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Articolo metodologico

Microscopia di luce-foglio per visualizzazione tridimensionale delle cellule immuni umane

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DOI:

10.3791/57651

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13 giugno 2018

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In questo articolo

Sommario

Qui, presentiamo un protocollo per visualizzare le cellule immunitarie incorporate in una matrice di collagene (3D) tridimensionale utilizzando la microscopia a luce-foglio. Questo protocollo elabora anche come tenere traccia di migrazione cellulare in 3D. Questo protocollo può essere impiegato per altri tipi di cellule in sospensione nella matrice 3D.

Abstract

In vivo, l'attivazione, proliferazione e funzione delle cellule immuni tutti si verificano in un ambiente tridimensionale (3D), per esempio nei linfonodi o tessuti. Fino a data, la maggior parte dei sistemi in vitro si basano su superfici bidimensionali (2D), come piastre di coltura cellulare o vetrini coprioggetti. A condizioni fisiologiche in modo ottimale mimare in vitro, utilizziamo una matrice di collagene 3D semplice. Il collagene è uno dei principali componenti della matrice extracellulare (ECM) ed è stato ampiamente utilizzato per costituire matrici 3D. Per l'imaging 3D, la tecnologia sviluppata di recente la microscopia luce-foglio (noto anche come microscopia di illuminazione su un unico piano) è dotata di acquisizione ad alta velocità, profondità di penetrazione grande, candeggio basso e fotocitotossicità. Inoltre, la microscopia luce-foglio è particolarmente vantaggiosa per misurazioni a lungo termine. Qui descriviamo un protocollo ottimizzato come impostare e gestire le cellule immuni umane, ad esempio primario umani linfociti T citotossici (CTL) e cellule natural killer (NK) nella matrice collagene 3D per l'utilizzo con la microscopia di luce-foglio per l'imaging di cellule vive e campioni fissati. La procedura di acquisizione e analisi di migrazione delle cellule delle immagini sono presentati. Un'attenzione particolare è data per evidenziare i passaggi critici e fattori per la preparazione dei campioni e analisi dei dati. Questo protocollo può essere impiegato per altri tipi di cellule in sospensione in una matrice di collagene 3D e non è limitato alle cellule immuni.

Introduzione

La maggior parte delle conoscenze sulla migrazione di cellule proviene da 2D esperimenti1,2,3, che normalmente si svolgono in una superficie in vetro o in plastica di un cultura/imaging piatto. Tuttavia, uno scenario fisiologico richiede, nella maggior parte dei casi, un microambiente 3D, in cui la matrice extracellulare (ECM) svolge un ruolo determinante. ECM non solo fornisce l'essenziale struttura 3D per mantenere la morfologia cellulare corretto, ma offre anche segnali di sopravvivenza o direzionale spunti per un funzionamento ottimale di molte cellule4<....

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Protocollo

Ricerca effettuata per questo studio con il materiale umano (alloggiamenti di sistema del leucocita riduzione dai donatori di sangue umano) è autorizzata dal comitato etico locale (dichiarazione da 16.4.2015 (84/15; Prof. Dr. Rettig-Stürmer)) e segue le linee guida corrispondenti.

1. preparazione della soluzione neutralizzata collagene (500 µ l)

  1. Trasferire 400 µ l di soluzione di riserva refrigerata collagene (10,4 mg/mL) in una provetta sterile 1,5 mL sotto il cofano di cultura cellulare. Lentamente aggiungere 50 µ l di refrigerati 10 x PBS (pH 7,0-7,3) a 400 µ l di soluzione di riserva refrigerata collagene. Miscelare la soluzio....

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Risultati

Formazione di protrusione durante la migrazione delle cellule T è un processo altamente dinamico, che è dipendente di actina. Per visualizzare la formazione di protrusione di CTL umano primario, transfected transitoriamente una proteina mEGFP fusa per etichettare il citoscheletro di actina in CTL come descritto prima delle11. Un giorno dopo trasfezione, le cellule sono state incorporate nella matrice di collagene. Serie di immagini sono state acquisite ogni 40 s co.......

