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Articolo metodologico

Sintesi del monocito-targeting Peptide Amphiphile micelle per l'Imaging di aterosclerosi

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DOI:

10.3791/56625

⸱

17 novembre 2017

 ,  , 
1Department of Biomedical Engineering, University of Southern California

In questo articolo

Sommario

Questo articolo presenta un metodo che coinvolge la sintesi e la caratterizzazione delle micelle di amphiphile peptide monocito-targeting e le corrispondenti saggi per verificare la biocompatibilità e capacità la micella di associare ai monociti.

Abstract

L'aterosclerosi è un contributore importante alla malattia cardiovascolare, la principale causa di morte nel mondo, che sostiene 17,3 milioni di vite ogni anno. L'aterosclerosi è anche la principale causa di morte improvvisa e l'infarto miocardico, istigato da placche instabili che si rompono e occludono il vaso sanguigno senza avviso. Modalità di formazione immagine corrente non può distinguere tra placche stabili e instabili che rottura. Micelle di peptide anfifili (PAMs) possono ovviare a questo inconveniente come possono essere modificati con una varietà di molecole che si legano specificamente a tessuto malato di targeting. I monociti sono stati indicati per essere marker precoce di aterosclerosi, mentre il grande accumulo di monociti è associato con le piastre alla rottura incline. Quindi, nanoparticelle che possono mirare monociti possono essere utilizzate per discriminare le diverse fasi di aterosclerosi. A tal fine, qui, descriviamo un protocollo per la preparazione di monocito-targeting PAMs (monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) PAMs). MCP-1 PAMs sono auto-assemblate attraverso sintesi in condizioni blande di forma nanoparticelle di 15 nm di diametro con vicino neutro carica superficiale. In vitro, PAMs sono state trovate per essere biocompatibile e aveva una legame ad alta affinità per i monociti. I metodi descritti nel presente documento mostrano la promessa per una vasta gamma di applicazioni nell'aterosclerosi, nonché altre malattie infiammatorie.

Introduzione

Le malattie cardiovascolari rimangono per essere le principali cause di morte a livello mondiale con circa 17,3 milioni di morti in tutto il mondo1. Le malattie cardiovascolari sono fornite da aterosclerosi, una condizione in cui si accumulano le placche nelle arterie, quindi inibente sangue e flusso di ossigeno alle cellule del corpo2,3. La progressione di aterosclerosi coinvolge l'ispessimento e l'indurimento delle arterie da una risposta infiammatoria, metabolismo dei lipidi irregolare e l'accumulazione della placca, che conduce a placca la rottura e l'infarto miocardico4,5. Le cellule endoteliali esprimono molecole di adesione e citochine, che comprendono MCP-1, che si lega al recettore di chemochine C-C (CCR2) presente sulla superficie dei monociti6,7,8. Il colesterolo ossidato converte i monociti macrofagi durante la fase iniziale della formazione di placche, che amplifica la risposta infiammatoria nella regione e porta alla lesione del tessuto e la formazione di placche instabili o vulnerabili9, 10.

Tradizionalmente, l'aterosclerosi viene valutata valutando stenosi luminal da imaging anatomico mediante angiografia o ultrasuono11,12. Tuttavia, questi metodi possono determinare solo lo stringimento severo della parete arteriosa e non lo stadio precoce di aterosclerosi, come crescita iniziale della placca causa rimodellamento arterioso mantenere le dimensioni dell'arteria e sangue flusso tasso12,13, 14. Di conseguenza, gli angiogrammi underrepresent prevalenza di aterosclerosi. Inoltre, tecniche di imaging non invasive come singola emissione del fotone computato tomografia, tomografia a emissione di positroni e la risonanza magnetica recentemente sono state usate per caratterizzare la morfologia della placca come possono fornire informazioni iniziali e caratterizzazione delle placche. Tuttavia, queste modalità sono spesso limitate dalla mancanza di sensibilità, risoluzione spaziale, o richiedono l'uso di radiazioni ionizzanti, rendendo imaging progressione della placca nelle diverse fasi molto più impegnativo15,16, 17. Un sistema di consegna imaging che identificherebbe specificamente placche nelle diverse fasi di aterosclerosi rimane ad essere sviluppato.

