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Articolo metodologico

Massa isolamento e coltivazione In Vitro delle fasi Intramolluscan del trematode umano sangue Schistosoma Mansoni

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DOI:

10.3791/56345

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14 gennaio 2018

 ,  , 

In questo articolo

Sommario

Questo articolo descrive un protocollo per l'isolamento axenica su larga scala e la raccolta di nuotare liberamente miracidia del trematode umano sangue Schistosoma mansoni e la loro successiva elaborazione per l'introduzione in coltura in vitro .

Abstract

Umani sangue trematodi, Schistosoma spp., hanno un ciclo di vita complesso che coinvolge fasi dello sviluppo sessuale e asessuale all'interno di un lumaca intermedi e di mammifero ospite finale, rispettivamente. La capacità di isolare e sostenere le fasi del ciclo di vita diverso in condizioni di coltura in vitro ha notevolmente facilitato le indagini dei meccanismi cellulari, biochimici e molecolari che regolano l'host, la sviluppo e la crescita del parassita interazioni farmacologiche. Trasmissione della schistosomiasi richiede la riproduzione asessuata e lo sviluppo di più stadi larvali all'interno dell'host lumaca; dal miracidium infettiva, attraverso sporocisti primarie e secondarie, alla fase finale cercarial che è infettivo agli esseri umani. In questa carta presentiamo un protocollo passo-passo per massa schiusa e isolamento di Schistosoma mansoni miracidia da uova ottenute dai fegati di topi infetti e la loro successiva introduzione in coltura in vitro . Si prevede che il protocollo dettagliato incoraggerà nuovi ricercatori per partecipare e ampliare questo importante settore della ricerca di schistosome.

Introduzione

L'essere umano sangue flukes Schistosoma spp., sono gli agenti causali della schistosomiasi, una malattia tropicale trascurata che affligge un stimato 230 milioni di persone in tutto il mondo1. La specie più diffusa, Schistosoma mansoni, è geograficamente distribuita in Sud America, l'arcipelago dei Caraibi, Medio Oriente e Africa sub-sahariana2. Il ciclo di vita di S. mansonie altri schistosomes, è complesso, che coinvolge un mammifero ospite definitivo e lumache d'acqua dolce del genere Biomphalaria che fungono da ospiti intermedi obbligati.

S. mansoni....

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Protocollo

Tutti cura degli animali e procedure sperimentali sono state approvate dal comitato di uso della University of Wisconsin-Madison sotto protocollo istituzionale Animal Care e non. V005717. Il seguente protocollo comporta lavorare in una struttura di livello 2 di biosicurezza (BSL2) per agenti patogeni umani, anche se nessuna delle fasi di schistosome raffigurate in questo protocollo sono infettiva per l'uomo o altri mammiferi. Seguire politiche istituzionali per la gestione degli agenti patogeni umani del gruppo di rischio 2 (RG2).

Nota: Usiamo topi femmina Swiss-Webster (6 - settimana vecchi) a causa della loro maggiore suscettibilità all'i....

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Risultati

La stragrande maggioranza dei miracidia in genere vi sono state raccolte nei primi due "raccolti". Incubazione di miracidia isolato in CBSS + innesca il processo di trasformazione di miracidium-a-sporociste (Figura 4A- C). Entro la prima ora seguente trasferimento alla cultura pozzetti contenente CBSS +, la maggior parte di cessare miracidia nuoto (Figura 4A). A 6 h nella cultura, miracidia stanno attivamente spa.......

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Discussione

Miracidia di S. mansoni, isolato e manipolato come descritto nel presente documento, può infettare solo l'ospite intermedio di lumaca e pertanto non rappresentano un rischio biologico umano durante questa fase di sviluppo larvale. Tuttavia, per evitare l'accidentale esposizione/infezione di lumache, dovrebbe prestare attenzione per eseguire gli isolamenti miracidial in una posizione diversa dalle zone dove la specie di lumaca Biomphalaria sensibili possono essere presente o mantenuto. Una stanza separat.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Finanziato in parte dalla concessione NIH RO1AI015503. Topi infettati di schistosome erano forniti dal NIAID schistosomiasi Resource Center presso l'Istituto di ricerca biomedica (Rockville, MD) attraverso NIH-NIAID contratto HHSN272201000005I per la distribuzione attraverso le risorse della BEI.

