Qui presentiamo un protocollo per stimare il metabolismo respiratorio e fermentativo inserendo la crescita esponenziale di Saccharomyces cerevisiae per l'equazione di crescita esponenziale. Calcolo dei parametri cinetici permette per lo screening delle influenze di sostanze/composti sulla fermentazione o respirazione mitocondriale.
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Articolo metodologico
Saccharomyces cerevisiae Cinetica di crescita esponenziale nella cultura di Batch per analizzare il metabolismo fermentativo e respiratorio
In questo articolo
Sommario
Abstract
Cellule di Saccharomyces cerevisiae nella fase esponenziale sostengono la loro crescita con la produzione di ATP attraverso la fermentazione e/o respirazione mitocondriale. La concentrazione di carbonio fermentabili governa principalmente come le cellule di lievito generano ATP; così, la variazione nei livelli di carboidrati fermentescibili guida il metabolismo energetico di S. cerevisiae. Questo documento descrive un metodo di alto-rendimento basato su una crescita esponenziale lievito per stimare gli effetti delle variazioni di concentrazione e la natura della fonte di carbonio sul metabolismo fermentativo e respiratorio. La crescita di S. cerevisiae è misurata in una micropiastra o scossa conica boccetta determinando la densità ottica (OD) a 600 nm. Quindi, una curva di crescita è costruita da tracciato OD rispetto al tempo, che permette l'identificazione e la selezione della fase esponenziale ed è dotato con l'equazione di crescita esponenziale per ottenere parametri cinetici. Bassi tassi di crescita specifici con tempi di raddoppiamento superiori rappresentano generalmente una crescita delle vie respiratorie. Al contrario, tassi di crescita specifici superiori con tempi di raddoppiamento inferiori indicano crescita fermentativo. Valori di soglia di raddoppiare il tempo e il tasso di crescita specifico sono stimati utilizzando il ben note condizioni respiratorie o fermentative, come fonti di carbonio non fermentabili o più alte concentrazioni di zuccheri fermentescibili. Questo è ottenuto per ogni ceppo specifico. Infine, i parametri cinetici calcolati vengono confrontati con i valori di soglia per stabilire se il lievito Mostra una crescita fermentativa e/o respiratoria. Il vantaggio di questo metodo è la sua relativa semplicità per la comprensione degli effetti di un sostanza/composto sul metabolismo fermentativo o respiratorio. È importante sottolineare che la crescita è un processo biologico complesso e intricato; Pertanto, i dati preliminari da questo metodo devono essere corroborati dalla quantificazione del consumo di ossigeno e accumulazione dei sottoprodotti della fermentazione. Quindi, questa tecnica può essere utilizzata come uno screening preliminare di composti/sostanze che possono disturbare o migliorare il metabolismo fermentativo o respiratorio.
Introduzione
Crescita di Saccharomyces cerevisiae ha servito come uno strumento prezioso per identificare decine di meccanismi fisiologici e molecolari. La crescita è misurata principalmente in tre modi: diluizioni seriali per spot test, unità formanti colonie contando e curve di crescita. Queste tecniche utilizzabile da solo o in combinazione con una varietà di substrati, condizioni ambientali, mutanti e prodotti chimici per esaminare le risposte specifiche o fenotipi.
La respirazione mitocondriale è un processo biologico in cui cinetica di crescita è stato applicato con successo per scoprire i meccanismi sconosciuti. In questo caso, il completamento della crescita media con carbonio non fermentabili fonti quali glicerolo, lattato o etanolo (che sono metabolizzati esclusivamente tramite respirazione mitocondriale), come l'unica fonte di carbonio e di energia permette di valutare la crescita delle vie respiratorie, che è importante per rilevare perturbazioni nella fosforilazione ossidativa attività1. D'altra parte, è complicato da usare modelli di cinetica di crescita come un metodo per decifrare i meccanismi dietro la fermentazione.
