Campionamento, ordinamento e caratterizzando microplastiche negli ambienti acquatici con carichi di materiale solido in sospensione alta e grandi detriti galleggianti

Plastica in primo luogo è stata osservata nell'oceano più presto 1930s¹. Stime recenti della gamma di detriti marini di plastica da oltre 243.000 tonnellate metriche (MT) di plastica sulla superficie dell'oceano a MT 4,8-12,7 milioni di plastica entrando sull'oceano da terrestre fonti annualmente^2,3. I primi studi su detriti marini plastica focalizzata sulla macroplastics (> 5 mm di diametro) come sono facilmente visibili e quantificabili. Tuttavia, recentemente è stato scoperto che rappresentano macroplastics < 10% dei detriti in plastica, dal conteggio, nell'oceano, che indica che la stragrande maggioranza dei detriti in plastica è microplastic (< 5 mm di diametro)².

Microplastiche sono suddivise in due gruppi: microplastiche primario e secondario. Microplastiche primari sono costituiti da materie plastiche che sono fabbricate a un diametro < 5 mm e includono nurdles, crudo pellet usato per fare prodotti di consumo, microsfere usato come esfolianti in prodotti di cura personale (ad es., lavaggio del viso, scrub corpo, dentifricio in pasta) e abrasivi o lubrificanti nell'industria. Microplastiche secondari vengono creati all'interno dell'ambiente come detriti di plastica più grandi sono frammentato da fotolisi, abrasione e decomposizione microbica^4,5. Fibre sintetiche sono anche microplastiche secondario e una preoccupazione crescente. Può rilasciare un singolo indumento > 1.900 fibre per lavare in lavatrice domestica⁶. Queste microfibre, come pure di microsfere da prodotti di cura personale, vengono lavati giù gli scoli e nel sistema fognario prima di entrare in impianti di trattamenti delle acque reflue. Murphy (2016) trovato che un impianto di trattamento delle acque reflue che serve una popolazione di 650.000 ridotto la concentrazione di microplastic di 98,4% da affluente di effluente, ancora 65 milioni microplastiche rimase in acque reflue e fanghi ogni giorno⁷. Anche con alte percentuali di microplastiche viene rimosso durante i processi di trattamento, milioni, forse miliardi, di microplastiche passano attraverso impianti di trattamento delle acque reflue al giorno e immettere acque superficiali degli effluenti^{6,8 ,9,10,11}.

A causa del loro rilascio nell'ambiente, microplastiche sono stati trovati nei tessuti digestivi e respiratori di organismi marini attraverso tutti i livelli trofici^12,13,14,15. Loro impatto dopo l'assorbimento è variabile, con alcuni studi danno non osservazione, mentre altri dimostrano numerosi effetti quali fisica e chimica del tessuto danno^4,6,14,15. A causa di queste scoperte, l'interesse in questo campo è aumentato negli ultimi cinque decenni. Tuttavia, solo recentemente hanno cominciati a quantificare i detriti in plastica, particolarmente microplastiche, nei sistemi d'acqua dolce, come fiumi e laghi, o valutare l'effetto sugli organismi che abitano in questi habitat^{12,16, studi 17,18}. I fiumi sono una fonte importante di plastica detriti trovati nell'oceano come ricevono scarichi di acque reflue e il deflusso di acque superficiali che contengono microplastiche e macroplastics.