Le nanoparticelle hanno dimostrato di essere una piattaforma emergente per in vivo della placca di targeting e diagnostica18,19,20,21. In particolare, PAMs sono vantaggiose grazie alla loro diversità chimica e la possibilità di ospitare una varietà di moiety, composizioni, dimensioni, forme e funzionalizzazione superficiale22. Peptide anfifili (PAs) sono costituiti da un peptide "capigruppo idrofilo," attaccato a una coda idrofobica, che in genere sono i lipidi; Questa struttura anfifilica conferisce la capacità di auto-assemblaggio e consente una visualizzazione multivalente di peptidi sulla superficie delle particelle22,23,24. Il peptide headgroups possono influenzare la forma delle particelle attraverso pieghevoli e legame tra peptidi25dell'idrogeno. Peptidi che piega attraverso l'interazione di β-foglio sono stati indicati per formare micelle allungate, mentre α-elica conferma può formare entrambe micelle sferiche e allungata22,23,24, 25,26,27. Linker di polietilenglicole (PEG) che lo scudo la carica superficiale del peptide può essere collocato tra il peptide idrofilo e la coda idrofobica di PAMs, migliorare la disponibilità della nanoparticella in circolazione sistemica28, 29 , 30 , 31. PAMs sono vantaggiose anche perché sono biocompatibili e hanno dimostrati di avere una vasta gamma di applicazioni32,33. La solubilità in acqua delle micelle offre un vantaggio sopra altri sistemi basati su nanoparticelle come certe nanoparticelle polimeriche che non sono solubili in acqua e devono essere sospese in res per iniezioni34. Inoltre, la possibilità di creare PAMs smontare in risposta a un stimoli specifici rende PAMs un attraente candidato per controllato di farmaci intracellulari di consegna35.

Legandosi al recettore CCR2 e accumulando nell'arco aortico, PAMs precedentemente sono state sviluppate per monocito targeting per monitorare le diverse fasi delle lesioni aterosclerotiche dell'aorta9. In topi ApoE- / - monocito accumulo aumenta proporzionalmente a placca progressione36. Inoltre, è emerso che i pazienti con placche rottura-incline, fase avanzata contengono una maggiore quantità di monociti37. Pertanto, la modifica di PAMs incorporare MCP-1 è utile perché permette una maggiore specificità targeting e differenziazione tra lesioni aterosclerotiche e tardo-fase iniziale. Questi studi di proof-of-concept anche verificato che PAMs sono abbastanza sicura di essere utilizzato preclinicamente e vengono eliminate per via renale38. Poiché i monociti e infiammazione sono caratteristici di altre malattie, MCP-1 PAMs hanno il potenziale per essere utilizzato per applicazioni terapeutiche e diagnostiche in altre malattie oltre l'aterosclerosi8,39,40 , 41.

Qui, segnaliamo la realizzazione di auto-assemblati e scalabile PAMs di MCP-1 che ha dimostrato la dimensione ottimale della particella, carica superficiale e targeting selettivo di monociti per applicazioni avanzate di imaging nell'aterosclerosi.

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Protocollo

Nota: Leggere la scheda di sicurezza per i reagenti e seguire tutte le misure di sicurezza chimica come richiesto dall'istituzione locale.