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Materiali

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Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Soluzione salina bilanciata di chernin (CBSS+)Per 1 litro di soluzione
2,8 g di cloruro di sodioFisher ScientificS271-3Sciogliere i sali, tranne il cloruro di calcio, e 
0,15 g di cloruro di potassioZuccheri Sigma-AldrichP5405in 800 mL ddH2O
0,07 g di fosfato di sodio, bibasico anidroFisherScientific S374-500Sciogliere separatamente il cloruro di calcio in 200 
0,45 g di solfato di magnesio eptaidratoSigma-AldrichM1880mL ddH2O
0,53 g cloruro di calcio diidrato Mallinckrodt4160Aggiungere lentamente il soln di calcio al soln di sale/zucchero con 
0,05 g di bicarbonato di sodio   Fisher ScientificS233-3con miscelazione costante
1 g di glucosioMP Biomedicals152527Regolare a pH 7,2 e sterilizzare con filtro
1 g trealosioSigma-AldrichT01670,22 µ m filtro monouso per flaconi
10 mL 100X penicillina/streptomicinaHycloneSV30010Aggiungere penicillina filtrata e streptomicina soln 
uso precedente
Incompleto Bge  medium (Ibge)Per 900 mL di soluzione
220 mL Schneider' s Terreno di coltura Drosophila modificatoLonza04-351QMiscelare il terreno di Schneider con 680 mL di ddH2O
4,5 g di idrolizzato enzimatico di lattoalbuminaSigma-AldrichL9010Aggiungere idrolizzato di lattoalbumina e galattosio
1,3 g di galattosioSigma-AldrichG0625Regolare a pH 7,2 e sterilizzare con un filtro 0,22 &; m
Filtro monouso pre-sterilizzato per flaconi
Terreno Bge completo (cBge)<forte>Per 100 mL di soluzione
90 mL TerrenoPer inattivare a caldo FBS: Incubare FBS scongelato in 
9 mL di siero fetale bovino (FBS) (Optima)Atlanta BiologicalsS12450bagnomaria a 60 gradi; C per 1 ora mentre delicatamente
1 mL di 100X penicillina/streptomicinaHycloneSV30010agitando il flacone ogni 10 min
Aliquot FBS inattivato a caldo in provette da 15 mL.
e conservare a -20 gradi C. Miscelare il terreno + FBS e
filtro, sterilizzare utilizzando un 0,22 & micro; m pre-sterilizzato 
filtro monouso per flaconi 
Aggiungere penicillina e streptomicina prima dell'uso
Acqua di stagno (soluzione madre)1 litro di soluzione madre
12,5 g di carbonato di calcioFisher ScientificC64-500Mescolare tutti i sali in 1 litro di ddH2O
1,25 g di carbonato di magnesioFisher ScientificM27-500Si noti che i sali non avranno completamente 
1,25 g di cloruro di sodioFisher ScientificS271-3disciolto. Agitare energicamente per sospendere                               
0,25 g di sali di cloruro di potassioSigma-AldrichP5405prima di effettuare la lavorazione  
Acqua del laghetto (soluzione di lavoro)1,5 L di soluzione
0,8 ml di acqua madre del laghetto (agitare prima dell'uso) in               Miscelare il brodo con ddH2O
1500 mL di ddH2OSterilizzare l'acqua del laghetto mediante sterilizzazione in autoclave (lento 
1,5 ml di penicillina/streptomicina 100XHycloneSV30010Aggiungere penicillina e streptomicina prima dell'uso
(1,2% NaCl)1,5 L di soluzione
18 g di cloruro di sodio in 1500 mL di ddH2OFisher ScientificS271-3Soluzione salina per autoclave per sterilizzare
1,5 mL di penicillina/streptomicina 100XHycloneSV30010Aggiungere penicillina e streptomicina prima dell'uso
Attrezzature e materiali aggiuntivi:  Camera
7-LA seguito del protocollo IACUC approvato n. V001551
 
Serbatoio e regolatore
coltura tissutale a 24 pozzettiTPP92424
Palloni
Sorgente luminosa (150W)Chiu Tech CorpModello F0-150
Centrifuga, refrigerata, secchio oscillanteCentrifuga EppendorfModello 5810R
flaconi (250 mL)Nalgene
da 15 mL, steriliCorning430053
Pipette di trasferimento monouso sterili Fisher Scientific 1371120
0,22 & micro; m filtro monouso pre-sterilizzato per flaconi EMD MilliporeSCGPS05RE
Frullatore in acciaio inossidabileWaring CommercialModel 51BL31
Tazza frullatore, capacità 100 mLWaring Commercial
Microscopio composto invertitoNikon Instruments Eclipse TE300
Bge incompleto ... di eutanasia per topi Topi Taconic Biosciences Swiss-Webster, femmina, 6 settimane, murina  CO piastra per priva di agenti patogeni volumetrici da 1 LProvette da centrifuga

Riferimenti

  1. Colley, D. G., Bustinduy, A. L., Secor, W. E., King, C. H. Human schistosomiasis. Lancet. 383, 2253-2264 (2014).
  2. WHO. Schistosomiasis: number of people treated worldwide in 2013. Wkly. Epidemiol. Rec. 5 (90), 25-32 (2015).
  3. Yoshino, T. P., Gourbal, B., Théron, A. Schistosoma sporocysts.

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Ristampe e permessi

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