Il protocollo dettagliato qui può essere utilizzato per raccogliere campioni di microplastic dove le reti da posta derivanti non sono realizzabili; in particolare, negli ambienti acquatici con alte concentrazioni di sedimenti sospesi e grandi detriti come il fiume Mississippi galleggianti. Lo spartiacque del fiume del Mississippi è uno dei più grandi del mondo ed ha una popolazione di > 90 milioni di persone, probabilmente rendendola una delle maggiori fonti di detriti in plastica per l'oceano^19,20. Ogni anno, il fiume del Mississippi gli scarichi una media di 735 km³ di acqua dolce nel Golfo del Messico, insieme con alte concentrazioni di sedimenti sospesi (~ 60 a > 800 mg/L) e grandi detriti^13,21. Sono stati raccolti campioni di acqua a due profondità (cioè, superficie e profondità di 0,6) in varie località lungo il fiume Mississippi e i suoi affluenti in contenitori di polietilene a bassa densità (PE) 1L traslucido utilizzando una pompa peristaltica. In laboratorio, i campioni sono stati filtrati utilizzando nylon mesh setacci e filtri a membrana estere mista cellulosa simultaneamente con un cilindro di cloruro di polivinile (PVC) su misura 63,5 mm (2,5 pollici) con giunti di Unione per inserire i filtri e setacci²². L'inclusione delle unioni di PVC nel dispositivo di filtrazione permette per la filtrazione di come tante o poche classi di dimensione delle particelle come desiderato. Inoltre, può essere utilizzato per catturare microplastic detriti fino a dimensioni inferiori al micron utilizzando filtri a membrana quando si studia fibre sintetiche. Una volta filtrato, i campioni sono stati essiccati e materie plastiche sospette sono state identificate e ordinate dalla maglia setacci e filtri a membrana sotto un microscopio stereoscopico. Materie plastiche sospetta quindi sono state esaminate usando micro-attenuato di riflettanza totale spettroscopia infrarossa trasformata di Fourier (micro ATR-FTIR) per eliminare i materiali non sintetici o per determinare il tipo di polimero. Considerando le dimensioni di microplastic polveri e fibre, la contaminazione è all'ordine del giorno. Fonti di contaminazione includono la deposizione atmosferica, abbigliamento, attrezzature di laboratorio e di campo, come pure deionizzata (DI) fonti d'acqua. Più passaggi sono incluse in tutto il protocollo per ridurre la contaminazione da varie fonti durante lo svolgimento di tutte le fasi dello studio.

1. raccolta di campioni di acqua

1. Raccogliere campioni d'acqua e acqua dati di qualità di interesse in barca dove il fiume è ben mescolato, idealmente alle posizioni dove la fase di fiume o di scarico è noto (ad esempio, stazioni di misura di United States Geological Survey (USGS)). ²⁰ per assicurare che l'acqua è ben mescolata, guida la barca utilizzando un misuratore portatile immerso nel fiume dove la conducibilità rimane relativamente costante.
2. Presso i siti di campionamento, record posizione coordinate e profondità. Per trovare la profondità di 0,6, basta moltiplicare la profondità totale di 0,6. Misura parametri di qualità dell'acqua di interesse (ad es., torbidità, temperatura, conducibilità, pH e ossigeno disciolto (DO)) utilizzando un misuratore portatile. Per misurare i parametri, pompa acqua campione da profondità desiderata in un contenitore largo-bocca utilizzando la pompa peristaltica e immediatamente prendere le misure (punto 1.5).
3. Utilizzare una pompa peristaltica con tubazione per ottenere campioni dalla superficie e profondità di 0,6. Allegare la lunghezza corretta della tubazione della pompa per la profondità specificata.
   1. A causa delle forti correnti in sistemi fluviali, allegare una catena di 6,4 mm saldata al tubo della pompa utilizzando fascette per aiutare il peso della tubazione. Alla fine della catena, inserire un blocco peso o cemento per ulteriore peso della catena e montaggio della tubazione.
      Attenzione: Non collegare il blocco di cemento o di peso direttamente al tubo della pompa.
4. Posizionare l'estremità degli effluenti del tubo sopra il bordo della barca, dall'abbigliamento che potesse far fibre. Abbassare lentamente la fine influente del tubo fino alla profondità desiderata (cioè, la superficie o la profondità di 0,6). Quindi, eseguire la pompa in senso inverso per spurgare il tubo con aria per almeno 30 s. Aria di spurgo, invertire la direzione di pompa e risciacquare il tubo con l'acqua del campione alla profondità desiderata, consentendo all'acqua di drenare fuori dalla barca o in un contenitore per rifiuti. Fermare la pompa dopo il tubo è stato sciacquato per almeno 30 s.
5. Sciacquare il contenitore utilizzato per misure di qualità dell'acqua tre volte con acqua, scarico acqua di risciacquo ogni volta. Una volta risciacquato, riempire il contenitore con acqua campione e misurare i parametri di qualità dell'acqua di interesse utilizzando un misuratore portatile (punto 1.2).
6. Raccogliere un sottocampione di microplastic inserendo l'effluente di tubazione in un contenitore di 1 L con etichetta, che è stato pre-risciacquato con almeno 250 mL di acqua DI tre volte. Quindi, risciacquare il contenitore altre tre volte con l'acqua del campione, eliminando l'acqua di risciacquo ogni volta. Una volta che il contenitore di microplastic viene sciacquato, riempirlo con il campione.
7. Utilizzando lo stesso metodo di pompa peristaltica descritto al punto 1.6, raccogliere un sottocampione per solidi sospesi totali (SST) in un flacone da 250 mL con etichetta, che è stato pre-risciacquata con almeno 100 mL di acqua DI tre volte. Sciacquare la bottiglia tre volte con acqua di campione, scartando l'acqua di risciacquo ogni volta. Una volta che il contenitore di TSS è risciacquato, riempirlo con il campione.
8. Raccogliere triplici copie di campo e gli spazii in bianco almeno una volta al giorno nel campo, nello stesso modo descritto pochi passi 1.6-1.7, per scopi di qualità assurance/quality control (QA/QC). Per raccogliere un campo vuoto, portare due contenitori 1 L DI acqua al campo. Dopo spurgo della tubazione della pompa con aria, aprire il primo contenitore DI acqua e sciacquare il tubo della pompa utilizzando il metodo descritto al punto 1.4. Una volta che il tubo è risciacquato, aprire il secondo contenitore di acqua DI e pompa in un contenitore vuoto di 1 L e una bottiglia da 250 mL per microplastic e TSS blanks, rispettivamente.
9. È possibile memorizzare il microplastic e sottocampioni di TSS sul ghiaccio fino al ritorno al laboratorio, dove verranno archiviati a-20 ° C fino a quando non vengono elaborati.
   Attenzione: Assicurarsi di lasciare qualche spazio di testa nei contenitori del campione affinché non vengano danneggiati a causa di espansione del ghiaccio quando si congela.
   Nota: Il protocollo può essere messo in pausa qui.