Lo studio della fermentazione e respirazione mitocondriale è essenziale per delucidare i meccanismi molecolari dietro alcuni fenotipi come il Crabtree e Warburg effetti2,3. L'effetto Crabtree è caratterizzata da un aumento del flusso glicolitico, repressione di respirazione mitocondriale e l'istituzione di fermentazione come la via primaria per generare ATP in presenza di alte concentrazioni di carboidrati fermentabili (> 0,8 mM)4,5. L'effetto di Warburg è metabolicamente analogico all'effetto Crabtree, con la differenza è che in cellule di mammifero, il prodotto principale della fermentazione è lattato6. Infatti, l'effetto di Warburg è esposto da una varietà di cellule tumorali, innescando l'assorbimento del glucosio e consumo anche in presenza di ossigeno7. Quindi, studiare le basi molecolari dell'interruttore dalla respirazione alla fermentazione nell'effetto Crabtree ha ripercussioni biotecnologiche (per la produzione di etanolo) sia potenziali impatti nella ricerca sul cancro.
S. cerevisiae crescita può essere uno strumento adatto per studiare gli effetti di Crabtree e Warburg. Questa idea è basata sul fatto che nella fase esponenziale di lievito, le vie centrali, utilizzate per produrre ATP sono la respirazione mitocondriale e la fermentazione, che sono essenziali per sostenere la crescita. Per esempio, la crescita di S. cerevisiae è intimamente legata alla funzione delle vie di generazione di ATP. Nelle molecole di S. cerevisiae, la respirazione mitocondriale produce circa 18 ATP per molecola di glucosio, mentre la fermentazione genera solo 2 molecole di ATP, quindi ci si aspetta che il tasso di crescita ha stretti legami con le vie metaboliche la produzione di ATP8. A questo proposito, quando la fermentazione è la via principale per generare ATP, il lievito compensa la bassa produzione di ATP aumentando il tasso di assorbimento del glucosio. Al contrario, il consumo di glucosio dalle cellule di lievito che utilizzano la respirazione mitocondriale come la principale fonte di ATP è basso. Questo indica che è importante per il lievito a disponibilità di carboidrati senso prima di determinare come verrà generato ATP. Pertanto, la disponibilità di glucosio gioca un ruolo importante nello switch tra fermentazione e respirazione mitocondriale in S. cerevisiae. In presenza di elevate quantità di glucosio, il lievito preferisce fermentazione come la via centrale per generare ATP. È interessante notare che, quando il lievito è fermentazione, il tasso di crescita specifico viene mantenuto al suo massimo. D'altra parte, sotto i bassi livelli di glucosio, S. cerevisiae produce ATP utilizzando la respirazione mitocondriale, mantenere tassi di crescita inferiori. Quindi, variazione della concentrazione di glucosio e l'uso di altre fonti di carbonio indurre cambiamenti nella preferenza di lievito tra crescita fermentativa e respiratoria. Prendendo in considerazione questo fatto con l'equazione di crescita esponenziale, uno può ottenere il significato biologico dei parametri cinetici come raddoppiando il tempo (Dt) e tasso di crescita specifico (µ). Ad esempio, i valori di µ più bassi sono stati trovati quando il lievito utilizza la respirazione mitocondriale come la via primaria. Al contrario, in condizioni che favoriscono la fermentazione, i valori più alti di µ sono stati trovati. Questa metodologia può essere usata per misurare i probabili meccanismi di sostanze chimiche che influenzano la fermentazione e la respirazione mitocondriale in S. cerevisiae.
L'obiettivo di questa carta è di proporre un metodo basato sulla cinetica di crescita per gli effetti di un determinata sostanza/composto sulla respirazione mitocondriale o fermentazione di screening.