1. preparazione di MCP-1 PAMs

  1. Preparazione del peptide di MCP-1
    1. Pesare 0,25 mmol di Fmoc-L-Lys (Boc)-Wang in un recipiente di reazione (RV). Sciacquare il lato del camper con 5ml dimethylforamide (DMF) in una cappa chimica.
    2. Caricare il camper su un sintetizzatore di peptidi di benchtop automatizzato. Carico pre-confezionato aminoacido fiale, N '- CYNFTINRKISVQRLASYRRITSS - C', dal C a N-terminale. Includere un flaconcino vuoto alla fine per il passo finale deprotezione.
      Nota: Può anche essere sintetizzato un peptide strapazzato con la sequenza, N '- CNNSIIRSKQVLRSTRYFRSATYK - C', usando lo stesso protocollo.
    3. Una volta terminata la sintesi, trasferire i peptidi su resina da RV nella fiala di scintillazione con 2-3 mL di metanolo fino a quando tutti le resine vengono trasferiti. Dopo la resina ha affondato verso il basso, rimuovere il surnatante di metanolo e far evaporare il rimanente fino a secco. Vuoto a secco per ulteriori 2 ore o una notte a temperatura ambiente.
    4. Fare 12 mL di soluzione di clivaggio contenente trifluoracetic acido (TFA):ethanedithiol:water:triisopropylsilane al 94:2.5:2.5:1 vol % in una cappa chimica. Agitare la soluzione di fenditura per assicurarsi che viene miscelato in modo uniforme.
      Attenzione: Poiché triisopropylsilane ed etanditiolo sono aria-sensibile, argon spurgo stock flaconcini di triisopropylsilane ed etanditiolo per 1 min prima di rimetterle.
    5. Posizionare il vaso di sintesi (SV) su un agitatore per braccio di bloccaggio nella parte inferiore metà della SV. Trasferimento del peptide-resina al SV con 2 mL di soluzione di fenditura fino a quando tutti il peptide-resine vengono trasferiti.
    6. Lavare i lati dello SV con 3 mL di soluzione di clivaggio. Chiudere il tappo della SV e agitare a 300 oscillazioni/min per 4 h.
    7. Pesare una provetta vuota 50ml. Registrare la massa.
    8. Dopo 4 h, è possibile scaricare la soluzione peptide fenduto dalla SV nella provetta da centrifuga 50 mL. Sciacquare la SV parecchie volte con la soluzione rimanente di clivaggio.
    9. Evaporare la soluzione peptide fenduto con azoto fino a quando c'è meno di 4 mL restanti la provetta da centrifuga.
    10. Aggiungere alla soluzione di peptide-spaccati 36 mL di etere ghiacciata.
    11. Vortex la soluzione fino a quando è completamente bianca o gialla. Centrifugare a 3.000 x g per 5 min a 4 ° C e decantare il supernatante.
    12. Aggiungere 40 mL di etere ghiacciata al tubo. Vortice e Sonicare nuovamente. Ripetere il processo di centrifugazione. Decantare il supernatante.
    13. Asciugare il pellet PA grezzo con azoto gas spurgo fino a che l'etere è visibilmente volatilizzato.
    14. Aggiungere 20 mL bidistillata acqua, vortice e trattare con ultrasuoni fino a quando il peptide è completamente dissolto nella soluzione.
    15. Congelare la soluzione e lyophilize fino a secco.
    16. Una volta che il peptide è asciugato, pesare la massa della provetta da centrifuga contenente il peptide grezzo. Sciogliere il peptide grezzo in 5 mg/mL di acqua.
    17. Sciogliere 25 mg di greggio MCP-1 peptide in 5 mL di acqua bidistillata per rendere una concentrazione totale di 5 mg/mL. Purificare il peptide grezzo di MCP-1 mediante cromatografia liquida ad alte prestazioni (HPLC) con 0,1% TFA in acqua (solvente A) e 0,1% TFA in acetonitrile (solvente B) come fasi mobili su una colonna in fase inversa C8. Iniettare 5 mL del peptide in HPLC.