2. TSS determinazione

1. Uso United States Environmental Protection Agency (EPA) metodo 160,2 per determinare TSS con sottocampioni 250 mL raccolti nel campo²³. Confrontare i valori calcolati di TSS con la plastica totale trovata.

3. montaggio del dispositivo di filtrazione Microplastic

1. Sciacquare abbondantemente la filtrazione dispositivo e nylon mesh setacci (Figura 1) tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata. Inserire setacci a maglia delle dimensioni dei pori desiderata (ad es., 50 µm, 100 µm, 300 µm, 500 µm) in ogni unione congiunta con poro dimensione decrescente dall'alto verso il basso del dispositivo di filtrazione (Figura 1A). Sigillare ogni unione congiunta ermeticamente per prevenire le infiltrazioni.
2. Piegare i misto cellulosa ester membrana filtro/i (142 mm di diametro) di dimensioni del poro desiderata (ad es., 0,45 µm) in una forma di cono e inserirlo nel dispositivo di filtrazione:
   Nota: Piegare la membrana filtrante fornirà più superficie per impedire l'intasamento del filtro.
   1. Bagnare il filtro a membrana con dell'acqua distillata. Umido, piegare la membrana filtrante in una forma di cono con un diametro che si inserisce il dispositivo di filtrazione. Inoltre, piegare un piccolo labbro lungo il bordo del cono in modo che si adatta sopra la parte superiore dell'Unione congiunta (Figura 1B).
      Attenzione: La membrana filtrante deve essere bagnata prima di piegare per evitare strappi.
   2. Posto il cesto di maglia in acciaio inox nell'ultima unione congiunta (Figura 1). Posizionare il filtro a membrana a forma di cono nel Cestino (Figura 1). Piegare il labbro del filtro membrana sopra il bordo dell'Unione congiunta.
      Nota: Il cestello in rete sosterrà il filtro e ridurre le rotture dopo aver applicato un vuoto.
3. Posto una maglia del setaccio con il più piccolo formato del poro desiderata (ad es., 50 µm) sopra la membrana filtrante nell'ultima Unione comune visto in Figura 1.
   Nota: Ciò fornirà un sostegno supplementare per tenere il filtro a membrana in posizione durante la filtrazione.
4. Una volta che tutti i giunti di Unione sono sigillati ermeticamente, collegare il tubo dalla parte superiore del pallone filtrante alla base del dispositivo di filtrazione. Quindi collegare il tubo dal lato del pallone filtrante per la pompa del vuoto come illustrato nella Figura 2.