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Protocollo
1. terreni di coltura e preparazione dell'inoculo
- Preparare 100 mL di terreno liquido 2% lievito estratto-peptone-destrosio (YPD) (aggiungere 1 g di lievito estratto, 2 g di peptone di caseina, e 2 g di glucosio per 100 mL di acqua distillata). Versare 3 mL dei media in provette coniche da 15 mL sterilizzabile. Sterilizzare in autoclave i media per 15 min a 121 ° C e 1,5 psi.
Nota: I media possono essere memorizzati fino ad un mese a 4 – 8 ° C. - Inoculare un tubo conico riempito con 3 mL di brodo di YPD 2% sterile cool con 250 μL di cellule di Saccharomyces cerevisiae conservati in glicerolo a-20 ° C. Incubare per una notte in un agitatore orbitale a 30 ° C con agitazione a 200 giri/min.
- Striscia di Petri (60 x 15 mm2) riempite di sterile 2% YPD agar (aggiungere 10 g di lievito estratto, 20 g di peptone di caseina, 20 g di glucosio, e 20 g di agar batteriologico a 1.000 mL di acqua distillata) con le cellule coltivate in provetta conica con un'ansa sterile. Incubi di Petri a 30 ° C fino a che le colonie isolate mostrano una crescita.
- Preparare pre-l'inoculo inoculando una singola colonia isolata in una provetta conica riempita con 10 mL di brodo di YPD 2% sterile cool e incubare per una notte a 30 ° C con agitazione continua a 200 giri/min.
2. terreni di coltura e curve di crescita in micropiastra
- Preparare 10 mL di brodo di YPD 1% (aggiungere 0,1 g di lievito estratto, 0,2 g di peptone, e 0,1 g di glucosio a 10 mL di acqua distillata), 10 mL di brodo di YPD 2% (aggiungere 0,1 g di lievito estratto, 0,2 g di peptone, e 0,2 g di glucosio a 10 mL di acqua distillata) e 10 mL di brodo di YPD 10% (aggiungere 0,1 g di lievito estratto, 0,2 g di peptone, e 1 g di glucosio per 10 mL di acqua distillata). Autoclave questi mezzi di crescita per 15 min a 121 ° C e 1,5 psi.
Nota: I terreni di coltura serve come controllo di crescita fermentativo. - Preparare 10 mL di brodo di 2% lievito estratto-peptone-etanolo (IPO) e 10 mL di brodo di 2% lievito estratto-peptone-glicerolo (YPG). 2% YPE: aggiungere 0,1 g di lievito estratto, 0,2 g di peptone, e 0,2 mL di etanolo a 10 mL di acqua distillata. 2% YPG: aggiungere 0,1 g di lievito estratto, 0,2 g di peptone, e 0,2 mL di glicerolo a 10 mL di acqua distillata. Autoclave questi mezzi di crescita per 15 min a 121 ° C e 1,5 psi.
Nota: Glicerolo e l'etanolo sono fonti di carbonio non fermentabili metabolizzati esclusivamente tramite respirazione mitocondriale. Per questo motivo, vengono utilizzati come controlli una crescita delle vie respiratorie. In questo passaggio, il tipo e la concentrazione della fonte di carbonio nel terreno di coltura può essere cambiati per testare gli effetti sul fenotipo di crescita utilizzando brodo di lievito estratto-peptone (YP) (10 g di Estratto di lievito e 20 g di peptone di caseina in 1.000 mL di acqua distillata) come base. Per testare gli effetti di altre sostanze nutrienti oltre a carbonio, mezzo (SC) completa sintetico è completato secondo lo scopo dell'esperimento. La base per mezzo di SC è 1,8 g di lievito azoto base senza aminoacidi, 5 g di solfato di ammonio [(NH4)2SO4], 1,4 g di fosfato monosodico (NaH2PO4), e 2 g di abbandono mescolare in 1.000 mL di acqua distillata. Supplemento media con una fonte di carbonio e azoto supplementare fonte nelle concentrazioni necessarie. - Aggiungere 145 μL di idonei mezzi di coltura per il disegno sperimentale in ciascun pozzetto della micropiastra sterile (10 x 10-bene) con un coperchio e inoculare loro con 5 μL di pre-inoculo.