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Discussione

La maggior parte in vitro le analisi sono effettuata su una superficie 2D, ad esempio in piastre di coltura cellulare, capsule di Petri o sulle lamelle, considerando che in vivo le cellule, soprattutto le cellule immuni, esperienza principalmente un microambiente 3D. La prova emergente indica che modelli di migrazione delle cellule immuni differiscono tra 2D e 3D scenari17. Inoltre, i profili di espressione delle cellule del tumore sono differenti in 2D e 3D-in coltura di tessuti.......

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Dichiarazioni

Gli autori non dichiarano alcun conflitto di interessi finanziario o commercio.

Ringraziamenti

Ringraziamo l'Istituto di clinica Hemostaseology e medicina trasfusionale per la fornitura di sangue del donatore; Carmen Hässig e Cora Hoxha per l'eccellente assistenza tecnica. Ringraziamo Jens Rettig (Saarland University) per il vettore di pMAX modificate, Roland Wedlich-Soldner (Università di Muenster) per il costrutto originale LifeAct-Ruby e Christian Junker (Saarland University) per generare il costrutto LifeAct-mEGFP. Questo progetto è stato finanziato da 1027 Sonderforschungsbereich (progetto A2 a B.Q.) e 894 (progetto A1 a M.H.). Il microscopio di luce-foglio è stato finanziato dalla DFG (GZ: FUGG 19-1 INST 256/4).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Fibricol, soluzione di collagene bovinoAdvanced Biomatrix #5133-20MLMatrice di collagene
0,5 M Soluzione NaOHMerck1091381000per neutralizzare la soluzione di Fibricol
Agarosio a bassissimo punto di fusioneAffymetrix32821-10GMPreparazione del campione in
Dynabeads Kit di cellule T CD8 umane intatteThermo Fisher11348DIsolamento di cellule T umane primarie CD8+ da PBMC
Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 per l'espansione e l'attivazione delle cellule TThermo Fisher11132DAttivazione di popolazioni di CTL
Interleuchina-2 ricombinante umanaThermo FisherPHC0023Stimolazione di CTL
P3 in coltura Kit di soluzione primariaTrasfezione
Lonza V4XP-30XXAnticorpo &alfa;-PFN1, coniglio, IgGAbcamab124904IF
Alexa Fluor 633 FalloidinaThermo FisherA22284IF
CellMask Orange Plasma membrana ColorazioneThermo FisherC10045Etichetta cellulare fluorescente
Tween 20SigmaP1379-250mLIF
Triton X-100Eurobio018774IF
DPBS Soluzione salina tamponata con fosfato di DulbcoThermo Fisher14190250IF
Albumina sierica bovinaSigmaA9418-100GIF
Capra &alfa; Coniglio 568, IgG, coniglioThermo FisherA-11011IF
Lightsheet Z.1 (Microscopia a foglio luminoso)ZeissN.A.
Cappa per coltura cellulareThermo FisherHeraSafe KS Incubatore
per coltura cellulare HERACell 150i Thermo FisherN.A.
Centrifuga 5418 e 5452EppendorfN.A.
PippettesEppendorf3123000039, 3123000020 3123000063
punte PippetteVWR89079-444, 89079-436, 89079-452 
Provette da 15 mLSarstedt 62.554.002
Capillari 50 &; LVWR (Marca)613-3373Zeiss Preparazione del campione LSFM
Stantuffo per capillariVWR (Marca)BRND701934"Timbri con punta in teflon" Preparazione del campione LSFM
MColorPunte per pHPhast Merck1095430001per testare il pH delle siringhe neutralizzate Fibricol
BD Plastipak da 1 mlBDZ230723  ALDRICHPreparazione alternativa del campione
Argilla da modellare (Hasbro Play-Doh A5417EU7)Play-DohN.A.
Convertitore di file ImarisBitplanedisponibile all'indirizzo http://www.bitplane.com Converti i file di imaging in formato file Imaris
Imaris 8.1.2 (MeasurementPro, Track, Vantage)Bitplanedisponibile all'indirizzo http://www.bitplane.com Analisi di dati di imaging 3D e 4D

Riferimenti

  1. Decaestecker, C., Debeir, O., Van Ham, P., Kiss, R. Can anti-migratory drugs be screened in vitro? A review of 2D and 3D assays for the quantitative analysis of cell migration. Med Res Rev. 27 (2), 149-176 (2007).
  2. Doyle, A. D., Petrie, R. J., Kutys, M. L., Yamada, K. M.

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Ristampe e permessi

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