Figura 1 : Montaggio del dispositivo di filtrazione. (A) il dispositivo di filtrazione è assemblato mettendo setacci di maglie di dimensione dei pori desiderata nei giunti di Unione superiori. (B), la cellulosa mista estere membrana filtro/i devono essere piegati in una forma conica per adattarsi al diametro del dispositivo di filtrazione; il cono deve includere un piccolo labbro per adattarsi sopra il bordo dell'Unione congiunta per fissare il filtro in luogo. (C) A cestello in rete viene inserito nell'Unione per aggiungere stabilità per la membrana filtrante. (D), il filtro a membrana piegato è aggiunto al carrello della maglia e le maglie più piccole del setaccio sono posizionata sopra la parte superiore della membrana filtrante. Dispositivo di filtrazione (E) completamente assemblato. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 2 : Assemblea del pallone e della pompa filtro. Un pallone filtrante è collegato all'adattatore vuoto dispositivo di filtrazione utilizzando un tubo in vinile trasparente. Il pallone filtrante viene quindi collegato alla pompa del vuoto. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

4. campione filtrazione

1. Raccogliere gli spazii in bianco di attrezzature prima della filtrazione ogni volta che il dispositivo è montato. Sciacquare accuratamente il dispositivo tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata prima il vuoto è raccolti. Questi spazi vuoti vengono raccolti utilizzando la procedura descritta nei passaggi 4.2-4.4.
2. Accendere la pompa del vuoto. Assicurarsi che la pressione della pompa a vuoto non superiore a 127 mm Hg, o la membrana filtrante potrebbe strapparsi.
   Attenzione: A seconda della portata di filtrazione del campione, la pressione potrebbe aumentare all'interno del dispositivo di filtrazione se sedimento intasa i setacci a maglia o filtri a membrana. Questo potrebbe potenzialmente portare ad una rottura nel filtro membrana prima di raggiungere una lettura di 127 mm Hg. Per questo motivo, guardare da vicino la pressione come potrebbe dover essere regolato sotto 127 mm Hg su una base di campione per campione.
3. Utilizzare un cilindro graduato da 500 mL, triple risciacquato con almeno 250 mL di acqua deionizzata, per misurare il volume totale del campione. Registrare il volume e trasferire il campione dal cilindro graduato per il dispositivo di filtrazione.
   Attenzione: A seconda delle dimensioni del campione d'acqua e il pallone filtrante, il pallone filtrante potrebbe essere necessario essere svuotato più volte durante la filtrazione del campione.
   1. Per svuotare il pallone filtrante, spegnere la pompa e scollegare i due tubi flessibili dal pallone. Svuotare la beuta in un contenitore separato dei rifiuti.
      Attenzione: Mantenere l'acqua filtrata campione fino a quando l'intero campione è stato filtrato e si conferma che la membrana filtrante è intatta.
   2. Per continuare il ciclo di filtrazione, ricollegare i tubi al pallone filtrante, come descritto al punto 3.4 e accendere la pompa.
4. Una volta che l'intero campione è stato filtrato, lavare il contenitore del campione e il cilindro graduato tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata. Dopo ogni risciacquo, filtrare l'acqua usata per risciacquare il contenitore e cilindro graduato per garantire tutti i particolati sono stati filtrati.

5. Smontaggio del dispositivo di filtrazione Microplastic

1. Sciacquare le pareti del dispositivo di filtrazione tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata per garantire che tutte le particelle sono stati filtrati e nessun rimangono sul dispositivo di filtrazione.
2. Spegnere la pompa del vuoto, quindi attentamente Svitare e staccare il primo sindacato. Accendere la pompa e utilizzare una bottiglia DI acqua per sciacquare i bordi del giunto dell'Unione. Lavare particolato ai bordi della maglia del setaccio nel centro per garantire che essi sono tutti raccolti.
3. Spegnere la pompa e rimuovere con cautela il setaccio con maglie con il forcipe pulito, facendo attenzione a non toccare le particelle sulla superficie del setaccio della maglia. Inserire il setaccio con maglie in un piatto coperto di Petri e asciugare a 60 ᵒC per 24 h. Una volta asciutto, i campioni possono essere conservati fino a quando possono iniziare l'analisi.
4. Ripetere i passaggi da 5.1-5.3 per ogni articolazione dell'Unione un setaccio con maglie di alloggiamento.
5. Per l'ultima unione congiunta che ospita un filtro a membrana e setaccio maglia, ripetere i passaggi da 5.1-5.3 per il setaccio con maglie.
   Attenzione: Prestare attenzione quando risciacquo il setaccio con maglie, come campione può essere perso se sciacquato sotto la membrana filtrante.
6. Accendere la pompa del vuoto e sciacquare i bordi del filtro membrana con una bottiglia DI acqua. Lavare particolato ai bordi del filtro membrana al centro per garantire che il campione completo è filtrato. Prima di rimuovere il filtro a membrana, assicurarsi che tutta l'acqua è passata attraverso di essa e che l'acqua non è pool sulla sua superficie.
   Attenzione: Ancora una volta, stare attenti durante il risciacquo del filtro a membrana come campione può essere perso se risciacquati sotto esso.
7. Rimuovere con cautela e si dispiegano il filtro a membrana con il forcipe. Inserire il filtro a membrana in una capsula di Petri o sacchetto di carta appropriato per il suo diametro.
   Nota: La membrana filtrante deve essere umida mentre gestito per evitare strappi.
8. Asciugare il filtro membrana coperto in forno a 60 ᵒC per 24 h. Una volta asciutto, conservare i campioni fino a quando possono iniziare l'analisi.
   Nota: Il protocollo può essere messo in pausa qui.