      Nota: La fase mobile iniziale consisteva di solvente al 100% A una portata di 9,0 mL/min diminuire solvente A lentamente al 30% in 27 min e tenere a questa composizione per 3 min ritorno la sfumatura al 100% solvente un oltre 3 min e permanenza a questa composizione per 1 min dare un totale di run-time di almeno 34 mantenere la temperatura della colonna a 55 ° C. Modalità di sorgente di ioni positivi di utilizzo per l'analisi. L'acido formico può essere utilizzato al posto di TFA, se TFA è troppo acido per la colonna HPLC. È consigliabile che la velocità di rampa di composizione solvente organico non deve superare 2%/min per la separazione migliore.
    18. Analizzare ogni frazione usando la spettrometria totale di matrix-assisted laser desorption/ionization (MALDI) per il prodotto previsto m/z a 2.890.
      Nota: Sciogliere l'acido α-ciano-4-idrossicinnamico a 1 mg/mL in acetonitrile/acqua (50: 50% in volume) come la soluzione di matrice. Spot 0,75 µ l di soluzione di matrix sulla piastra MALDI, seguita da 0,75 µ l di ciascuna frazione. Eseguire l'analisi utilizzando una modalità ioni positivi riflettente a un intervallo di massa di 500-5.000 Da.
    19. Combinare le frazioni di prodotto, soffiare via acetonitrile, congelare e lyophilize peptidi purificati fino a secco.
  2. Preparazione di MCP-1 PA
    1. Preparare un 1,1 eccesso molare di 1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[amino(polyethylene glycol)-2000] DSPE-PEG (2000)-maleimide al peptide in flaconi separati scintillazione. Sciogliere entrambi i composti in acqua bidistillata per rendere ~ 15 mg/mL. Sottoporre ad ultrasuoni per 15 minuti o fino a quando entrambe le soluzioni sono completamente chiare.
      Nota: DSPE-PEG (2000)-Cy5 è sintetizzato utilizzando lo stesso protocollo con DSPE-PEG (2000)-ammina e Cy5 estere-funzionalizzati N-Idrossisuccinimide (NHS), fatta eccezione per passo 1.2.3, dove il pH della soluzione è regolato a 8,5.
    2. Aggiungere DSPE-PEG (2000)-con soluzione alla soluzione del peptide. Vortice e Sonicare.
    3. Aggiungere 1 M NaOH goccia a goccia (1 µ l) alla volta fino a quando il pH della soluzione è 7.
    4. Soluzione di eliminazione dei fogli inceppati di azoto per 5 min, agitare la soluzione durante la notte.
    5. Congelare la soluzione e lyophilize fino a secco.
    6. Una volta essiccato il prodotto grezzo, sciogliere il solido a 5 mg/mL di acqua.
    7. Purificare con HPLC come descritto sopra.
      Nota: Peptide non coniugata e DSPE-PEG(2000) dovrebbe eluire tra 15-30% di concentrazione organica (% vol), mentre DSPE-PEG (2000)-MCP-1 coniugato dovrebbe eluire tra 40-50% di concentrazione organica.
    8. Analizzare ogni frazione utilizzando la spettrometria di massa MALDI per corrispondente m/z DSPE-PEG (2000)-MCP-1 dovrebbe avere un picco di ampia m/z a 5.760.
      Nota: l'acido 2,5-dihydroxybenzoic è meglio utilizzato come la matrice per DSPE-PEG (2000)-MCP-1 con MALDI.
  3. Assemblea di MCP-1 PAMs
    1. Sciogliere 1,75 mg PAs di MCP-1 con 3 mL di metanolo in un flaconcino 1-dram. Sonicare fino alla completa dissoluzione della PA di MCP-1.
      Nota: Cy5 anfifili possono essere incorporato con un rapporto molare di 10:90 MCP-1 PA per applicazioni di imaging.
    2. Far evaporare il metanolo sotto azoto in un movimento circolare durante il risciacquo il metanolo restante fuori il lato del flaconcino fino a formare una pellicola uniforme nella parte inferiore della fiala. Vuoto-il film durante la notte a secco.
    3. Idratare il film con 3 mL di tampone fosfato o acqua salino (PBS) per ottenere una soluzione di 100 µM di MCP-1 PAMs. Delicatamente il vortice e Sonicare la soluzione fino a clear. Incubare a 80 ° C per 30 min.
      Nota: La temperatura elevata è stata indicata per accelerare il processo auto-assemblaggio e consente al componente di peptide formare la struttura secondaria più stabile, riducendo il micellare critica (CMC) concentrazione42,43.
    4. Raffreddare la conseguente dispersione a temperatura ambiente.

