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Articolo metodologico

Cella singola quantificazione dei tassi di degradazione delle proteine mediante microscopia a fluorescenza time-lapse in coltura delle cellule aderenti

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DOI:

10.3791/56604

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4 febbraio 2018

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive un metodo per determinare la proteina emivite in singole cellule aderenti, utilizzando impulsi etichettatura e time-lapse imaging di fluorescenza di proteine di fusione SNAP-tag.

Abstract

Le proteine sono in uno stato dinamico di sintesi e degradazione e la loro emivita può essere regolata in varie circostanze. Tuttavia, la maggior parte comunemente utilizzati approcci per determinare l'emivita della proteina o sono limitate a medie della popolazione dalla cellule lisate o richiedono l'uso di inibitori della sintesi di proteina. Questo protocollo descrive un metodo per misurare la proteina emivite in singole cellule aderenti, con proteine di fusione SNAP-tag in combinazione con Time-lapse microscopia di fluorescenza. Qualsiasi proteina di interesse fusa ad un SNAP-tag possa legarsi covalentemente da una tintura di permeabili delle cellule fluorescente, che è accoppiata ad un derivato di benzylguanine, e il decadimento della popolazione proteina marcata può essere monitorato dopo interruzione della tintura residua. Successiva delle cellule di rilevamento e la quantificazione dell'intensità di fluorescenza integrata rispetto ai risultati di tempo in una curva di decadimento esponenziale per ogni cella cingolato, permettendo per determinare i tassi di degradazione delle proteine in cellule singole di adattamento della curva. Questo metodo fornisce una stima per l'eterogeneità delle emivite in una popolazione di cellule in coltura, che non può essere valutato facilmente con altri metodi. L'approccio qui presentato è applicabile a qualsiasi tipo di cellule aderenti coltivate che esprime una proteina di interesse fusa a un tag di SNAP. Qui usiamo cellule staminali embrionali (ES) topo coltivate su piastre per colture cellulari E-cadherin-rivestito per illustrare come singola cella degradazione tassi di proteine con una vasta gamma di dimezzamento possono essere determinati.

Introduzione

È noto che proteine cellulari subiscono ampio turnover, con tassi di sintesi e degradazione essendo specifico per ogni proteina e soggette a regolazione fisiologica. Tradizionalmente, tassi di degradazione delle proteine sono stati misurati utilizzando metodi di massa, quali l'analisi di chase impulso radioattivo, o che coinvolgono gli inibitori della sintesi di proteine quali cicloesimmide1. Più recentemente, isotopo stabile etichettatura con gli amminoacidi nella coltura delle cellule (SILAC) in combinazione con la spettrometria di massa è stato istituito per quantificare il turnover delle proteine su una scala globale2

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Protocollo

Nota: In questo studio, è stata utilizzata la linea cellulare E14 ES. Tuttavia, questo protocollo è direttamente applicabile a qualsiasi altra linea di mouse ES cellula che esprime una proteina di interesse fusa a un tag di SNAP, codifica la proteina endogena oppure mediante sovraespressione. Per gli esempi riportati nella sezione risultati, linee cellulari di doxiciclina-inducible SNAP-tag fusione sono stati usati (SNAP-tag fusa per le seguenti proteine: Nanog, Oct4, Srsf11, o per le proteine fluorescenti mOrange2 e sfGFP e messo sotto il controllo di un doxiciclina-inducible promotore. Vedi11 per ulteriori informazioni sui plasmidi utilizzati....

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Risultati

Il protocollo descritto fornisce una stima della variabilità cellula--cellula in Half-Life per qualsiasi data proteina fusa a un tag di SNAP. L'uso di ricombinanti E-cadherin-Fc per il rivestimento della piastra imaging consente risoluzione unicellulare in cellule ES, che altrimenti crescere nelle colonie. Cellule singole possono essere monitorate separatamente durante tutto il corso del film ( Figura 1A).

Al fine di determinare il tempo di dimezzamento di protein.......

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Discussione

Il passaggio più importante quando si utilizza un tag di SNAP per monitorare il decadimento della proteina è per garantire che nessun residuo colorante non legato è lasciato nel terreno o nelle cellule dopo il lavaggio, altrimenti si potrebbe associare a recentemente prodotte molecole SNAP-tag più tardi nel corso dell'esperimento e ther Eby compromesso la curva di decadimento. Questo è un lato ottenuta eseguendo attentamente tutti i passaggi di lavaggio descritta. D'altra parte, la concentrazione di colorante dovrebbe es.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Esperimenti di microscopia time-lapse sono stati eseguiti presso biomolecolari Screening Facility (BSF), EPFL. Ringraziamo Marc Delachaux (servizio Audiovisuel, EPFL) per la videografia e montaggio del film.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Equipment
ES che esprime una proteina di fusione SNAP-tag di interesse--
Falcon 100 mm Piastra per colture cellulari trattata con TC FalconCorning353003
96 pozzetti, nero/trasparente, piastra trattata per colture tissutaliCorning353219
Camera di conteggio migliorata Neubauer, 0,1 mmMarienfeld-superior640030
Incubatore a CO2PanasonicMCO-170AICUV-PE
Centrifuga 5804 REppendorf5804000528
InCell Analyzer 2200 Sistema di imaging cellulareGE Healthcare Life Sciences29027886
NameAziendaCatalog NumberComments
Reagents
Glasgow Minimum Essential MediumSigma-AldrichG5154
Siero fetale bovino, qualificato per cellule staminali embionicheThermoFisher16141-079
Soluzione di piruvato di sodioSigma-Aldrich113-24-6
Minimo Essenziale Medio  Aminoacidi non essenzialiThermoFisher11140-035
Penicillina-StreptomicinaBioConcept4-01F00H
L-Glutammina 200mMThermoFisher25030-024
2-MercaptoetanoloSigma-Aldrich63689-25ML-F
Fattore inibitorio della leucemia--Prodotto in laboratorio mediante trasfezione transitoria di cellule HEK-293T, seguita da raccolta e filtraggio del surnatante.
CHIR99021 (GSK-3 Inhibitor XVI)Merck Millipore361559
PD 0325901Sigma-Aldrich391210-10-9
Gelatina da pelle bovinaSigma-Aldrich9000-70-8
Dulbecco's PBS 10x concentratoBioConcept3-05K00-I
Dulbecco's PBS Without Ca++/Mg++BioConcept3-05F29-I
Tripsina-EDTA-Soluzione 0,25%Sigma-AldrichT4049
Proteina Chimera Fc di topo ricombinanteR & D systems748-EC-050
Idlato di doxiciclinaSigma-AldrichD9891
SNAP-Cell 647-SiRNew England BioLabsS9102S
FluoroBrite DMEMThermoFisherA18967-01
NameCompanyNumero di catalogoCommenti
Software
FIJI--Software di analisi delle immagini open source
MATLAB R2014aMathworks-Microsoft
ExcelMicrosoft-
,

Riferimenti

  1. Zhou, P. Determining Protein Half-Lives. Signal Transduct Protoc. , 67-77 (2004).
  2. Schwanhäusser, B., et al. Global quantification of mammalian gene expression control. Nature. 473 (7347), 337-342 (2011).
  3. Plachta, N., Bollenbach, T., Pease, S., Fraser, S. E., Pantazis, P.

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Ristampe e permessi

Tag

Emivita proteicafusione SNAP-Tagmicroscopia time-lapseimaging a fluorescenzaanalisi a singola cellulacellule staminali embrionali di topofitting della curvaintensità di fluorescenzaottimizzazione del colorante SNAP