6. particolato analisi

1. Lasciare il setaccio con maglie o membrana filtro di Petri e togliere solo il coperchio per iniziare esaminando il campione per microplastiche. Questo farà sì che se eventuali particelle cadono con il filtro a maglia setaccio o membrana che resteranno in di Petri, che può essere analizzato dopo tutte le particelle vengono rimossi dal filtro a setaccio o membrana rete.
2. Esaminare il filtro a maglia setaccio o membrana sotto uno stereomicroscopio (ingrandimento X 14-90) per identificare fibre e particelle di plastica sospetta. Utilizzare i seguenti criteri quando individui sospette materie plastiche: nessuna struttura cellulare, le fibre sono spessore uguale in tutto, e le particelle non sono lucido²⁴.
3. Rimuovere tutti i sospetti di plastica dal filtro maglia setaccio o membrana e inserirli in una fiala di raccolta contenente etanolo al 70%. Registrare il colore e la forma (ad es., particolato, fibra, pellicola, ecc.) di ogni sospetto di plastica.
4. Una volta che tutte le materie plastiche sospetta sono rimossi dal filtro maglia setaccio o membrana e quantificate, esaminare il coperchio ed il fondo del piatto Petri seguendo passaggi 6.2-6.3.
5. Dopo la maglia setaccio o filtro a membrana e capsula di Petri sono state esaminate e tutte le materie plastiche sospetta rimosso e quantificato, posizionare le particelle o fibre dalla fiala di raccolta su un vetrino rivestito in alluminio 12 slot per analisi usando un micro ATR-FTIR.
   Nota: Non è sempre fattibile per testare ogni sospetto plastica sulla micro ATR-FTIR. Pertanto, "strategicamente scegliere" l'importo che affronterà gli obiettivi dello studio e anomalie nella plastica sospetti (ad esempio, un numero elevato di particelle o fibre simili)²⁵. In senso generale, verificare come molti sospetti materie plastiche come possibile, ma non meno di 20%.
   1. Una volta ritenuta sospetto delle materie plastiche sono analizzate utilizzando micro ATR-FTIR, utilizzo di database spettrale per determinare se un dato campione è di plastica e, in caso affermativo, determinare il tipo di polimero di plastica.

Per convalidare i tassi di recupero del presente protocollo, tre campioni (V1V -3) dalla baia di Oso, Corpus Christi, Texas (adiacente il Texas A & M University Campus di Corpus Christi), sono stati addizionati con particolati PE 10 blu (che vanno da 50-100 µm in diametro) e 50 fibre di nylon verde di varie lunghezze (Figura 3). TSS del campione è stata calcolata (sezione 2) e quindi i campioni sono stati filtrati utilizzando i metodi descritti nelle sezioni 3-5. Il blu PE polveri e fibre di nylon verde poi sono stati separati e quantificati (tabella 1). Altre fibre e particelle sono state osservate sulla maglia setacci e filtri a membrana, probabilmente derivati dal campione di acqua di Oso Bay. In media, 100% del particolato PE e il 92% di fibre di nylon sono stati recuperati. Una perdita di fibre può essere dovuto una piccola quantità di perdita del campione durante la filtrazione o identificazione errata.

Un vuoto di attrezzature sono stati raccolti dal dispositivo di filtrazione filtrando 1000 mL di acqua deionizzata. Questo vuoto è stato analizzato usando 100 µm e 50 µm maglia setacci e un filtro a membrana da 0,45 µm. Un totale di 7 fibre (blu e trasparente) sono stati trovati nell'apparecchiatura in bianco. Questa contaminazione avrebbe potuto essere dal dispositivo di filtrazione, attrezzature di laboratorio, la deposizione atmosferica o DI acqua. Tuttavia, le fibre non erano simili al blu PE polveri e fibre di nylon verde utilizzati per i campioni di spike.