2. caratterizzazione di MCP-1 PAMs

  1. Diffusione dinamica della luce (DLS) e potenziale zeta
    1. Posto 100 µM di MCP-1 PAM o strapazzate PAM in una cuvetta secondo le istruzioni dello strumento potenziale DLS o zeta.
      Nota: DLS e zeta cuvette potenziali possono essere diversi in base alle istruzioni dello strumento.
    2. Equilibrare lo strumento a temperatura ambiente. Misurare le dimensioni e la carica superficiale di PAM.
  2. Microscopia elettronica a trasmissione (TEM)
    1. Aggiungere 7 µ l di 50 µM MCP-1 PAM o PAM uova strapazzate su una griglia TEM sospeso all'interno di una pinzetta autochiusura per 5 min stoppino via la goccia con un panno delicato compito.
    2. 7 µ l di acqua per lavare la griglia. Stoppino via la goccia.
    3. Aggiungere 7 µ l di acido fosfotungstico di % wt 1 per 2 min. stoppino via la goccia. Ripetere il punto 2.2.2.
    4. Asciugare la griglia TEM prima dell'analisi TEM.
  3. Spettroscopia di dicroismo circolare (CD)
    1. Accendere l'azoto per 5-10 minuti prima dell'uso dello strumento.
    2. Mettere 300 µ l di vuoto (acqua o PBS) nella provetta.
    3. Misurare gli spettri a 190-265 nm, 0.2 mm-lunghezza del percorso con un tempo di integrazione 1 s e una larghezza di 1 banda nm a temperatura ambiente. Raccogliere 3 replicati.
    4. Misura 100 µM peptide di MCP-1, MCP-1 PAM, uova strapazzate peptide e strapazzate PAM sotto la stessa condizione descritta al punto 2.3.3. Sottrarre dallo spazio vuoto.
    5. Adattare i dati utilizzando un'interpolazione lineare di polilisina spettri di base.
    6. Spegnere lo strumento. Attendere 10 minuti prima di spegnere l'azoto.

3. analisi in Vitro di MCP-1 PAMs

  1. Biocompatibilità in vitro
    1. Cultura ed espandere WEHI 274.1 monociti murini in per volta Eagle supplementato di Dulbecco con 10% siero bovino fetale (FBS), 1% di penicillina-streptomicina e 0,05 mM 2-mercaptoetanolo a 37 ° C inferiore al 5% di CO2 al passaggio 5.
      Nota: WEHI 274.1 sono cellule in sospensione. Quando la coltura, i mezzi di comunicazione dovrebbe essere rifornito ogni 2-3 giorni.
    2. Monociti di dispensare in media in una provetta sterile da 50 mL. Centrifugare a 300 x g per 5 min a 4 ° C.
    3. Aspirare i vecchi media e risospendere in media fresco 10ml nella provetta da centrifuga. Mescolare lentamente fino a quando le cellule sono distribuite uniformemente nei media. Contare le celle usando la macchiatura blu di trypan e un emocitometro.
    4. Diluire le cellule tale che ci sono 4.000 monociti a 90 µ l di media per pozzetto. Aggiungere 90 µ l di cellule nei pozzetti di una piastra a 96 pozzetti. Incubare per 24 h.
      Nota: Non utilizzare i pozzi sul bordo esterno della piastra per evitare differenze di evaporazione e sbalzi termici nella piastra. Riempire i pozzetti esterni con 100 µ l PBS.
    5. Sciogliere 0,15 µmol di peptide MCP-1, MCP-1 PAM, peptide strapazzato o uova strapazzate-PAM in 150 µ l PBS in microcentrifuga separata, sterilizzato. Effettuare diluizioni seriali per rendere 65 µ l di 1, 10 e 100 µM di ciascun campione.
    6. Aggiungere 10 µ l PBS di ciascuna concentrazione in pozzetti contenenti WEHI 274.1 (volume totale: 100 µ l per bene, 6 linee, totale 96 pozzetti). Incubare per 72 h.
    7. Aggiungere 10 µ l (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-5-(3-carboxymethoxyphenyl)-2-(4-sulfophenyl)-2H-tetrazolium) (MTS) in ciascun pozzetto. Incubare per 1 h.
    8. Analizzare l'assorbanza utilizzando un lettore di piastra a 490 nm o in base alle istruzioni del produttore.
  2. In vitro associazione micella
    1. Monociti seme 500.000 in ciascun pozzetto di una piastra a 6 pozzetti in 2 mL di supporto contenente 100 µM Cy5-labeled PAM di MCP-1 (rapporto molare di 10:90 di DSPE-PEG (2000)-Cy5 e MCP-1 PA). Incubare per 1 h.
    2. Raccogliere WEHI 274.1 mediante centrifugazione a 300 x g per 5 min a 4 ° C. Aspirare i media.
    3. Risospendere e lavare le cellule in 2 mL di PBS. Centrifugare a 300 x g per 5 min a 4 ° C. Aspirare il PBS. Ripetere il processo di lavaggio con 2 mL di PBS. Aspirare il PBS.
    4. Aggiungere 2 mL di freddo paraformaldeide al 4% per fissare le cellule. Incubare a temperatura ambiente per 10 min.
    5. Dispensare le cellule fissate su un vetrino coprioggetti di vetro sterile all'interno dei pozzetti di una piastra a 6 pozzetti. Centrifugare a 400 x g per 5 min.
    6. Rimuovere il paraformaldeide. Lavare e sciacquare una volta con 2 mL di PBS. Risospendere con 1 mL di PB
      Nota: Durante il risciacquo, evitare di perturbare le cellule sul vetrino coprioggetti.
    7. Mettere 10 µ l di glicerolo 90% in PBS in una diapositiva. Utilizzare un ago e una pinzetta per ritirare il vetrino coprioggetti. Asciugare il bordo del coverslip. Posizionare delicatamente il vetrino coprioggetti in una diapositiva rivolto verso il basso.
    8. Delicatamente e sigillate il bordo del coprivetrino con smalto trasparente. Mettere in frigorifero fino al momento per l'imaging.
    9. Utilizzare un laser confocale scansione microscopio (CLSM) installato con laser per Cy5 a λeccitazione = 650 nm.

