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Articolo metodologico

I filamenti intermedi e microtubuli con microscopia di ricostruzione ottico stocastico diretto 2-dimensionale di imaging

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DOI:

10.3791/57087

6 marzo 2018

In questo articolo

Sommario

L'obiettivo generale di questa metodologia è quello di dare le condizioni sperimentali ottimali dalla preparazione del campione per acquisizione di immagini e la ricostruzione al fine di eseguire immagini dSTORM 2D doppio colore dei microtubuli e filamenti intermedi in celle fisse

Abstract

Il citoscheletro, composto di microfilamenti di actina, microtubuli e filamenti intermedi (IF), svolge un ruolo chiave nel controllo della forma delle cellule, la polarità e la motilità. L'organizzazione delle reti di actina e dei microtubuli è stato studiato estesamente, ma quella di IFs non è ancora pienamente caratterizzato. IFs hanno un diametro medio di 10 nm e forma una rete che si estende in tutto il citoplasma delle cellule. Sono fisicamente associate con l'actina e i microtubuli attraverso motori molecolari e linker del citoscheletro. Questa stretta associazione è al centro dei meccanismi normativi che garantiscono la regolazione coordinata delle tre reti del citoscheletro necessari per la maggior parte delle funzioni delle cellule. È pertanto fondamentale per visualizzare IFs da solo e anche insieme a ciascuna delle altre reti del citoscheletro. Tuttavia, se le reti sono estremamente dense nella maggior parte dei tipi di cellule, soprattutto nelle cellule gliali, che rende molto difficile da raggiungere con microscopia di fluorescenza standard la sua risoluzione (risoluzione di ~ 250 laterale nm). Microscopia ottica stocastica diretta di ricostruzione (dSTORM) è una tecnica che permette un guadagno nella risoluzione laterale di un ordine di grandezza. Qui, indichiamo che laterale dSTORM risoluzione è sufficiente per risolvere l'organizzazione densa delle reti se e, in particolare, dei pacchi di se che circondano i microtubuli. Tale stretta associazione è probabile che partecipano alla regolazione coordinata di queste due reti e maggio, spiegare come modello IFs vimentin e stabilizzare la organizzazione dei microtubuli, nonché potrebbe influenzare il traffico vescicolare dipendente dei microtubuli. Più in generale, vi mostriamo come l'osservazione di due componenti citoscheletriche con tecnica dual-color dSTORM porta nuova comprensione nella loro reciproca interazione.

Introduzione

I filamenti intermedi citoplasmatici (IFs) sono 10 nm di diametro omo - o eteropolimeri di un sottoinsieme specifico del tipo di cella di proteine se. IFs partecipare a una vasta gamma di funzioni cellulari quali risposte di motilità, proliferazione e lo stress delle cellule. Loro ruolo chiave è evidenziato dal fatto che più di 90 malattie umane sono direttamente causati da mutazioni in proteine se; per esempio, cambiamenti nella composizione se accompagna la crescita del tumore e la diffusione di1,2,3. Vi è crescente evidenza che i tre sistemi di citoscheletro lavorano in co....

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Protocollo

1. vetrini coprioggetti preparazione (giorno 1, 30 min)

  1. Posizionare le lamelle di vetro di 18 mm nº1.5H (170 µm + /-5 µm) su una cremagliera in plastica.
  2. Inserite la griglia in un becher da 100 mL riempito con acetone e ammollo per 5 min.
  3. Trasferimento del rack in un becher da 100 mL riempito con etanolo assoluto e ammollo per 5 min.
  4. Trasferire il rack in un becher da 100 mL nuovo riempito con etanolo assoluto e porre il becher in un dispositivo di pulizia ad ultrasuoni (Vedi tabella materiali) a temperatura ambiente. Premere "on" e attendere per 10 min.
  5. Inserite la griglia sotto cappa a flusso laminare e lasciare i co....

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Risultati

Un microscopio dotato di 50 mW 405 nm e laser a stato solido da 100 mW 488, 561 e 642 nm, un EMCCD 512x512 fotocamera, un alpha Plan Apo 100 X / 1,46 obiettivo e Band Pass 570-650 / 655 emissione filtri passa-lungo è stato usato per i risultati rappresentativi presentati di seguito.

Figura 1A fornisce un esempio di molecola densità e segnale / rumore che deve essere utilizzato durante l'acquisizione.......