Questo protocollo è stato creato per processare i campioni dallo spartiacque del fiume Mississippi, tra cui mainstem Mississippi River e il fiume Missouri. Analisi preliminari dal fiume Mississippi e Missouri River ha avuto una media TSS di 63 mg/L. Mentre i valori di TSS di Oso Bay sono in genere inferiori a quelli osservati nel bacino del fiume Mississippi, sedimento è stato intenzionalmente disturbato prima della raccolta dell'acqua per simulare le più alte concentrazioni di materiale solido in sospensione che potrebbero essere incontrate nel grande fiume sistemi. Il TSS medio nei campioni Oso Bay era 1.865 mg/L, che è ~ 30 volte superiore il TSS calcolato per i campioni del fiume Mississippi e Missouri River. I campioni di Oso Bay torbidi suggeriscono filtrazione successo per campioni con un TSS fino a ~ 1.800 mg/l usando le tecniche descritte qui.

Figura 3 : Polveri e fibre utilizzate per la convalida di recupero percentuale. Immagine di due blu PE particolato e di due fibre di nylon verde in una gamma dei formati utilizzati a picco i campioni di convalida da Oso Bay a Corpus Christi, Texas. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Tabella 1: risultati da campioni convalida. Un determinato numero di fibre di nylon verde e blu PE particolati sono stati aggiunti ai campioni prelevati da Oso Bay a Corpus Christi, Texas, per convalidare il protocollo di analisi e di dispositivo di filtrazione. Tre campioni di convalida microplastic (V1V -3) e un campione di TSS sono state scattate nella stessa posizione sulla riva del Oso Bay. Le fibre e particelle sono stati quantificati per ogni dimensione dei pori e un totale è stato calcolato per ogni campione di validazione. Con una quantità nota di fibre e di particelle utilizzati a picco i campioni e il totale recuperato da ciascun campione, il recupero percentuale è stato calcolato.

Il protocollo è stato progettato anche per fiumi di campione da due profondità: la superficie (la profondità del fiume con il più alta velocità) e 0,6-profondità (la profondità del fiume con velocità circa media per la colonna intera acqua). Campioni dal fiume Mississippi e Missouri River (tabella 2) sono stati raccolti e analizzati come descritto sopra. Per esaminare l'effetto di profondità sulla concentrazione di microplastic, sono stati prelevati i campioni di primi e secondo nella stessa posizione (cioè, il fiume del Mississippi a Alton, Illinois) ma a profondità diverse. Per esaminare i possibili effetti di campionamento posizione durante il caricamento di microplastic, sono stati prelevati i campioni primi e la terzi alla stessa profondità, ma in luoghi diversi (cioè, il fiume Mississippi a Alton, Illinois e il fiume Missouri sopra Saint Louis, Missouri). Esempi di fibre e particelle trovati nei campioni di bacino del fiume Mississippi preliminari sono mostrati in Figura 4.

Tabella 2: i dati di raccolta e analisi di esempio di fiume del Mississippi spartiacque. Nei pressi di USGS stazioni presso il fiume Mississippi e Missouri River di misura sono stati raccolti campioni preliminari. Profondità (m), torbidità (NTU) e TSS (mg/L) sono stati misurati per ogni sito. Campioni sono stati filtrati e analizzati in seguito questo protocollo. Fibre e particelle sono stati quantificati per 50 µm e la dimensione dei pori di 100 µm mesh setacci, nonché un filtro a membrana da 0,45 µm. A causa di una mancanza di materiali raccolti su un setaccio con maglie 500 µm, questa dimensione è escluso dai risultati presentati.

Figura 4 : Esempio polveri e fibre trovano in campioni preliminari dallo spartiacque del fiume Mississippi. Immagini di fibre e di particelle quantificati in un campione (tabella 2) scattato dalla superficie del fiume del Mississippi a Alton, Illinois. (A) immagine di due fibre blu che variano nel formato su un filtro a membrana da 0,45 µm. (B) immagine di un rosso del particolato e varie fibre trovate su un setaccio con maglie 50 µm, mostrando la gamma in colore, dimensione e forma di microplastiche trovato nel bacino del fiume Mississippi. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Gli autori non hanno nulla a rivelare.