Nota: Se l'obiettivo è di schermare l'influenza di sostanze/composti sul metabolismo energetico del lievito, quella sostanza/composto deve essere aggiunto durante questo passaggio. Inoltre, qualsiasi tipo di micropiastra con un coperchio dovrebbe essere utile. - Incubare la piastra multi-pozzetto in un lettore di micropiastre a 30 ° C con agitazione costante a 200 giri/min per 48 h. misura la densità ottica (OD) a 600 nm ogni 30 o 60 min.
Nota: Se il lettore di micropiastre non dispone l'opzione per incubare la micropiastra, possono essere incubata in un agitatore orbitale alle stesse condizioni tra ogni misurazione del OD.
3. crescita curve in beute scossi
- Aggiungere 4,8 mL di terreno di coltura adatto per autoclave e beute da 20 mL. Inoculare ciascuna beuta con 200 μL della cultura pre-inoculo a OD600nm ~ 2 in brodo 2% YPD cool, sterile. Li Incubare a 30 ° C con agitazione costante a 250 giri/min per 24 h.
Nota: Se il periodo di incubazione è superiore a 24 ore, aggiungere 12 mL di terreno di coltura adatto per autoclave e beute da 50 mL. Inoculare loro con 500 μL di pre-inoculo. È anche importante considerare la crescita fermentativo controlli (media YP con 1%, 2% o 10% glucosio) e respiratorie crescita (media YP con 2% di glicerina o etanolo). - Prendere 100 μL della cultura scosso beuta e diluirlo in 900 μL di acqua distillata in una cuvetta spettrofotometro 1ml e mescolare delicatamente pipettando. Misurare il diametro esterno a 600 nm utilizzando uno spettrofotometro ogni 2 h. Per ottenere la reale OD, moltiplicare il risultato per dieci.
4. elaborazione dei dati e calcolo di parametri cinetici
-
Creare un nuovo file di progetto nel software pacchetto statistico. Nella sezione di "nuova tabella e grafico", scegliere l'opzione di "XY" .
- Selezionare l'opzione: "Inizia con una tabella dati vuota" nella sezione "Dati di esempio" .
- Selezionare il tipo di grafico "Punti e linea di collegamento" . Lasciare la sezione di "X" non è selezionata nel segmento del "Subcolumns per repliche o valori di errore" e a "Y" sezione scegliere l'opzione: "Immettere valori (10) replicati a fianco a fianco subcolumns e trama media e DS errore". Fare clic sul pulsante Crea.
Nota: Il formato di tabella ha una colonna di X e più Y colonne, ciascuna con i 10 subcolumns scelto in precedenza.
- Scrittura il tempo al quale OD misurazioni sono state effettuate nella colonna X (ad es., 0, 30, 60, 90 minuti o 0, 1, 1.5, 2 h). Nelle colonne Y, scrivere i valori di OD ottenuti dalle colture.
- Identificare la fase di crescita esponenziale, trasformando i dati di colonna Y in logaritmi. Fare clic sul pulsante "Analizza" , scegliere l'analisi di "Trasformare" , selezionare i valori di Y con Y = Log(Y). Vai alla "Galleria dei risultati", selezionare "Trasformare" tabella dati, fare clic sul pulsante "Analizza" e scegli l'analisi di "Regressione lineare" . Escludere i valori OD che non seguono un comportamento lineare. Per escludere i valori, selezionarli nella tabella dati e digitare "Ctrl + E".
Nota: È importante escludere i valori che non seguono la fase esponenziale poiché l'equazione di crescita esponenziale si adatta bene con la fase esponenziale. - Nella "Raccolta di tabelle di dati", selezionare la tabella dati "Data 1". Fare clic sul pulsante "Analizza" e scegliere l' analisi di "Regressione non lineare (curva fit)" tra le "analisi XY".