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Discussione

Fasi critiche nel protocollo

Presentiamo qui un protocollo che riduce al minimo gli artefatti nelle immagini dSTORM dei microtubuli e IFs nelle cellule gliali. Gli artefatti possono essere creati in ogni fase della preparazione del campione e la formazione immagine: fissazione, blocco, immunolabeling, deriva durante l'acquisizione, non ottimale lampeggiante condizioni23. Elenchiamo qui di seguito le fasi più critiche.

Pulizia.......

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Dichiarazioni

Gli autori non dichiarano concorrenti interessi finanziari.

Ringraziamenti

Ringraziamo Mickael Lelek, Orestis Faklaris e Nicolas Bourg per la proficua discussione, Andrey Aristov ed Elena Rensen per aiuto con la tecnica di Super-risoluzione e Shailaja Seetharaman per una lettura attenta del manoscritto. Noi riconosciamo con gratitudine Citech UtechS fotonici Bioimmagini (Imagopole) dell'Institut Pasteur (Parigi, Francia), nonché la rete di infrastrutture di Francia-bioimmagini supportato da French National Research Agency (ANR-10-INSB-04; Investimenti per il futuro) e la Région Ile de France (programma Domaine d'Intérêt Majeur-Malinf) per l'uso del microscopio Elyra. Questo lavoro è stato supportato dalla Ligue Contre le Cancer e la French N....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Terreni essenziali minimi (MEM)Gibco41090-028coltura cellulare
aminoacido non essenzialeGibco1140-050coltura cellulare 1/100e
Penicillina-streptomicinaGibco15140-122coltura cellulare 1/100e
Fœ tal Siero BovinoGibco10270-106coltura cellulare 1/10e
0,05 % Tripsina-EDTA (1X)Gibco25300-054coltura cellulare
PBS 10xfischer scientific11540486vetrino coprioggetti per colture cellulari
18 mm n° 1,5HMarienfield/Dominic dutsher900556coprioggetti
soluzione di paraformaldeide (PFA),SigmaF8775fissazione cellulare,
glutaraldeide,SigmaG5882fissazione cellulare
tritone X100SigmaT9284tensioattivo non ionico. Utilizzato per la fissazione cellulare,
boroidruro di sodio (NaBH4),Sigma452904-25MLfissazione cellulare
passivazione del campione BSASigmaA79063% in PBS,
anticorpo monoclonale anti-vimentina (V9), prodotto nel topoprimari SigmaV6630anticorpi primari
anti-alfa tubulina di rattoBioradMCA77Ganticorpi primari
Anticorpo secondario anti-ratto di capra IgG (H+L), Alexa Fluor 555Fisher scientific10635923anticorpi secondari anti-topo
IgG (H+L) anticorpo secondario, Alexa Fluor 647Fisher scientific10226162anticorpi secondari
TetraSpeck Microspheres, 0,1 &; m, blu fluorescente/verde/arancione/rosso scuroFisher scientificT7279perline fluorescenti
Camera magnetica CamlideLive Cell InstrumentCM-B18-1portacampioni magnetico, volume massimo 1,2 mL
Cisteamina (MEA)Sigma30070per il tampone lampeggiante
glucosio ossidasi da Aspergillus nigerSigmaG0543per il tampone
glucosioSigmaper il tampone lampeggiante
catalasi da fegato bovinoSigmaC9322per il tampone lampeggiante
Tris (trizma)SigmaT1503per il tampone lampeggiante
Wash-N-Dry portavetrinicoprioggetti SigmaZ688568
ParafilmSigmaP7793-1EA
pulitore ad ultrasuoniFisher scientific15-335-6
pulitore al plasmaHarrick plasmaPDC-32G-2
, , , , , , , , , , anticorpi , , , lampeggiante per film di paraffina

Riferimenti

  1. Herrmann, H., Aebi, U. Intermediate Filaments: Structure and Assembly. Cold Spring Harb Perspect Biol. 8 (11), (2016).
  2. Huber, F., Boire, A., Lopez, M. P., Koenderink, G. H. Cytoskeletal crosstalk: when three different personalities team up. Curr Opin Cell Biol. <....

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Ristampe e permessi

Tag

Imaging dSTORMSTORM a due colorifilamenti di vimentinareti citoscheletrichepreparazione del campionericostruzione dell immaginemicroscopia a fluorescenzamicroscopia a super risoluzione