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Risultati

Preparazione di MCP-1 PAM
Il motivo di CCR2-legante (residui, 13-35) della proteina di MCP-1 [YNFTNRKISVQRLASYRRITSSK] o strapazzato peptide [YNSLVFRIRNSTQRKYRASIST] è stato modificato mediante l'aggiunta di un residuo di cisteina su N-terminale. Il peptide di MCP-1 è stato sintetizzato da un metodo di fase solida Fmoc-mediata utilizzando un sintetizzatore di peptidi automatizzato. Il peptide grezzo è stato purificato mediante HPLC in fase inversa su una colonna C8 a 5...

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Discussione

MCP-1 PAMs sono una promettente piattaforma di imaging molecolare, costituito da un peptide di targeting idrofilo e coda idrofobica che spinge la natura auto-assemblata di nanoparticella. Questa micella monocito-targeting può essere preparato da semplice sintesi e fasi di purificazione del peptide di MCP-1 e DSPE-PEG (2000)-MCP-1. PAMs hanno molte caratteristiche benefiche per in vivo imaging molecolare come loro self-assembly sotto condizioni blande, biodegradabilità intrinseca e diversità strutturali e chimich...

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori si desidera ringraziare il sostegno finanziario alla University of Southern California, il National Heart, Lung e Blood Institute (NHLBI), R00HL124279, Eli ed Edythe Broad Innovation Award e il L.K. Whittier Foundation Non-cancro Premio di ricerca traslazionale concesso a EJC. Gli autori ringraziano il centro per la microscopia elettronica e microanalisi, centro di eccellenza in NanoBiophysics, centro di eccellenza per la caratterizzazione molecolare e traduzione Imaging Center presso la University of Southern California per assistenza in configurazioni di strumentale.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
1,2-etanedithiolVWRE0032per la sintesi di peptidi
10 mL pipette sierologiche monousoVWR89130-898per colture cellulari
15 mL provette da centrifuga, polipropileneVWR89401-566per varie applicazioni
Acido 2,5-diidrossibenzoico, 99%Fisher ScientificAC165200050per MALDI
25 mL monouso pipette sierologicheVWR89130-900per colture cellulari
2-Mercaptoetanolo, 50 mMThermoFisher Scientific31350010per colture cellulari
5 mL pipette sierologiche monousoVWR89130-896per colture cellulari
50 mL provette da centrifugaVWR89039-658per varie applicazioni
Pallone di coltura da 75 cm2Fisher Scientific13-680-65per coltura cellulare
recipiente di reazione da 75 mLProtein Technologies3000005per la sintesi di peptidi
piastra per colture cellulari a 96 pozzettiVWR40101-346per saggio MTS
Acetonitrile, grado HPLCFisher ScientificA998SK-4per purificazione HPLC
Vetro borosilicato, 1 dramVWR66011-041per la sintesi PAM
Pipetta in vetro borosillicato, punte lungheVWR14673-043per varie applicazioni
Vetrino coprioggetti, 0,16-0,19 mm, 22 x 22 mmFisher Scientific12-542Bper microscopia confocale
Cy5 amminaAbcamab146463per coniugazione di peptidi
Etere dietilico, grado ACSFisher ScientificE138-1per precipitazione di peptidi
Monouso siringhe, 20 mLFisher Scientific14-817-54per purificazione HPLC
Emocitometro a doppio neubauer VWR63510-13per conteggio di cellule
DSPE-PEG(2000) amminaAvanti880128Pper coniugazione di peptidi
DSPE-PEG(2000) maleimmideAvanti880126Pper coniugazione di peptidi
DSPE-PEG(2000)-NHS ester NanocsPG2-DSNS-10Kper la coniugazione con Cy5
Eagle modificato di Dulbecco glucosio medio-altoSigmaAldrich D5796-500MLper colture cellulari
Siero fetale bovino, qualificato, inattivato a caldoThermoFisher Scientific10438026per colture cellulari