- Selezionare i set di dati da analizzare e fare clic sul pulsante "OK" . Nella scheda "Fit" scegliete la sezione di "Equazione esponenziale" e selezionare "equazione di crescita esponenziale" (, dove X è la concentrazione cellulare, X0 è la concentrazione di cellule a tempo zero, μ è il tasso di crescita specifico, e t è il tempo). Utilizzare la "adattamento ai minimi quadrati" come un metodo di montaggio e lasciare deselezionata la sezione di interpolare. Fare clic sul pulsante "OK" .
Nota: La scheda con i risultati di misura non lineare è nella "Galleria dei risultati". Il software calcola raddoppio tempo (Dt) e specifico tasso di crescita (μ). Il software Visualizza μ come K nella scheda risultati. - Aprire un nuovo file di progetto e nella sezione "nuova tabella e grafico" , selezionare la scelta di colonna. Scegliere l'opzione "Inizia con una tabella dati vuota" e selezionare il grafico desiderato. Scegliere tracciare la media con lo SD. Selezionare il pulsante "Crea" .
- Copiare i valori di Dt o μ dalla scheda risultati di forma non lineare che è la "Galleria dei risultati" e incollarli in una colonna. Infine, selezionare il pulsante "Analizza" e scegliere l'analisi desiderata nella sezione "Analisi colonna" per confrontare i parametri cinetici delle diverse condizioni nutrimental.
Nota: I parametri cinetici ottenuti dai controlli fermentativo crescita (media YP con 1%, 2% o 10% glucosio) e controlli di crescita respiratoria (media YP con 2% di glicerina o etanolo) aiuta a stabilire la soglia della respirazione mitocondriale e fermentativa, rispettivamente. Confrontando la cinetica parametri dalla condizione nutrizionale e sostanza/composto dosati con la crescita delle vie respiratorie e fermentativa identificare possibili effetti sul metabolismo fermentativo o respiratorio.
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Risultati
Curve di crescita possono essere utilizzate per discriminare preliminarmente tra fenotipi respiratori e fermentativi del lievito S. cerevisiae . Di conseguenza, abbiamo effettuato batch colture di S. cerevisiae (BY4742) con le concentrazioni di glucosio differenti che sono state segnalate per indurre la crescita fermentativo: 1%, 2% e 10% (p/v)9. Culture che mostra un fenotipo fermentativo hanno una piccolo lag fase e una fase esponenziale con un ...
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Discussione
Molto tempo è passato da quando J. Monod10 espresso che lo studio della crescita delle colture batteriche è il metodo di base di microbiologia. L'avvento degli strumenti molecolari ritarda l'utilizzo e lo studio della crescita come tecnica. Nonostante la complessità della crescita che coinvolge numerosi processi interconnessi, suoi meccanismi di fondo possono essere descritto utilizzando modelli matematici11. Si tratta di un approccio robusto che può essere utilizzato come ...
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Dichiarazioni
Gli autori non hanno nulla a rivelare.
Ringraziamenti
Questo progetto è stato sostenuto da sovvenzioni del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (concessione numero 293940) e Fundación TELMEX-TELCEL (concessione numero 162005585), entrambi a IKOM.
