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Articolo metodologico

Metodi per la gestione temporanea Pupal periodi e misura di ala pigmentazione della Drosophila guttifera

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DOI:

10.3791/56935

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24 gennaio 2018

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In questo articolo

Sommario

Protocolli per la gestione temporanea di pupal periodi e misurazione della pigmentazione ala della Drosophila guttifera sono descritti. Staging e quantificazione della pigmentazione forniscono una solida base per lo studio di meccanismi di tratti di adulti e consentire interspecifico confronto tra lo sviluppo del tratto.

Abstract

Diversificato specie di Drosophila (moscerino della frutta) offrono l'opportunità di studiare i meccanismi di sviluppo e cambiamenti genetici responsabili di cambiamenti evolutivi. In particolare, la fase adulta è una fonte ricca di tratti morfologici per confronto interspecifico, compreso il raffronto di pigmentazione di ala. Per studiare le differenze di sviluppo tra specie, osservazione dettagliata e gestione temporanea appropriata sono necessari per confronto preciso. Qui descriviamo i protocolli per la stadiazione dei periodi pupal e quantificazione della pigmentazione di ala a pois moscerino della frutta, Drosophila guttifera. In primo luogo, descriviamo il metodo di osservazione morfologica dettagliata e definizione di fasi pupal basato sulle morfologie. Questo metodo include una tecnica per la rimozione del pupario, che è il caso di chitinoso esterno della pupa, per consentire l'osservazione dettagliata delle morfologie pupale. In secondo luogo, descriviamo il metodo per misurare la durata delle fasi di pupal definite. Infine, descriviamo il metodo per la quantificazione della pigmentazione di ala sulla base di analisi di immagine utilizzando immagini digitali e software ImageJ. Con questi metodi, possiamo stabilire una solida base per il confronto di processi di sviluppo dei tratti adulti durante fasi pupal.

Introduzione

Alcune delle caratteristiche morfologiche di Drosophila sono diversificate tra specie1,2,3,4,5. Noi possiamo affrontare la questione della diversità come morfologica si pone confrontando i meccanismi di generazione di queste morfologie. Esempi di tali morfologie sono larvale Tricomi, sesso adulto pettini, apparato genitale esterno, pigmentazione addominale e ala pigmentazione6,7,8,

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Protocollo

1. volare stock

  1. Utilizzare Drosophila guttifera per tutti i protocolli seguenti.
  2. Utilizzare fiale di plastica (diametro 25 mm x altezza 96 mm) e spine di cellulosa (diametro 23 mm x altezza 26 mm) per la manutenzione d'archivio. Utilizzare un cibo di farina di mais/zucchero/lievito/agar standard e seguire una pubblicazione descritto tre altre ricette alternative per questa specie2.
    Nota: d. guttifera (numero di azioni 15130-1971.10) è fornito da drosofila specie Stock Center presso la University of California, San Diego. Anche se d. guttifera appartiene il immigrans-tripunctata....

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Risultati

Il periodo pupa di d. guttifera è diviso in 17 tappe (P1 - P15(ii); immagini del rappresentante tre fasi (P1, P5 - 6, P10) sono mostrati nella figura 3e 17 tutte le fasi sono illustrate nella Figura 4). Anche Bainbridge e Bownes17 riconosciuto 20 tappe in d. melanogaster, alcune di queste fasi non poteva essere applicata a d. guttifera. L'ordine di due eventi inerenti allo svilup.......

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Discussione

Descriviamo qui i protocolli per la definizione delle fasi pupal, rimuovendo il pupario per osservazione dettagliata, misurano la durate delle fasi pupal e misurazione dell'intensità delle macchie nere su un'ala a d. guttifera. Questi protocolli possono essere applicati per molti Drosophila e relative specie volare, soprattutto con la pigmentazione di ala.

Descrizione degli eventi inerenti allo sviluppo più dettagliati e approfondita osservazione consentirebbe ulteriore suddi.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno alcun conflitto di interessi.

