenziamento del DNA di vettori da diverse colonie da pool, clonati prodotti di PCR ha rivelato le mutazioni indel indotte n.......

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Discussione

È stato presentato un protocollo dettagliato per il microinjection di embrioni di pesce gatto della manica per raggiungere knockout del gene. Iniezione di proteine CRISPR/Cas9 nel tuorlo è molto più semplice, consente di risparmiare tempo e non richiede una formazione ampia rispetto ai microinjecting il blastodisc dell'embrione un cella, che è la tecnica più comune per la maggior parte di trasferimento genico e gene editing con pesce 30 , 42. il protocollo attual.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere alcun conflitto di interessi.

Ringraziamenti

Questa ricerca è stata finanziata dal premio di USDA-catino 2015-67015-23488 a Roger Cone. Gli autori ringraziano il Dr. Ronald Phelps per la descrizione dei criteri di selezione dei titoli covata nel video. Ahmed Elaswad e Karim Khalil vorrei ringraziare egiziano culturale ed educativo Bureau a Washington DC per finanziare la loro ricerca di dottorato di ricerca.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Reproboost impiantoCentro di BiotecnologiaMarina Ormone di rilascio luteinizzante analogo (LHRHa) per l'induzione dell'ovulazione nelle femmine di pesce gatto canale
TRICAINE-SWestern Chemical. Inc.Per la sedazione dei pesci di riproduttore durante l'iniezione di ormoni e la rimozione delle uova.
Fenolo rossoSigma-AldrichP02900,5%, sterile filtrato
StereomicroscopioOlympus213709Per visualizzare le uova durante la microiniezione
MicroiniettoreASI-Applied Scientific Instrumentation Modello MPPI-3Per la consegna del materiale di iniezione negli embrioni
MicromanipolatoreASI-Applied Scientific Instrumentation Modello MM33 Per tenere e controllare il movimento dell'ago per iniezione.
Eppendorf MicroloaderEppendorf5242956.003Per caricare la soluzione iniettabile in aghi per microiniezione.
Estrattore verticale dell'agoDavid Kopf InstrumentsModello 720Per l'estrazione di aghi per microiniezione
Cas9 proteinaPNA Bio Inc.CP01Proteina Cas9 ricombinante da Streptococcus pyrogenes.
Espandi il sistema PCR High FidelityPLUS  Roche Diagnostics, USAPer la PCR e l'amplificazione di modelli di DNA da utilizzare nella preparazione del gRNA
Capillari in vetro borosilicatoFisher Scientific1 mm di diametro esterno (OD), per la realizzazione di aghi per microiniezione.
Piastra di PetriVWR25384-302Per trattenere gli embrioni durante la microiniezione.
CriscoThe J.M. Smucker CompanyGrasso vegetale per rivestire pentole di deposizione delle uova e piastre di Petri.
soluzione di HoltfreterHome Made59 mM NaCl, 0,67 mM KCl, 2,4 mM NaHCO3, 0,76 mM CaCl2, 1,67 mM MgSO4 per incubare gli embrioni microiniettati fino alla schiusa.
Doxiciclina iclilato USP (monoidrato)Letco Medical690904antibiotico aggiunto alla soluzione di Holtfreter a 10 ppm per prevenire le infezioni batteriche.
La

Riferimenti

  1. Hammer, R. E., et al. Production of transgenic rabbits, sheep and pigs by microinjection. Nature. 315, 680-683 (1985).
  2. Komarova, Y., Peloquin, J., Borisy, G. Components of a microinjection system. , Cold Spring Harb. Protoc. 935-939 (2011).
  3. Du, S. J., et al.

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Ristampe e permessi

Tag

Knockout genicoProtocollo di microiniezioneIniezione embrionaleGene TICAM1Gene RBLRNA guidaSoluzione di Holtfreter