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Articolo metodologico

Analizzando le dimensioni, la forma e la direzionalità delle reti dei Astrocytes accoppiato

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DOI:

10.3791/58116

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4 ottobre 2018

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In questo articolo

Sommario

Qui presentiamo un protocollo per valutare l'organizzazione di reti astrocytic. Il metodo descritto riduce al minimo la distorsione per fornire misure descrittivi di queste reti come il conteggio delle cellule, dimensioni, area e posizione all'interno di un nucleo. Anisotropia è valutato con un'analisi vettoriale.

Abstract

È diventato sempre più chiaro che gli astrociti modulano la funzione di un neurone non solo a livello sinaptico e cella singola, ma anche a livello di rete. Gli astrociti sono fortemente collegati tra loro attraverso giunzioni di gap e accoppiamento attraverso queste giunzioni è dinamico e altamente regolato. Un concetto emergente è che funzioni astrocytic sono specializzate e adattate per le funzioni del circuito neuronale a cui sono associati. Pertanto, metodi per misurare i vari parametri delle reti astrocytic sono necessari per meglio descrivere le regole che disciplinano la loro comunicazione e l'accoppiamento e per capire meglio le loro funzioni.

Qui, utilizzando il software di analisi di immagine (ad es., ImageJFIJI), descriviamo un metodo per analizzare immagini confocal di reti astrocytic rivelati da tintura-accoppiamento. Questi metodi consentono di 1) un rilevamento automatizzato e imparziale delle cellule con etichettate, 2) calcolo della dimensione della rete, 3) calcolo dell'orientamento preferenziale della tintura diffuse all'interno della rete e 4) riposizionamento della rete all'interno dell'area di interesse .

Questa analisi consente di caratterizzare astrocytic reti di una particolare area, confrontare reti di diverse aree associate a funzioni diverse o reti ottenute in condizioni diverse che hanno effetti diversi sull'accoppiamento. Queste osservazioni potrebbero portare a importanti considerazioni funzionali. Per esempio, analizziamo le reti astrocytic di un nucleo trigeminale, dove precedentemente abbiamo indicato che accoppiamento astrocytic è essenziale per la capacità dei neuroni di passare loro schemi di attivazione da tonico per rottura ritmica1. Misurando le dimensioni, confinamento e orientamento preferenziale delle reti astrocytic in questo nucleo, possiamo costruire ipotesi sui domini funzionali che circoscrivono. Parecchi studi suggeriscono che diverse altre aree cerebrali, tra cui la corteccia barile, oliva superiore laterale, glomeruli olfattivi e sensoriali nuclei nel talamo e corteccia visiva, per citarne alcuni, possono beneficiare di una simile analisi.

Introduzione

Molti studi hanno descritto come il dialogo di neuroni-astrociti a livello sub-cellulare o sinaptico può avere implicazioni in funzioni neuronali e trasmissione sinaptica. È affermato che gli astrociti sono sensibili ai circostanti attività neuronale; Infatti, essi hanno recettori per neurotrasmettitori molti tra cui glutammato, GABA, acetilcolina e ATP (Vedi recensioni precedentemente pubblicate2,3,4). In cambio, astrocitari elabora elementi sinaptica Sheath e attività neuronale influenza entrambe c'e presso siti extrasynaptic regolazione dell'omeostasi ionica extracellulare....

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Protocollo

Tutte le procedure di dimora secondo le regole di ricerca canadese istituti di salute e sono state approvate dal comitato di uso e cura degli animali University di Montreal.

1. preparazione di fettine di cervello di ratto

  1. Preparare 1 L di una soluzione a base di saccarosio (tabella 1) e 1 L di fluido cerebrale-spinale artificiale standard (aCSF) (tabella 2).
  2. Bolla la soluzione basata su saccarosio con un mix di 95% O2 e 5% CO2 (carbogen) per 30 min prima di posizionarlo a-80 ° C per circa 30 min, fino a quando la soluzione è freddo ma non completamente congelato. Ut....