Ringraziamenti

Ringraziamo Sean B. Carroll e Thomas Werner per fornire scorte volare, Naoyuki fusibile per attrezzature, Byung Seok Jin per la sua assistenza nella contaminazione, Kiyokazu Agata per tutoraggio ed Elizabeth Nakajima per l'editing di inglese. Questo lavoro è stato supportato da KAKENHI 17K 19427 e Takeda Science Foundation.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Drosophila guttiferaThe Drosophila Species Stock Center presso l'U.C. San Diego15130-1971.10Drosophila guttifera, una specie di moscerino della frutta utilizzata in questo articolo
Fiala di plasticaHightechMKC-30Fiala di plastica, per il mantenimento delle mosche
Buzz plugs, fiale e chiusure per flaconi per fiale di vetroFisher ScientificAS-271Tappo di cellulosa, per la manutenzione del bestiame volante
Zucchero morbido biancoMitsui SugarJ-500gZucchero morbido bianco, per alimenti standard di farina di mais/zucchero/lievito/agar Farina di
maisNippon Flour MillsFFarina di mais, per alimenti standard di farina di mais/zucchero/lievito/agar
Semola di mais - CNippon Flour MillsGCSemola di mais - C, per farina di mais/zucchero/lievito/agar standard Polvere
di agarMatsuki Kanten SangyoNo.602Agar in polvere, per farina di mais/zucchero/lievito/agar standard
Lievito di birra seccoAsahi Food & HealthcareY2ALievito di birra secco, per alimenti standard a base di farina di mais/zucchero/lievito/agar
Butile p-idrossibenzoatoNacalai Tesque06327-02Butile p-idrossibenzoato, per alimenti standard a base di farina di mais/zucchero/lievito/agar
EtanoloWako057-00456Etanolo, per alimenti standard a base di farina di mais/zucchero/lievito/agar
Microprovetta a fondo piattoMicroprovetta Ina OpticaCF-0150da 1,5 mL, per raccolta di pupe
CAPSULEFUGETomyPMC-060Mini microcentrifuga, per la raccolta di pupe
Sterilizzato Schale NBSansei Medical01-013Piastra di Petri in plastica (diametro 90 mm x altezza 15 mm)
Rack per provette di sieroIwaki9796-050Utilizzato come camera umida, per l'osservazione di pupe
Corning Falcon Easy-Grip piatto per coltura tissutaleCorning353001Piastra di Petri in plastica (diametro 35 mm x altezza 10 mm)
Piastra per coltura tissutale standard FalconCorning353002Piastra di Petri in plastica (diametro 60 mm x altezza 15 mm)
PuntinaKokuyo51233709Push-pin, per la realizzazione di fori di spillo sul coperchio del microtubo
StereomicroscopioOlympusSZX16Stereomicroscopio, per l'osservazione
morfologica Fotocamera digitaleOlympusDSE-330-AFotocamera digitale, per l'imaging
Nastro biadesivo NICETACKNichibanNW-15SFNastro biadesivo, per la rimozione del pupario
Dumont #5 PinzeFine Science Tools11252-20Pinze, per la rimozione del pupario
Van Gogh VISUAL PennelloTalens JapanGWVR-#5/0Pennello, per la rimozione del pupario
Greiner CELLSTAR Piastra per colture cellulari a 12 pozzettiMerck665-180Piastra per colture cellulari a 12 pozzetti, per la misurazione della durata dei periodi pupali
NaClWako191-01665NaCl, per PBS
KClNacalai Tesque285-14KCl, per PBS
Na2HPO4· 12H2OWako196-02835Na2HPO4· 12H2O, per PBS
KH2PO4Nacalai Tesque28721-55KH2PO4, per filtro a
densità neutra (ND) a gradini PBS 0,04 - 3,0Edmund Optics64-384Filtro a densità graduale, per la calibrazione della misurazione della pigmentazione
SoftwareImageJ NIH1.8.0-101Software ImageJ, per la misurazione dell'intensità delle macchie nere su un'ala (https://imagej.nih.gov)
Vetrino FINE FROSTMatsunami Glass IndFF-001Vetrino in vetro, per la misurazione dell'intensità delle macchie nere su un'ala
Vetro di copertura per microscopio quadrato 18 x 18Matsunami Glass IndC018181Vetrino coprioggetti, per la misurazione dell'intensità delle macchie nere su un'ala

Riferimenti

  1. Carson, H. L., Hardy, D. E., Spieth, H. T., Stone, W. S. The evolutionary biology of the Hawaiian Drosophilidae. Essays in evolution and genetics in honor of Theodosius Dobzhansky. Hecht, M. K., Steere, W. C. , Springer (Meredith Corporation). New York. 437-543 (1970).
  2. Markow, T. A., O'Grady, P. M. Drosophila: a guide to species id....

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Ristampe e permessi

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