Fmoc-L-Ala-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-Aper la sintesi
di peptidiFmoc-L-Arg(Pbf)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-RBFper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Asn(Trt)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-NTper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Cys(Trt)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-CTper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Gln(Trt)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-QTper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Ile-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-Iper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Leu-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-Lper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Lys(Boc)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-KBCper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Phe-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-Fper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Ser(tBu)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-SBper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Thr(tBu)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-TBper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Tyr(tBu)-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-YBper la sintesi di peptidi
Fmoc-L-Val-OH /HBTUProtein TechnologiesPS3-H5-Vper la sintesi di peptidi
Resina Fmoc-Lys(Boc)-wang, 100-200 meshNovabiochem856013per la sintesi di peptidi
Acido formico, grado LC/MS ottimaleFisher ScientificA117-50per la purificazione HPLC
GliceroloVWRM152-1Lper microscopia confocale
Contatore di conteggio manualeFisher ScientificS90189per il conteggio delle cellule
Barre di agitazione magnetiche, VWR58949-006per coniugazione di peptidi
Metanolo, certificato ACSFisher ScientificA412-4per la sintesi di PAM
Kit di saggio colorimetrico per la proliferazione cellulare MTSVWR10191-104per il saggio MTS
N,N-Dimetilformammide, grado di sequenziamentoFisher ScientificBP1160-4per la sintesi di peptidi
N-MetilmorfolinaProtein TechnologiesS-1L-NMMper la sintesi di peptidi
ParaformaldeideFisher ScientificAC416780250per il fissaggio di cellule
PBS, pH 7,4ThermoFisher Scientific10010049per varie applicazioni
Penicillina/streptomicina, 10.000 U/mLThermoFisher Scientific15140122per colture cellulari
Recipiente di sintesi peptidica, 25 mL& nbsp;Fisher ScientificCG186011per la sintesi di peptidi
Acido fosfotungstico Fisher ScientificA248-25per TEM
Spettro di piperidinaP1146-2.5LTGLper sintesi di peptidi
Vetrino per microscopio in vetro semplice 75 x 25 mmFisher Scientific12-550-A3per microscopia confocale
Serbatoi di reagenti, sterili95128093VWR per colture cellulari
Pinzetta autochiudenteTedPella515per TEM
Pellicola di supporto TEMTedPella01814Fper TEM
Acido trifluoroacetico Fisher ScientificBP618-500per la scissione dei peptidi e la purificazione HPLC
TriisopropilsilanoVWRTCT1533-5 mlper la scissione dei peptidi
Soluzione di tripano blu, 0,4%ThermoFisher Scientific15250061per il conteggio delle cellule
VWR231-SA-SEseghettato per uso generaleper microscopia confocale
WEHI-274.1ATCCATCC  CRL-1679sintetizzatore
di peptidi da banco automatizzatoSintetizzatore di peptidi da bancoProtein Technologies
α- acido ciano-4-idrossicinnamico, 99%Sigma Aldrich476870-2Gper MALDI
a forma di uovo Pinzetta, per monociti murini PS3

Riferimenti

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