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Materiali
| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Agitatore Orbitale | Thermo Scientific | 4353 | Per incubazione di inoculo o colture di fiasche coniche |
| Bioscreen | Curve di crescita | C MBR | Per colture discontinue in micropiastre |
| Glucosio | Sigma | G7021 | Per la preparazione del brodo YPD |
| Peptone da caseina, digestato enzimatico | Sigma | 82303 | Per la preparazione del brodo YPD |
| Estratto di lievito | Sigma | 09182-1KG-F | Per la preparazione del brodo YPD |
| Agar batteriologico | Sigma | A5306 | Per la preparazione di agar YPD |
| NaH2PO4 | Sigma | S8282 | Per la preparazione del brodo SC |
| (NH4)2SO4 | Sigma | A4418 | Per la preparazione del brodo SC |
| Lievito base azotata senza aminoacidi e solfato di ammonio | Sigma | Y1251 | Per la preparazione del brodo SC |
| Lievito sintetico drop-Out medium integratori | Sigma | Y1501 | Per la preparazione del brodo SC |
| Solfato di ammonio granulare | J.T. Baker | 0792-R | Per esempio di integrazione media |
| Resveratrol | Sigma | R5010 | Per esempio di integrazione media |
| Galattosio | Sigma | G8270 | Per l'esempio di integrazione media |
| Saccarosio | Sigma | S7903 | Per l'esempio di integrazione media |
| Absolut ethanol | Merck 107017 | Per l'esempio di integrazione media | |
| Glycerol | J.T. Baker | 2136-01 | Per l'esempio di integrazione media |
| GraphPad Prism | GraphPad Software | Per l'analisi dei dati | |
| Micropiastre a nido d'ape | Thermo Scientific | 9502550 | Per colture di micropiastre |
Riferimenti
- Parrella, E., Longo, V. D. The chronological life span of Saccharomyces cerevisiae to study mitochondrial dysfunction and disease. Methods. 46 (4), 256-262 (2008).
- Rosas Lemus, M., et al. The role of glycolysis-derived hexose phosphates in the induction of the Crabtree effect. Journal of Biological Chemistry. , (2018).
- Xu, X. D., et al. Warburg effect or reverse Warburg effect? A review of cancer metabolism. Oncology Research and Treatment. 38 (3), 117-122 (2015).
- De Deken, R. H. The Crabtree effect: a regulatory system in yeast. Journal of General Microbiology. 44 (2), 149-156 (1966).
- Hagman, A., Sall, T., Piskur, J. Analysis of the yeast short-term Crabtree effect and its origin. The FEBS Journal. 281 (21), 4805-4814 (2014).
- Hammad, N., Rosas-Lemus, M., Uribe-Carvajal, S., Rigoulet, M., Devin, A. The Crabtree and Warburg effects: Do metabolite-induced regulations participate in their induction? Biochim Biophys Acta. 1857 (8), 1139-1146 (2016).
- Keating, E., Martel, F. Antimetabolic Effects of Polyphenols in Breast Cancer Cells: Focus on Glucose Uptake and Metabolism. Frontiers in Nutrition. 5, 25(2018).
- Pfeiffer, T., Morley, A. An evolutionary perspective on the Crabtree effect. Frontiers in Molecular Biosciences. 1, 17(2014).
- Olivares-Marin, I. K., et al. Interactions between carbon and nitrogen sources depend on RIM15 and determine fermentative or respiratory growth in Saccharomyces cerevisiae. Applied Microbiology and Biotechnology. 102 (10), 4535-4548 (2018).
- Monod, J. The growth of bacterial cultures. Annual Review of Microbiology. 3 (1), 371-394 (1949).
- Cui, S., Xu, S. Analysis of mathematical models for the growth of tumors with time delays in cell proliferation. Journal of Mathematical Analysis and Applications. 336 (1), 523-541 (2007).
- Benzekry, S., et al. Classical mathematical models for description and prediction of experimental tumor growth. Public Library of Science Computational Biology. 10 (8), e1003800(2014).
- Ramos-Gomez, M., et al. Resveratrol induces mitochondrial dysfunction and decreases chronological life span of Saccharomyces cerevisiae in a glucose-dependent manner. Journal of Bioenergetics and Biomembranes. 49 (3), 241-251 (2017).
- Madrigal-Perez, L. A., et al. Energy-dependent effects of resveratrol in Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 33 (6), 227-234 (2016).
- Peleg, M., Corradini, M. G. Microbial growth curves: what the models tell us and what they cannot. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 51 (10), 917-945 (2011).
Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.
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