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Articolo metodologico

Isolamento, fissazione e immunofluorescenza Imaging delle ghiandole adrenali Mouse

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DOI:

10.3791/58530

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2 ottobre 2018

 , 

In questo articolo

Sommario

Qui presentiamo un metodo per isolare ghiandole surrenali da topi, difficoltà i tessuti, sezione loro ed eseguire la colorazione di immunofluorescenza.

Abstract

L'immunofluorescenza è una tecnica affermata per il rilevamento degli antigeni nei tessuti con l'impiego di anticorpi coniugati fluorocromo e ha un ampio spettro di applicazioni. Rilevamento degli antigeni permette per la caratterizzazione ed identificazione di più tipi di cellule. Situato sopra i reni e incapsulati da uno strato di cellule mesenchimali, il surrene è un organo endocrino, composto da due tessuti differenti con differenti origini embriologiche, mesonephric intermedia derivati mesoderma corteccia esterna e neurali derivati dalla cresta midollo interno. La corteccia surrenale secerne steroidi (cioè, i mineralcorticoidi, glucocorticoidi, ormoni sessuali), mentre il midollo surrenale produce catecolamine (cioè, adrenalina, noradrenalina). Durante lo svolgimento di ricerca adrenale, è importante essere in grado di distinguere le uniche cellule con funzioni diverse. Qui forniamo un protocollo sviluppato nel nostro laboratorio che descrive una serie di passi sequenziali necessarie per ottenere la colorazione di immunofluorescenza per caratterizzare i tipi di cellule della ghiandola surrenale. Prima ci concentriamo sulla dissezione delle ghiandole surrenali del mouse, la rimozione microscopica del grasso di periadrenal seguita dalla fissazione, elaborazione e inclusione in paraffina del tessuto. Descriviamo quindi la divisione dei blocchi di tessuto con un microtomo rotativo. Infine, abbiamo dettaglio un protocollo per la macchiatura immunofluorescente delle ghiandole adrenali che abbiamo sviluppato per ridurre al minimo sia non specifico anticorpo che lega e autofluorescenza al fine di ottenere un segnale ottimo.

Introduzione

Immunohistochemistry è una tecnica per la rilevazione di componenti del tessuto con l'uso di anticorpi contro specifiche molecole cellulari e successive tecniche di colorazione per rilevare gli anticorpi coniugati1. Questa procedura di immunohistochemical richiede particolare attenzione e il trattamento dei tessuti che sono spesso empiricamente determinati per l'antigene specifico, dei tessuti e l'anticorpo utilizzato2. La fissazione è cruciale per mantenere lo stato "originale" del tessuto e quindi mantenendo intatto cellular e strutture subcellulari e modelli di espressione. Ulteriore elaborazione e incorporare procedu....

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Protocollo

Tutti i metodi sono stati effettuati secondo protocolli istituzionalmente approvati sotto gli auspici del Comitato Università sull'uso e la cura degli animali presso l'Università del Michigan.

1. preparazione per la chirurgia

  1. Il giorno prima dell'intervento chirurgico, preparare la paraformaldeide al 4% (PFA) / tampone fosfato salino (PBS). In caso di aliquote congelate, procedere a scongelare uno e conservare a 4 ° C.
    Nota: 4% PFA non è stabile per più di 48 h.
    Attenzione: PFA è tossico, evitare il contatto con pelle e occhi e gettare in un contenitore appropriato.
  2. Il giorno dell'intervento chirurgico, preparare g....

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Risultati

Figura 1 rappresenta lo schema dell'intero protocollo descritto in precedenza. Ghiandole surrenali vengono raccolte dai topi, tessuto adiposo adiacente viene rimosso sotto un microscopio per dissezione e adrenale sono fissate in 4% PFA. Dopo questo passaggio, le ghiandole surrenali sono elaborate e inclusi in paraffina e sezionate con un microtomo per tagliare l'organo in fette sottili che si depositano su vetrini da microscopio. Dopo l'essiccazione delle sez.......

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Discussione

Questo protocollo descrive un metodo per l'isolamento delle ghiandole surrenali del mouse insieme con la preparazione e colorazione delle ghiandole surrenali sezionato paraffina-incastonato del mouse.

Rispetto ad altri protocolli che abbiamo testato, questo protocollo di immunofluorescenza ha dimostrato adatto per la maggior parte degli anticorpi utilizzati nel nostro laboratorio. Tuttavia, in alcuni casi può richiedere qualche aggiustamento per migliorare i risultati di colorazione. Una varia.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Ringraziamo il Dr. Mohamad Zubair per i suoi utili suggerimenti e assistenza tecnica alla creazione di questo protocollo. Questo lavoro è stato supportato dal National Institute of Diabetes e digerente e malattie renali, istituti nazionali di salute Research Grant 2R01-DK062027 (per Gallucci).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
piastra per coltura cellulare a 24 pozzettiNest Biotechnology Co.0412B
Aghi monouso 25 G x 5/8"Exel International26403
Paraformaldeide (PFA)Sigma-Aldrich P6148
Paraplast plusMcCormik scientific39502004Paraffina per l'inclusione dei tessuti
Cassette per biopsia Shandon II con coperchio attaccatoper 1001097termoscientificheper il trattamento dei tessuti
Lame per microtomo ad alto profiloAccu-Edge4685Lame monouso in acciaio inossidabile
Stampi monouso per l'inclusione di tessuti in plastica Peel-a-way PolysciencesInc.18986Troncato, 22 mm quadrato superiore rastremato a 12 mm inferiore
Superfrost Plus Vetrini per microscopioFisherbrand12-550-1575 mm x 25 mm x 1 mm
XyleneFisher ChemicalX5P1GAL 
200 Prova EtanoloDecon Labs, Inc.
Certi-Pad GarzeSicurezza certificata Mfg, Inc231-2103" x 3. Garze sterili prive di lattice
Kit M.O.M.Vector laboratoriesBMK-2202Per il rilevamento di anticorpi primari di topo su tessuto di topo
KimWipesKimtech34155Salviette 4,4 pollici x 8,4 pollici
Super PAP PENInvitrogen 00-8899Penna per disegnare su vetrini
Vetro di copertura del microscopio Fisherbrand12-544-DDimensioni: 22 x 50 x 1,5
DAPISigmaD9542 (Preparato in brodo da 20 mg/mL)
Reagente antifading ProLong GoldSonde molecolariP36930Agente di montaggio per immunofluorescenza
serie X-cite 120QLumen DynamicsSorgente luminosa
Coolsnap MyoPhotometricsCamera
Optiphot-2 Nikon
microscopio microtomoAmerican Optical
Tissue embedderLeicaEG1150 H 
Processatore di tessuti LeicaASP300S
Siero di capra normaleSigmaG9023
Topo anti-THMilliporeMAB318Anticorpo primario
Coniglio anti-SF1Ab proteintech group (PTGlabs)  su misuraanticorpo primario
Alexa-488 topo IgG  capra allevataJackson ImmunoResearch115-545-003Anticorpo secondario
Dylight-549 Capra allevata IgG di coniglioJackson ImmunoResearch111-505-003Anticorpo secondario
Citrato acido anidroFisher ChemicalA940-500
NIS-Elements Ricerca di base Software Nikonper l'imaging
Cassette

Riferimenti

  1. Brandtzaeg, P. The increasing power of immunohistochemistry and immunocytochemistry. Journal of Immunological Methods. 216 (1-2), 49-67 (1998).
  2. Matos, L. L., Trufelli, D. C., de Matos, M. G., da Silva Pinhal, M. A. Immunohistochemistry as....

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Ristampe e permessi

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