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Risultati

Accoppiamento tra le cellule del cervello non è statico ma piuttosto dinamicamente regolato da molti fattori. I metodi descritti sono stati sviluppati per analizzare reti astrocytic ha rivelati in condizioni diverse e a capire la loro organizzazione in NVsnpr. Questi risultati sono stati già pubblicati1. Abbiamo effettuato biocitina riempimento dei astrocytes singolo nella parte dorsale del NVsnpr in tre diverse condizioni: a riposo (in condizioni di controllo in a.......

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Discussione

Esiste un numero di metodi elettrofisiologici per valutare funzionale accoppiamento tra astrociti23,24. Tuttavia, questi metodi non forniscono informazioni circa la disposizione anatomica delle reti astrocytic. Una serie di studi hanno già dimostrato che "tintura - o tracciante-accoppiamento", come fatto qui, si verifica solo in una frazione di accoppiato le cellule che vengono rilevate da metodi elettrofisiologici25,

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è finanziato da istituti canadesi di ricerca sanitaria, Grant/premio numero: 14392.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
NaClFisher ChemicalsS671-3
KClFisher ChemicalsP217-500
KH2PO4Fisher ChemicalsP285-500
MgSO4Fisher ChemicalsM65-500
NaHCO3Fisher ChemicalsS233-500
C6H12O6 Destrosio anidroFisher ChemicalsD16-500
CaCl2 disidratatoSigmaC70-500
SaccarosioSigmaS9378
Acido D-gluconico sale di potassioSigmaG45001
MgCl2 anidroSigmaM8266
HEPESSigmaH3375
EGTASigmaE4378
ATPTris SaleSigmaA9062
GTPTris SaleSigmaG9002
BiocitinaSigmaB4261
Carbenoxolone sale disodicoSigmaC4790
complesso avidina-biotina : Kit ABCVestor laboratoriesPK-4000
Streptavidina-alexa 594Sonde molecolariS11227
TritonFisher ChemicalsBP151-500
XyleneFisher ChemicalsX5-1
Mezzo di montaggio acquoso 1 : Fluoromount-GSouthernBiotech0100-01
Terreno di montaggio in resina sintetica a base di toluen : PermountFisher ChemicalsSP15-100
Banco di essiccazione per vetriniFisherbrand11-474-470
VibratomoLeicaVT 1000S
Vetro di copertura per microscopioFisherbrand12-544A
Vetrino per microscopio ColorFrostFisherbrand12-550-413
PFAFisherchemicals04042-500
Microscopio confocale Olympus FluoView FV 1000Olympus
40X Lente ad immersione in acquaOlympusLUMPLFLN40XW
20X Lente ad immersione in acquaOlympusXLUMPLFL20XW
4XXLFLUOR4X
Micropipetta estrattoreSutter InstrumentP97
MicromanipolatoreSutter InstrumentMP 225
Camera CCDSonyCX-ST50
Monitor in bianco e neroSonySSM-125
DigidataMolecular devices1322A
Patch Clamp amplificatoreAxon instrumentMulitclamp 700A
Software di acquisizione elettrofisiologicaDispositivi molecolaripClamp 8
Software di analisi elettrofisiologicaDispositivi molecolariClampfit 8
Software di analisi di imagingImageJFIJISoftware open source. Versione FIJI con pacchetto plug-in.
Editor di immagini vettorialiAdobeIllustrator CS4
Applicazione per fogli di calcoloMicrosoft OfficeExcel 2010
Lente ad immersione in acqua

Riferimenti

  1. Condamine, S., Lavoie, R., Verdier, D., Kolta, A. Functional rhythmogenic domains defined by astrocytic networks in the trigeminal main sensory nucleus. Glia. 66 (2), 311-326 (2018).
  2. Verkhratsky, A., Orkand, R. K., Kettenmann, H. Glial calcium: homeostasis and sign....

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Ristampe e permessi

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